Muse细胞分离与鉴定
从人脐带间充质干细胞中分离Muse细胞并验证其纯度
使用SSEA3抗体和免疫磁珠分选Muse细胞,并通过流式细胞术检测SSEA-3和CD105双阳性比例。
Intranasally administered muse cells attenuate neurodegeneration in Parkinson's disease.
包含体外BBB模型、细胞迁移、Western blot、免疫荧光、动物模型(A53T小鼠)、行为学实验等多个独立验证层级,并有功能验证和机制验证。
体外血脑屏障模型(共培养星形胶质细胞、周细胞和HBMEC) 小鼠神经元细胞 A53T转基因帕金森病小鼠模型 C57BL/6小鼠(正常对照)
TNF-α浓度选择:300 ng/ml(用于处理神经元细胞) S1P浓度:高浓度10 µM,低浓度10 nM S1PR2拮抗剂JTE-013的使用 Muse细胞分离:SSEA3免疫磁珠分选,纯度91.1% 鼻内给药细胞数:1×10^6个细胞
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从人脐带间充质干细胞中分离Muse细胞并验证其纯度
使用SSEA3抗体和免疫磁珠分选Muse细胞,并通过流式细胞术检测SSEA-3和CD105双阳性比例。
建立体外BBB模型,并评估不同浓度S1P对通透性和紧密连接蛋白的影响
将星形胶质细胞、周细胞和HBMEC共培养于Transwell小室,构建BBB模型,然后给予高浓度S1P(10 µM)、低浓度(10 nM)及高浓度S1P联合JTE-013处理,检测TEER、RhoA、β-Catenin表达和细胞骨架变化。
比较Muse细胞和非Muse细胞在体外BBB模型中的跨内皮迁移能力,并验证S1PR2的作用
将PKH-26标记的Muse和非Muse细胞加入BBB模型上室,添加不同浓度S1P,培养48小时后观察迁移细胞数,并比较JTE-013处理的效果。
评估Muse细胞通过鼻内给药能否归巢到脑部并改善PD相关病理
对A53T小鼠经鼻内给予PKH-26标记的Muse细胞、非Muse细胞或Muse+JTE-013细胞,48小时后用小动物活体成像观察脑部分布,随后进行行为学实验和组织学分析。
检测Muse细胞移植对多巴胺能神经元的保护作用
通过免疫荧光染色检测TH和NeuN阳性细胞,Western blot检测脑内S1P、TNF-α、BDNF、GDNF表达,H&E染色观察组织学变化。
评估Muse细胞移植对PD小鼠运动功能的改善
进行转棒实验和悬尾实验,记录爬杆时间(T-turn和T-total)和悬挂时间。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 间充质干细胞培养基 | Huayan Biotechnology | RMZ112 |
| 间充质干细胞无血清培养基添加物 | -- | NC0106.S | |
| 青霉素-链霉素-庆大霉素溶液 | Solarbio | P1410 | |
| DMEM培养基 | Vivacell | 11995065 | |
| 热灭活胎牛血清 | Gibco | C3113 | |
| SSEA3抗体 | -- | -- | |
| 细胞分选 | 免疫磁珠 | Miltenyi Biotec | 130-047-401 |
| 细胞活性检测 | CCK-8试剂盒 | Beyotime | C0041 |
| 体外BBB模型构建 | 多聚赖氨酸溶液 | Beyotime | C0312 |
| S1P处理 | 1-磷酸鞘氨醇 | -- | -- |
| JTE-013 | -- | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | -- | -- | |
| PVDF或硝酸纤维素膜 | -- | -- | |
| ECL化学发光试剂 | -- | -- | |
| RhoA活性检测 | G-LISA RhoA激活检测试剂盒 | Cytoskeleton Inc. | BK121 |
| 动物实验 | 异氟烷 | -- | -- |
| 细胞标记 | PKH-26 | -- | -- |
| 免疫荧光 | 鬼笔环肽 | -- | -- |
| DAPI | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| Muse细胞分离与鉴定 | SSEA3抗体孵育时间(60分钟)、免疫磁珠孵育时间(15分钟)、磁珠类型(Miltenyi Biotec Cat No. 130-047-401),流式检测SSEA-3和CD105双阳性率 阅读提示:Materials and Methods: Cell source |
| 体外BBB模型构建 | 星形胶质细胞1×10^5个,周细胞2×10^4个,HBMEC 1×10^5个;细胞比例(Astrocyte:HBMEC:Pericytes=5:5:1);培养时间(3小时贴壁,至90%融合) 阅读提示:Materials and Methods: Establishment of an in vitro blood-brain barrier model |
| S1P处理与迁移实验 | S1P浓度:高浓度10 µM,低浓度10 nM;JTE-013使用;细胞标记PKH-26;培养时间48小时 阅读提示:Materials and Methods: Transmigration assay of muse cells; Figure 3 legend |
| 动物实验 | 小鼠品系:A53T转基因小鼠(12月龄,雌性)和C57BL/6小鼠;细胞剂量1×10^6个;给药途径:鼻内给药;观察时间(48小时后成像,2周后行为学) 阅读提示:Materials and Methods: Experimental animals; Small animal in vivo imaging |
| 神经保护评估 | 检测指标:TH、NeuN、S1P、TNF-α、BDNF、GDNF;脑区:黑质致密部(SNc) 阅读提示:Materials and Methods: Immunofluorescence; Western blot; Figure 5 legend |
| 行为学实验 | 转棒实验:记录转身时间和总时间,每只小鼠3-5次试验取平均值;悬尾实验:悬挂时间,最大300秒 阅读提示:Materials and Methods: Behavioral experiment |