建立动物模型和细胞模型
构建T9脊髓挫伤小鼠模型和LPS+IFN-γ刺激的BV2小胶质细胞模型,以模拟SCI的体内和体外病理环境。
小鼠T9节段脊髓挫伤模型(50 kdyn撞击),分为Sham、Sham+SA、SCI、SCI+SA、SCI+ML385、SCI+SA+ML385组;BV2细胞用LPS(100 ng/mL)+IFN-γ(20 ng/mL)刺激。
Sappanone A Promotes Motor Function Recovery in Spinal Cord Injury Mice by Inhibiting Microglial M1 Polarization via Activation of the Keap1/Nrf2 Pathway.
包含体内T9挫伤小鼠模型和体外LPS+IFN-γ刺激BV2细胞两个独立证据层级,并进行了行为学、组织学、分子生物学和机制验证(ML385挽救实验)。
T9脊髓挫伤小鼠模型 LPS+IFN-γ刺激的BV2小胶质细胞
SA给药剂量:20 mg/kg,腹腔注射,每日一次,持续28天 ML385给药剂量:30 mg/kg,腹腔注射,每日一次 BV2细胞处理:LPS 100 ng/mL + IFN-γ 20 ng/mL,SA浓度10/20/40 μM/mL,处理24小时 行为学评估时间点:术后1、3、7、14、21、28天 组织学检测时间点:术后28天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建T9脊髓挫伤小鼠模型和LPS+IFN-γ刺激的BV2小胶质细胞模型,以模拟SCI的体内和体外病理环境。
小鼠T9节段脊髓挫伤模型(50 kdyn撞击),分为Sham、Sham+SA、SCI、SCI+SA、SCI+ML385、SCI+SA+ML385组;BV2细胞用LPS(100 ng/mL)+IFN-γ(20 ng/mL)刺激。
通过行为学测试评估SA对SCI小鼠运动功能恢复的影响。
采用BMS评分、足迹分析和游泳试验在术后多个时间点评估小鼠后肢运动功能。
评估SA对SCI后脊髓组织损伤、髓鞘保留和神经元存活的影响。
术后28天取脊髓组织,进行HE染色、尼氏染色和LFB染色,分别评估病变面积、神经元数量和髓鞘完整性。
检测SA对体内和体外模型中促炎和抗炎因子表达的影响。
通过Western blot检测iNOS表达,ELISA检测TNF-α、IL-1β、IL-10、IL-4蛋白水平,qRT-PCR检测mRNA水平。
评估SA对小胶质细胞活化及M1极化的影响。
通过免疫荧光和流式细胞术检测CD11b+CD68+活化小胶质细胞和CD68+iNOS+或CD68+CD86+ M1型小胶质细胞的比例。
评估SA对体内和体外模型中氧化应激的影响。
使用DCFH-DA荧光探针检测细胞内ROS水平,并用氧化应激检测试剂盒检测GSH、SOD和MDA含量。
验证SA的作用机制是否通过Keap1/Nrf2通路介导。
Western blot和免疫荧光检测Keap1和Nrf2表达;使用Nrf2抑制剂ML385进行体内和体外挽救实验,观察其对SA效果的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物造模 | IH-0400撞击器 | -- | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | HyClone | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 流式细胞术 | CD11b抗体 | eBioscience | 63-0112-82 |
| CD86抗体 | eBioscience | 17-0862-82 | |
| CD68抗体 | eBioscience | 25-0681-82 | |
| FACSCanto流式细胞仪 | BD | -- | |
| Western blot | iNOS抗体 | Proteintech | 18 985-1-AP |
| Nrf2抗体 | Proteintech | 16 396-1-AP | |
| Keap1抗体 | Proteintech | 10 503-2-AP | |
| β-肌动蛋白抗体 | Servicebio | GB12001/GB11001 | |
| GAPDH抗体 | ORIGENE | TA-08 | |
| 辣根过氧化物酶标记二抗 | ORIGENE | ZB-2305/ZB-2301 | |
| qRT-PCR | TRIzol试剂 | -- | -- |
| PrimeScript快速逆转录试剂盒 | -- | -- | |
| TB Green预混试剂Ex Taq II | -- | -- | |
| ELISA | 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | BOSTER | EK0527 |
| 小鼠IL-1β ELISA试剂盒 | BOSTER | EK0394 | |
| 小鼠IL-10 ELISA试剂盒 | BOSTER | EK0417 | |
| 小鼠IL-4 ELISA试剂盒 | BOSTER | EK0405 | |
| 免疫荧光 | FITC标记的山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab150115 |
| Alexa Fluor 555标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab150078 | |
| ROS检测 | DCFH-DA荧光探针 | -- | -- |
| Hoechst染色 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、体重、饲养条件;T9椎板切除术和撞击力(50 kdyn) 阅读提示:Materials and Methods 2.2 |
| 药物处理 | SA给药剂量(20 mg/kg)、给药方式(腹腔注射)、给药频率(每日一次)、开始和持续时间(术后第1天起28天);ML385给药剂量(30 mg/kg) 阅读提示:Materials and Methods 2.2 |
| 细胞处理 | BV2细胞来源和培养条件;LPS浓度(100 ng/mL)、IFN-γ浓度(20 ng/mL)、处理时间(24小时);SA浓度(10/20/40 μM/mL)、ML385浓度(5 nM/mL) 阅读提示:Materials and Methods 2.3 |
| 行为学评估 | BMS评分时间点(术后1、3、7、14、21、28天)和评分方法;足迹分析和游泳试验的实施条件和评分标准 阅读提示:Materials and Methods 2.4-2.6 |
| 组织学分析 | 组织取材时间点(术后7天和28天)和方式;切片厚度(10 μm);HE、尼氏、LFB染色的具体步骤 阅读提示:Materials and Methods 2.7-2.8 |
| 流式分析 | 单细胞悬液的制备方法;抗体(CD11b、CD86、CD68)的克隆号和荧光标记;染色和固定步骤 阅读提示:Materials and Methods 2.9 |
| 分子生物学检测 | Western blot抗体(iNOS, Nrf2, Keap1, β-actin, GAPDH)的稀释比例;qRT-PCR引物序列和内参;ELISA试剂盒的品牌和货号 阅读提示:Materials and Methods 2.10-2.12 |
| 氧化应激检测 | DCFH-DA孵育时间和浓度;GSH、SOD、MDA检测试剂盒的步骤 阅读提示:Materials and Methods 2.14-2.15 |