数据获取与处理
获取卵巢癌转录组数据并合并处理,为后续差异表达分析做准备。
从GEO数据库获取6个卵巢癌微阵列数据集(GSE18521等),包含352个肿瘤和74个非肿瘤组织,使用R包"Sva"合并并校正批次效应。
Development of a diagnostic model for ovarian cancer based on machine learning algorithms and functional analysis of key biomarker SOX17.
包含生物信息学分析(DEG筛选、模型构建)和体外细胞功能实验(敲低SOX17后增殖、迁移检测),但缺乏动物模型和临床验证,机制研究较浅。
卵巢癌细胞系SKOV3 卵巢癌细胞系A2780 卵巢癌组织样本 癌旁非肿瘤组织样本
模型基因:CD24、CLEC4M、SOX17、ADH1C、CHRDL1;数据集:GSE18521、GSE26712、GSE29450、GSE38666、GSE66957、GSE105437 DEG筛选标准:|log2FC|>2,调整后P<0.05 SOX17敲低效率:mRNA水平降低>70%(P<0.005) 细胞实验条件:SKOV3用McCoy's 5A培养基,A2780用DMEM,均含10%FBS和1%双抗
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取卵巢癌转录组数据并合并处理,为后续差异表达分析做准备。
从GEO数据库获取6个卵巢癌微阵列数据集(GSE18521等),包含352个肿瘤和74个非肿瘤组织,使用R包"Sva"合并并校正批次效应。
筛选卵巢癌与癌旁组织之间的差异表达基因。
使用Limma包进行差异表达分析,火山图和热图展示结果。
了解DEGs的生物学功能及肿瘤免疫微环境特征。
使用clusterProfiler和enrichplot进行GO和KEGG富集分析;STRING数据库构建PPI网络;CIBERSORT评估22种免疫细胞浸润比例。
筛选用于构建诊断模型的关键基因。
通过F检验、LASSO回归、Pearson相关分析筛选关键基因,最终确定5个非冗余基因。
比较11种机器学习算法,选择最优模型用于卵巢癌诊断。
将数据随机分为训练集(70%)和验证集(30%),使用10折交叉验证和ROC、PR、校准曲线、DCA、学习曲线评估模型性能。
验证SOX17在卵巢癌组织中的表达及其对细胞增殖和迁移的影响。
使用RT-qPCR和Western blot检测SOX17在卵巢癌和癌旁组织中的表达;在SKOV3和A2780细胞中敲低SOX17,通过CCK-8、克隆形成、划痕和Transwell实验检测增殖和迁移能力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | McCoy's 5A培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 杜尔贝科改良伊格尔培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素 | ZQXZBIO | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RNA提取 | EpiQuik总RNA快速提取试剂盒 | Feijie Bio-Technology | -- |
| 逆转录 | High Capacity cDNA逆转录试剂盒 | Vazyme Biotech | -- |
| qPCR | Blaze Taq qPCR预混液 | -- | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime Biotechnology | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio Life Sciences | -- | |
| PVDF膜 | Merck Millipore | -- | |
| 抗SOX17抗体 | ABclonal Biotechnology | -- | |
| 抗GAPDH抗体 | ABclonal Biotechnology | -- | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG二抗 | -- | -- | |
| 增强化学发光底物 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| CCK-8实验 | CCK-8试剂 | MedChemExpress | -- |
| 克隆形成实验 | 0.1%结晶紫 | Beyotime Biotechnology | -- |
| Transwell实验 | Transwell小室(8 μm孔径) | Corning Costar | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 差异表达基因分析 | DEG筛选标准:|log2FC|>2,调整后P<0.05;数据集来源:GSE18521, GSE26712, GSE29450, GSE38666, GSE66957, GSE105437(共352肿瘤,74非肿瘤)。 阅读提示:见Materials and Methods中"Identification of differentially expressed genes (DEGs)"部分。 |
| 机器学习模型构建 | 数据划分:训练集70%,验证集30%;交叉验证:10折;算法:11种(如Naive Bayes, Logistic Regression等);评估指标:ROC、PR、校准曲线、DCA、学习曲线。 阅读提示:见Materials and Methods中"Establishment and validation of the optimal diagnostic model"部分。 |
| 细胞培养 | 细胞系:SKOV3(McCoy's 5A培养基)、A2780(DMEM培养基);培养基添加:10%FBS、1%青霉素/链霉素;培养条件:37°C,5%CO2。 阅读提示:见Materials and Methods中"Cell culture"部分。 |
| 细胞转染 | siRNA序列:si-SOX17-1283: 5'-GCACGGAAUUUGAACAGUA-3';si-SOX17-424: 5'-GCUUUCAUGGUGUGGGCUA-3';阴性对照:5'-UUCUCCGAACGUGUCACGU-3';转染试剂:Lipofectamine 3000;检测时间:转染后24小时。 阅读提示:见Materials and Methods中"Cell transfection"部分。 |
| SOX17功能实验 | CCK-8:每孔3000细胞,加入10 μl CCK-8试剂,孵育2小时,测450nm吸光度;克隆形成:每孔3000细胞,培养14天;划痕:细胞长至80%融合,200 μl枪头划痕,0和24小时拍照;Transwell:每孔2×10^5细胞,8μm孔径,培养24小时。 阅读提示:见Materials and Methods中"Cell counting kit-8 (CCK-8) analysis"、"Colony formation"、"Transwell assay"、"Wound-healing assay"部分。 |