建立体内 ICH 模型及 Apelin-13 干预
评估 Apelin-13 对 ICH 后脑损伤、脑水肿和神经功能的影响
雄性 C57BL/6 小鼠经胶原酶注射建立 ICH 模型,术后立即及每日侧脑室注射 Apelin-13(60 μg/kg),通过 H&E 染色、脑含水量测定、行为学测试评估效果。
Apelin-13 Attenuates Blood-Brain Barrier Dysfunction Following Intracerebral Hemorrhage via Targeting the Keap1/Nrf2 Signaling.
包含体内胶原酶诱导ICH模型和体外血红素刺激bEnd.3细胞模型,并通过shRNA敲低APJ和Nrf2进行功能验证和机制验证。
胶原酶诱导的脑出血小鼠模型 血红素刺激的bEnd.3小鼠脑内皮细胞单层模型
脑出血模型:胶原酶VII(0.075 U)注射至右侧纹状体 Apelin-13给药:侧脑室注射60 μg/kg,术后立即及每日一次 体外模型:bEnd.3细胞暴露于80 μM血红素 关键通路验证:APJ shRNA和Nrf2 shRNA处理 BBB完整性评估:Evans blue渗漏、TEER、紧密连接蛋白水平
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估 Apelin-13 对 ICH 后脑损伤、脑水肿和神经功能的影响
雄性 C57BL/6 小鼠经胶原酶注射建立 ICH 模型,术后立即及每日侧脑室注射 Apelin-13(60 μg/kg),通过 H&E 染色、脑含水量测定、行为学测试评估效果。
验证 Apelin-13 是否减轻 ICH 诱导的 BBB 破坏
通过 Evans blue 渗漏实验、Western blot 和免疫荧光检测紧密连接蛋白(ZO-1、occludin)和 MMP-9 的表达。
验证 Apelin-13 对血红素诱导的内皮细胞损伤的保护作用
bEnd.3 细胞用不同浓度 Apelin-13 预处理过夜,然后暴露于血红素(80 μM)24小时,通过 CCK-8、Calcein-AM/PI 染色、Western blot 等检测细胞活力和凋亡相关蛋白。
验证 Apelin-13 是否保护内皮屏障功能并减轻氧化应激
bEnd.3 单层细胞经血红素和 Apelin-13 处理后,测量 TEER、紧密连接蛋白表达、MMP-9 分泌、ROS 水平和抗氧化酶活性。
探究 Apelin-13 是否通过 APJ 激活 Keap1/Nrf2 信号通路
通过 Western blot 检测 Nrf2 核/质分布、Keap1、NQO1、HO-1 的表达,并用 APJ shRNA 敲低 APJ,观察对 Apelin-13 激活 Nrf2 通路的影响。
证明 Nrf2 是 Apelin-13 发挥保护作用的关键下游分子
使用 Nrf2 shRNA 敲低 Nrf2,检测 Apelin-13 对氧化应激、凋亡和 BBB 功能保护作用的丧失情况。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | 胶原酶 VII | Sigma | -- |
| 药物处理 | Apelin-13 | Santa Cruz | -- |
| BBB通透性检测 | 伊文思蓝 | Sigma | -- |
| 细胞培养 | 血红素 | Sigma | -- |
| bEnd.3细胞 | Procell | -- | |
| Transwell插入小室 | Corning Life Sciences | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂 | GlpBio | -- |
| Western blot | ZO-1抗体 | Proteintech | 21,773–1-AP |
| Occludin抗体 | Abcam | ab216327 | |
| MMP-9抗体 | Abcam | ab283575 | |
| Bcl2抗体 | Abcam | ab182858 | |
| Bax抗体 | Cell Signaling | 14796S | |
| Cleaved caspase-3抗体 | R&D systems | MAB835 | |
| Nrf2抗体 | Proteintech | 16,396–1-AP | |
| Keap1抗体 | Proteintech | 10,503–2-AP | |
| NQO1抗体 | Affinity | DF6437 | |
| HO-1抗体 | Huabio | ER1802-73 | |
| APJ抗体 | Santa Cruz | sc-517,300 | |
| β-Actin抗体 | BioWorld | AP0060 | |
| Histone H3抗体 | Proteintech | 17,168–1-AP | |
| 山羊抗兔IgG(HRP) | Abcam | ab205718 | |
| 山羊抗小鼠IgG(HRP) | Abcam | ab205719 | |
| 免疫荧光 | ZO-1抗体 | Abcam | ab221547 |
| CD31抗体 | R&D systems | AF3628 | |
| Nrf2抗体 | Proteintech | 16,396–1-AP | |
| Dylight 488 山羊抗兔IgG | Abbkine | A23220 | |
| IFKine Red 驴抗山羊IgG | Abbkine | A24431 | |
| ROS检测 | 活性氧检测试剂盒 | Jiancheng Technology | -- |
| 生化分析 | MDA检测试剂盒 | Jiancheng Technology | -- |
| SOD检测试剂盒 | Jiancheng Technology | -- | |
| GSH检测试剂盒 | Jiancheng Technology | -- | |
| GSH-Px检测试剂盒 | Jiancheng Technology | -- | |
| CAT检测试剂盒 | Jiancheng Technology | -- | |
| RNA提取 | 总RNA提取试剂盒 | BioFlux | -- |
| 逆转录 | 逆转录试剂盒 | TaKaRa | -- |
| qRT-PCR | SYBR Green PCR预混液 | TaKaRa | -- |
| TEER测量 | 细胞电阻仪 RE1600 | Beijing Kingtech Technology | -- |
| 酶标仪 | SpectraMax M5/M5e 分光光度计 | Molecular Devices | -- |
| 多功能酶标仪 | Feyond-A400 多功能酶标仪 | Aosheng Instrument | -- |
| 成像系统 | Amersham imager 600 成像系统 | GE Life Sciences | -- |
| 共聚焦显微镜 | Leica STELLARIS 5 SR 激光共聚焦显微镜 | Leica | -- |
| 切片扫描仪 | 切片扫描仪(G Cell) | G Cell | -- |
| qRT-PCR | QuantStudio 5 系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 体内ICH模型 | 雄性 C57BL/6 小鼠(6-8周龄)来源;胶原酶VII剂量和注射部位;Apelin-13剂量和给药方式 阅读提示:参见 Materials and Methods 2.1-2.2 及 Figure 1B |
| 脑水肿评估 | 脑组织分区(同侧皮层、对侧皮层、同侧基底节、对侧基底节、小脑);干燥条件(110°C,24小时) 阅读提示:参见 Materials and Methods 2.5 |
| BBB通透性评估 | Evans blue 浓度和注射体积(2%,4 mL/kg);注射后3小时取材;检测波长610 nm 阅读提示:参见 Materials and Methods 2.6 及 Figure 2 |
| 体外细胞模型 | bEnd.3 细胞来源;培养条件(transwell 插入物规格);血红素浓度(80 μM)和处理时间(24小时);Apelin-13预处理浓度和时间(0.5, 1, 2 μM,过夜) 阅读提示:参见 Materials and Methods 2.7-2.8 及 Figure 3A,4A |
| 基因敲低实验 | shRNA 靶序列(特异性信息未在正文中提供);转染时间(48小时);对照 shRNA 质粒 阅读提示:参见 Materials and Methods 2.9 及 Figure S1, S2 |
| Western blot | 抗体稀释比例;蛋白上样量;膜封闭条件(5%脱脂牛奶);二抗孵育条件 阅读提示:参见 Materials and Methods 2.10 及 Table 1 |
| ROS及氧化应激指标检测 | DCFH-DA 浓度(10 μM)和孵育时间(30分钟);ROS检测波长(激发488 nm);MDA、SOD、GSH、GSH-Px、CAT检测试剂盒来源 阅读提示:参见 Materials and Methods 2.13, 2.15 及 Figure 5 |