网络药理学分析
预测CLMD的活性成分和潜在治疗靶点
从TCMSP和BATMAN-TCM数据库获取CLMD活性成分,与GeneCards和DrugBank的PMS疾病靶点取交集,构建成分-靶点网络。
Machine learning-assisted network pharmacology reveals that the Chaihu-Longgu-Muli decoction modulates the inflammatory microenvironment to treat perimenopausal syndrome.
包含网络药理学、机器学习预测、分子对接/动力学模拟和体外细胞实验,但缺乏体内动物实验和临床样本验证,实验完整性中等。
Raw264.7细胞系 LPS诱导的Raw264.7炎症模型
CLMD干预浓度:低浓度3.6 μg/mL LPS诱导炎症模型 IL6、TNF、IL1B蛋白和mRNA表达水平 ROS水平 M1/M2极化标志物(CCR7、CD206)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
预测CLMD的活性成分和潜在治疗靶点
从TCMSP和BATMAN-TCM数据库获取CLMD活性成分,与GeneCards和DrugBank的PMS疾病靶点取交集,构建成分-靶点网络。
揭示潜在靶点的功能富集和信号通路
利用DAVID数据库对46个潜在靶点进行GO和KEGG富集分析,并通过Circos图和弦图展示。
从潜在靶点中筛选核心靶点
在STRING数据库构建PPI网络,使用LASSO、SVM-RFE和RF算法对网络特征进行筛选,取交集确定关键靶点。
验证关键活性成分与关键靶点的结合稳定性和亲和力
使用AutoDock Vina进行分子对接,GROMACS进行200 ns MD模拟,分析RMSD、Rg、SASA、氢键数量及结合自由能。
验证CLMD对关键靶点及炎症微环境的影响
使用Raw264.7细胞,通过CCK-8、ELISA、ROS检测、免疫荧光和RT-qPCR评估CLMD的作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | -- | -- |
| ELISA检测 | IL6 ELISA试剂盒 | Cloud-Clone | -- |
| IL1B ELISA试剂盒 | Cloud-Clone | -- | |
| TNF ELISA试剂盒 | Cloud-Clone | -- | |
| 蛋白质定量 | Bradford蛋白定量试剂盒 | Solarbio | -- |
| ROS检测 | ROS检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 免疫荧光 | CCR7抗体 | Affinity | AF5293 |
| CD206抗体 | Affinity | DF4149 | |
| CD68抗体 | Abcam | AB53444 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 网络药理学 | 筛选标准(OB≥30%,DL≥0.18,HL≥4),数据库版本,得分阈值 阅读提示:Methods 2.1.1 和 2.1.2 |
| 机器学习 | 训练集和测试集比例(8:2),正负样本定义(top 20% degree),算法参数 阅读提示:Methods 2.2.2 |
| 分子对接和动力学 | 靶蛋白晶体结构(PDB ID),配体结构,对接软件版本,MD模拟参数(力场,水模型,模拟时间,温度,压力) 阅读提示:Methods 2.3.1 和 2.3.2 |
| 细胞培养和处理 | 细胞系(RAW264.7),培养基(DMEM+10% FBS+1% P/S),培养条件(37°C,5% CO2),LPS浓度,CLMD制备方法及浓度(3.6 μg/mL) 阅读提示:Methods 2.4.1 和 2.4.2 |
| 体外功能实验 | 细胞接种密度,处理时间(24-96h),检测方法(CCK-8、ELISA、ROS、IF、RT-qPCR),抗体用量,引物序列 阅读提示:Methods 2.4.3 - 2.4.7 |