Rbm25表达模式分析
检测Rbm25在ESCs和体细胞中的表达水平及其与多能性的相关性。
通过RNA-seq和Western blot检测Rbm25在野生型ESCs和不同细胞中的表达,以及分化过程中的表达变化。
Rbm25 governs embryonic stem cell identity and fate through transcriptional regulation of pluripotency and epigenetic programs.
包含细胞系模型(E14、Rosa26-CreERT2等)、功能验证(敲低/敲除、分化、2CLC转化)、机制验证(CUT&Tag、荧光素酶报告基因、WGBS)多个独立证据层级。
小鼠胚胎干细胞(E14TG2a) Rosa26-CreERT2小鼠胚胎干细胞 Oct4GiP报告基因细胞系 2C::tdTomato报告基因细胞系
Rbm25敲低/敲除效率及特异性 ESC培养条件(含LIF、血清等) 4-OHT处理浓度(0.1 μM)和时间(2天) EB形成条件和时间 CUT&Tag及RNA-seq分析参数
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
检测Rbm25在ESCs和体细胞中的表达水平及其与多能性的相关性。
通过RNA-seq和Western blot检测Rbm25在野生型ESCs和不同细胞中的表达,以及分化过程中的表达变化。
验证Rbm25在维持ESC自我更新中的必要性。
通过shRNA敲低和CRISPR-Cas9条件性敲除Rbm25,观察ESC形态、增殖、碱性磷酸酶活性、多能性标志物表达及分化能力的变化。
分析Rbm25缺失对ESC基因表达谱的影响。
对Rbm25 WT和KO ESCs进行RNA-seq,鉴定差异表达基因,并进行GO和GSEA分析。
确定RBM25在ESC基因组上的结合位点及其与转录调控的关系。
使用CUT&Tag技术绘制RBM25全基因组结合图谱,并分析与基因表达、组蛋白修饰及转录因子的共定位。
验证RBM25是否能直接激活多能性和DNA甲基化相关基因的转录。
通过CUT&Tag-qPCR、双荧光素酶报告基因实验,检测RBM25在靶基因启动子区的结合及其转录激活能力。
探究Rbm25缺失对ESC全局DNA甲基化的影响。
通过HPLC检测全局5mC水平,WGBS检测单碱基分辨率甲基化变化,并用COBRA和亚硫酸盐测序验证特定区域。
检验Rbm25缺失是否促进ESC向2C样细胞转化。
利用2C::tdTomato报告系统检测tdTomato阳性细胞比例,并分析2C标记基因(Zscan4a、Zfp352等)和滋养层标志物表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Servicebio | G4511 |
| 胎牛血清 | BI | 04-002-1A | |
| 白血病抑制因子 | Prospec | cyt-645 | |
| 非必需氨基酸 | Gibco | 11140-050 | |
| β-巯基乙醇 | RHAWN | R054186 | |
| 明胶 | Sigma | V900863 | |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| AML12专用培养基 | Pricella | CM-0602 | |
| 质粒构建 | T4多核苷酸激酶 | Takara | 2021A |
| pLKO.1载体 | -- | -- | |
| pX330载体 | -- | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000转染试剂 | Invitrogen | 11668019 |
| 药物处理 | 4-羟基他莫昔芬 | Sigma | H6278 |
| 慢病毒制备 | psPAX2包装质粒 | -- | -- |
| pMD2.G包膜质粒 | -- | -- | |
| RNA提取 | RNA提取试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | K0731 |
| 逆转录 | cDNA合成试剂盒 | TransGen Biotech | AH341 |
| RT-qPCR | qPCR预混液 | TransGen Biotech | AQ601 |
| LightCycler 480 II实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| RNA-seq | RNA-seq文库制备试剂盒 | Illumina | RS-122-2001 |
| NovaSeq测序仪 | Illumina | -- | |
| Western blot | 蛋白酶抑制剂混合物 | APExBIO | K1007 |
| 硝酸纤维素膜 | -- | -- | |
| AP staining | 碱性磷酸酶染色试剂盒 | Beyotime | C3206 |
| DNA提取 | DNA提取试剂盒 | TIANGEN | DP304 |
| HPLC | 核酸酶P1 | Sigma | -- |
| 牛小肠碱性磷酸酶 | NEB | -- | |
| 1200系列高效液相色谱系统 | Agilent Technologies | -- | |
| 亚硫酸盐测序 | 亚硫酸盐转化试剂盒 | Vazyme | EM101 |
| TA克隆 | DNA纯化试剂盒 | Magen | D2111-03 |
| TA克隆试剂盒 | Tsingke | TSV-007VS | |
| COBRA | TaqI限制酶 | Takara | 1189A |
| BstUI限制酶 | NEB | R0518V | |
| HpyCH4IV限制酶 | Thermo Fisher Scientific | ER1141 | |
| WGBS | NovaSeq6000测序仪 | Illumina | -- |
| ELISA | SAM酶联免疫吸附测定试剂盒 | FANKEW | F30752-B |
| CUT&Tag | CUT&Tag试剂盒 | Vazyme | TD904 |
| RBM25抗体 | Santa Cruz | sc-374271 | |
| DNA文库制备试剂盒 | Vazyme | TD202 | |
| 双荧光素酶报告基因实验 | KOD DNA聚合酶 | TOYOBO | KFX-101 |
| pGL4载体 | -- | -- | |
| pRL-TK对照载体 | -- | -- | |
| 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | E1910 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | ESC培养条件:0.1%明胶包被、DMEM+10% FBS、1000 U/mL LIF、1% NEAA、0.1 mM β-ME,37°C/5% CO2 阅读提示:Methods - Cell culture |
| Rbm25敲低 | shRNA序列、慢病毒包装(psPAX2/pMD2.G)、嘌呤霉素筛选浓度和时间(2 μg/mL, 2天),4天后收获 阅读提示:Methods - Lentivirus preparation and shRNA knockdown; Table S4 |
| Rbm25敲除 | CRISPR-Cas9敲除策略(loxP位点插入外显子5两侧)、4-OHT处理浓度(0.1 μM)和时间(2天) 阅读提示:Methods - Generation of Rbm25 CKO cell line; Figure 2A |
| EB形成 | 起始细胞密度(1.0-1.5×10^5 cells/mL)、EB培养基成分(DMEM+20% FBS等)、超低附着培养皿 阅读提示:Methods - EB formation |
| CUT&Tag | 细胞数量(~1×10^5)、一抗浓度(2 μg RBM25抗体)、Tn5转座酶、测序平台 阅读提示:Methods - CUT&Tag |
| RNA-seq | 生物学重复数、差异表达筛选阈值(adjusted p<0.05, |log2FC|≥1) 阅读提示:Methods - RNA isolation, reverse transcription, qPCR, and RNA-seq; Bioinformatics analysis |
| WGBS | 生物学重复数、甲基化差异判定标准(p<0.05, alpha>0.15) 阅读提示:Methods - DNA extraction, HPLC, bisulfite sequencing, COBRA, and WGBS; Bioinformatics analysis |