识别副凋亡相关基因并构建预后模型
确定与乳腺癌总生存期显著相关的副凋亡相关基因,并建立风险评分模型。
使用TCGA-BRCA队列,通过单因素Cox回归筛选出12个与总生存期相关的副凋亡基因,再经LASSO回归和多因素Cox回归确定6个关键基因(PI4KB、HSPB8、USP10、LCK、GPR153、NT5C),构建PRRS。
Paraptosis-related genes regulate tumor immune microenvironment and predict prognosis in breast cancer.
该研究包含生物信息学分析(TCGA、GEO、scRNA-seq)和体外细胞实验(敲低PI4KB后检测增殖、迁移),缺少体内实验及机制验证。
MDA-MB-231乳腺癌细胞系 MCF-7乳腺癌细胞系 TCGA-BRCA队列 GEO GSE20711队列
构建PRRS的6个基因(PI4KB、HSPB8、USP10、LCK、GPR153、NT5C)及其系数 高低风险分组基于中位风险评分 siRNA敲低PI4KB的转染试剂(Yeasen) CCK-8实验细胞接种密度(2000细胞/孔) Transwell实验细胞浓度(1.2×10^5细胞/mL)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定与乳腺癌总生存期显著相关的副凋亡相关基因,并建立风险评分模型。
使用TCGA-BRCA队列,通过单因素Cox回归筛选出12个与总生存期相关的副凋亡基因,再经LASSO回归和多因素Cox回归确定6个关键基因(PI4KB、HSPB8、USP10、LCK、GPR153、NT5C),构建PRRS。
评估PRRS在乳腺癌患者中的预后预测能力。
在TCGA-BRCA训练队列和GEO外部验证队列中,根据中位风险评分将患者分为高低风险组,通过Kaplan-Meier生存曲线和ROC曲线评估模型性能。
探究高低风险组间的生物学功能和通路差异。
使用limma包识别高低风险组之间的差异表达基因(DEGs),并通过GO和KEGG富集分析揭示相关生物学过程。
结合临床参数和PRRS构建列线图以估计乳腺癌患者的生存概率。
采用单因素和多因素Cox回归分析临床病理指标与PRRS对预后的影响,构建预后列线图,并用ROC曲线和校准曲线评估模型性能。
比较高低风险组的肿瘤免疫微环境特征。
利用CIBERSORT、ssGSEA、ESTIMATE和TIDE等算法评估免疫细胞浸润、免疫评分和肿瘤纯度。
探究PRRS与不同药物敏感性的关联。
使用oncoPredict包估算化疗药物和靶向药物的IC50值,并比较高低风险组间的差异。
在单细胞水平验证副凋亡相关基因的表达分布。
使用EMTAB8107数据集进行质量控制、UMAP聚类和细胞类型注释,分析六个关键基因在不同细胞类型中的表达。
验证PI4KB对乳腺癌细胞增殖和迁移的影响。
在MDA-MB-231和MCF-7细胞中通过siRNA敲低PI4KB,通过CCK-8、集落形成、transwell和划痕实验检测细胞增殖、迁移和侵袭能力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Hyclone | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 细胞转染 | siRNA转染试剂 | Yeasen | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio | -- |
| 蛋白酶抑制剂 | Biotek | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | -- | -- | |
| 抗PI4KB抗体 | Proteintech | 13247-1-AP | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| HRP标记二抗 | -- | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂 | Biosharp | -- |
| 集落形成实验 | 结晶紫 | Solarbio | #G1063 |
| Transwell实验 | Transwell小室 | FALCON | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 数据获取与处理 | TCGA-BRCA队列的样本排除标准(生存时间<30天) 阅读提示:Methods 2.1 Data collection |
| 构建PRRS模型 | 六个基因的LASSO系数(USP10: 0.00585764541858519, NT5C: -0.0187881349300088, HSPB8: 0.00132173365899394, LCK: -0.019757663, PI4KB: 0.00551101330066126, GPR153: -0.0304533563586096) 阅读提示:Results 3.2 Construction and validation of PRRS |
| 细胞培养 | 细胞系(MDA-MB-231, MCF-7)、培养基(RPMI-1640)、FBS浓度(10%)、青霉素-链霉素(1%)、培养条件(37°C, 5% CO2) 阅读提示:Methods 2.9 Cell lines, cell culture, and cell transfection |
| siRNA敲低 | 转染试剂品牌(Yeasen),siRNA序列未提供 阅读提示:Methods 2.9 Cell lines, cell culture, and cell transfection |
| CCK-8实验 | 接种密度(2000细胞/孔),检测时间点(0,24,48,72,96h),CCK-8浓度(10%),孵育时间(2h),检测波长(450nm) 阅读提示:Methods 2.11 Cell viability assay |
| 集落形成实验 | 接种密度(300细胞/孔,6孔板),培养时间(14天),固定液(4%多聚甲醛,15min),染色液(0.1%结晶紫,15min) 阅读提示:Methods 2.12 Colony formation assay |
| Transwell实验 | 细胞浓度(1.2×10^5细胞/mL),上室体积(200μL),下室培养基(600μL),培养时间(24h),固定(4%多聚甲醛,20min),染色(0.1%结晶紫,20min) 阅读提示:Methods 2.13 Transwell assay |
| 划痕实验 | 细胞汇合度(≥90%),划痕工具(200μL移液枪头),成像时间(0h,24h,48h) 阅读提示:Methods 2.14 Wound healing assay |