临床样本及数据库分析GIPC1表达和预后
评估GIPC1在结直肠癌中的表达水平及其与患者预后的相关性
利用GEO和TCGA数据库分析GIPC1 mRNA表达,使用IHC和Western blot检测组织芯片及配对样本中GIPC1蛋白表达,并进行Kaplan-Meier生存分析和ROC曲线评估。
GIPC1 Restrains the Progression and Chemoresistance of Colorectal Cancer by Regulating TTC7B/mTOR/NF-κB Axis.
包含体外细胞功能实验、分子机制验证(Co-IP、质谱、泛素化)和体内动物模型(CDX及耐药模型),并有多组学数据库分析,证据层级丰富。
结直肠癌细胞系(DLD1、SW480、HCT116) BALB/c裸鼠异种移植瘤模型(CDX模型) 结直肠癌患者组织样本及组织芯片
细胞系:DLD1、SW480、HCT116,来源Procell,STR鉴定 药物处理浓度:5-FU(5,10,20 μg/mL),OXA(25,50,100 μM),CPT-11(10,20 μM),处理48小时 动物模型:4-6周龄雄性BALB/c nude小鼠,皮下注射4×10^6 DLD1细胞 5-FU给药剂量:25 mg/kg腹膜内注射,隔天一次 LNP给药剂量:25 mg/kg静脉注射,隔天一次
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估GIPC1在结直肠癌中的表达水平及其与患者预后的相关性
利用GEO和TCGA数据库分析GIPC1 mRNA表达,使用IHC和Western blot检测组织芯片及配对样本中GIPC1蛋白表达,并进行Kaplan-Meier生存分析和ROC曲线评估。
验证GIPC1对CRC细胞增殖、迁移、侵袭和化疗敏感性的影响
在DLD1、SW480、HCT116细胞中过表达或敲低GIPC1,使用CCK8、集落形成、Transwell实验检测增殖、迁移和侵袭,并使用CCK8检测对5-FU、OXA、CPT-11的敏感性变化。
探究GIPC1是否通过相互作用影响TTC7B蛋白稳定性及其机制
通过Co-IP结合质谱鉴定GIPC1相互作用蛋白,验证GIPC1与TTC7B的相互作用和共定位;使用CHX和MG132处理检测TTC7B蛋白稳定性;检测GIPC1对TTC7B泛素化水平的影响;鉴定调控TTC7B的E3连接酶TRIM21。
验证GIPC1通过TTC7B抑制CRC细胞增殖、迁移、侵袭和化疗耐药
在GIPC1敲低的细胞中过表达TTC7B,检测细胞增殖、集落形成、迁移、侵袭以及对化疗药物的敏感性,同时检测mTOR/NF-κB通路蛋白磷酸化水平。
在体内模型中验证GIPC1和TTC7B对肿瘤生长及5-FU敏感性的影响
将敲低GIPC1或敲低GIPC1并过表达TTC7B的DLD1细胞皮下注射到裸鼠,建立异种移植瘤模型,给予5-FU治疗,测量肿瘤体积和重量,并进行Ki67和H&E染色。
评估GIPC1 mRNA负载的脂质纳米颗粒(GIPC1-LNPs)的靶向性和抗肿瘤效果
合成GIPC1 mRNA并封装于靶向肽修饰的脂质纳米颗粒中,通过动态光散射和透射电镜表征粒径、PDI、zeta电位和形态;在体外验证细胞摄取,在CDX耐药模型中评估单药及联合5-FU的抗肿瘤效果,并进行组织学分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | HyClone | -- |
| L-15培养基 | Gibco BRL | -- | |
| McCoy's 5A培养基 | HyClone | -- | |
| 胎牛血清 | HyClone | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 药物处理 | 5-氟尿嘧啶 | -- | -- |
| 奥沙利铂 | -- | -- | |
| 伊立替康 | -- | -- | |
| 细胞培养 | 聚凝胺 | Yasen | 40804ES76 |
| 嘌呤霉素 | Cayman | 13884 | |
| G418 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞转染 | HighGene转染试剂 | Abclonal | RM09014 |
| 蛋白互作验证 | GST标签蛋白纯化试剂盒 | Biyuntian | P2262 |
| 免疫荧光 | 抗GIPC1兔抗体 | Proteintech | 14822-1-AP |
| Alexa Fluor 647标记抗兔二抗 | Abcam | ab150083 | |
| DAPI | Beyotime | C1005 | |
| 免疫组化 | Ki67抗体 | Servicebio | GB111499 |
| 制备GIPC1-LNPs | 200纳米聚碳酸酯膜 | -- | -- |
| GIPC1-LNPs表征 | NanoBrook 90plus PALS纳米粒度仪 | Brookhaven | -- |
| 透射电子显微镜 | FEI | TF20 | |
| 细胞观察 | 倒置显微镜 | Olympus | IX-71 |
| 组织学观察 | DM4000b显微镜 | Leica | -- |
| STELLARIS 5共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| 蛋白质印迹 | BIO-RAD ChemiDoc XRS+成像系统 | BIO-RAD | -- |
| 统计分析 | SPSS 19.0 | SPSS Inc | -- |
| 组织芯片 | 结直肠癌组织芯片 | Outdo Biotech | HColA180Su21 |
| 细胞培养 | DLD1细胞 | Procell Life Science & Technology Company | -- |
| SW480细胞 | Procell Life Science & Technology Company | -- | |
| HCT116细胞 | Procell Life Science & Technology Company | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源和培养条件:DLD1、SW480、HCT116,培养基、血清、双抗,37°C、5% CO2 阅读提示:Methods:Cell line culture |
| 药物处理 | 5-FU、OXA、CPT-11的浓度和处理时间 阅读提示:Methods:Cell viability assay |
| 动物模型 | 小鼠品系、周龄、性别、体重;细胞注射数量;5-FU和LNP给药剂量、途径、频率 阅读提示:Methods:Animal studies |
| 蛋白互作验证 | Co-IP、GST pull-down、IF实验的具体条件,如细胞系、转染、抗体、孵育时间 阅读提示:Methods:GST pull-down assay, Immunofluorescence (IF);Figure 3 |
| 泛素化实验 | MG132浓度和处理时间,CHX浓度处理时间,转染组合 阅读提示:Methods:Western blotting;Results:Figure 4 legend |
| GIPC1-LNPs制备与表征 | 脂质膜封装方法、挤出次数、粒径、PDI、zeta电位、封装效率 阅读提示:Methods:Formation and evaluation of GIPC1-LNPs;Results:Figure 8 |
| 组织芯片和IHC | 组织芯片编号、样本量;抗体来源和稀释比例 阅读提示:Methods:Patient's specimens, Immunohistochemistry (IHC) |