DANCR通过IGF2BP2/HK2轴增强巨噬细胞糖酵解重编程促进脓毒症心肌病

DANCR promotes septic cardiomyopathy by enhancing macrophage glycolytic reprogramming via the IGF2BP2/HK2 axis.

作者信息Chunhui Ma, Shaoyu Liu, Yu Zhao, Hong Liu, Xuguang Zhang
PMID41394397
发布时间2025-11-27
DOI10.3389/fcell.2025.1628915

实验完整度

体外细胞实验,包含功能验证(siDANCR、oe-HK2、2-DG)和机制验证(RIP、RNA稳定性、FISH),但缺乏体内动物模型。

主要模型

THP-1来源的巨噬细胞 AC16人心肌细胞

重点核对

THP-1细胞用100 ng/mL PMA刺激24小时分化为巨噬细胞 LPS浓度为50 ng/mL,刺激48小时 siDANCR转染浓度为50 nM HK2过表达质粒用量为1 μg 2-DG处理浓度为10 mM,体积10 μL

摘要

背景:巨噬细胞的代谢重编程塑造了其表型可塑性,并促进了脓毒症心肌病的进展。本研究探讨了DANCR在调节巨噬细胞糖酵解中的作用,从而阐明其加重脓毒症心肌病的机制。方法:THP-1来源的巨噬细胞经LPS刺激,并进行DANCR敲低或HK2过表达。评估炎症细胞因子水平、M1极化和糖酵解活性。处理后的巨噬细胞的条件培养基用于处理心肌细胞。机制分析包括生物信息学、RNA免疫沉淀(RIP)和RNA稳定性实验,以确定DANCR的下游靶点。结果:DANCR沉默减弱了巨噬细胞的M1极化和活性,改善了心肌细胞活力并减少凋亡。机制上,DANCR通过增强IGF2BP2介导的mRNA稳定性上调HK2表达。HK2过表达逆转了DANCR敲低的保护作用,而糖酵解的药理学抑制抵消了HK2过表达的作用,证实了DANCR/IGF2BP2/HK2轴的参与。结论:DANCR通过IGF2BP2/HK2轴增强巨噬细胞糖酵解重编程促进脓毒症心肌病。靶向该通路可能提供一种新的治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
DANCR是否通过调节巨噬细胞糖酵解重编程影响M1极化,从而促进脓毒症心肌病的进展?
核心机制
DANCR通过增强IGF2BP2介导的HK2 mRNA稳定性,上调HK2表达,促进巨噬细胞糖酵解,诱导M1极化,进而加重心肌细胞损伤。
主要证据
体外实验中,siDANCR抑制M1极化和糖酵解,改善心肌细胞活力;HK2过表达逆转siDANCR效应,2-DG抑制逆转HK2过表达效应;RIP和RNA稳定性实验证实DANCR/IGF2BP2/HK2轴。
研究意义
靶向DANCR可能为脓毒症心肌病提供新的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

细胞培养与分化

建立体外巨噬细胞模型,用于研究DANCR在脓毒症心肌病中的作用。

THP-1细胞在含有β-巯基乙醇、FBS和青霉素-链霉素的RPMI-1640培养基中培养,用100 ng/mL PMA刺激24小时分化为巨噬细胞。AC16心肌细胞在DMEM/F12培养基中培养。

2

LPS刺激和DANCR敲低

模拟脓毒症炎症环境,并验证DANCR敲低对巨噬细胞M1极化和糖酵解的影响。

THP-1来源的巨噬细胞用50 ng/mL LPS刺激48小时,并转染siDANCR或siNC。检测M1/M2标志物、炎症因子和糖酵解指标。

3

机制探究

验证DANCR通过IGF2BP2稳定HK2 mRNA的机制。

通过生物信息学预测、RNA-FISH和免疫荧光共定位、RIP、RNA稳定性实验,以及过表达IGF2BP2验证其对HK2表达的影响。

4

功能回补实验

验证DANCR的作用是否通过HK2介导,以及HK2过表达是否能逆转siDANCR的效应。

共转染siDANCR和oe-HK2,检测M1极化、糖酵解和心肌细胞损伤指标。

5

糖酵解抑制实验

验证DANCR/HK2的效应是否依赖糖酵解。

在HK2过表达的巨噬细胞中加入2-DG,检测M1极化、糖酵解和心肌细胞损伤指标。

6

条件培养基处理心肌细胞

评估巨噬细胞旁分泌效应对心肌细胞的影响。

收集各组巨噬细胞的条件培养基,处理AC16心肌细胞24小时,检测细胞活力和凋亡。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基ProcellPM150110
β-巯基乙醇MerckM3148
胎牛血清Procell164210
青霉素-链霉素ProcellPB180120
DMEM/F12培养基ProcellPM150310
pcDNA3.1(+)载体ZomanbioZK347
Lipo8000转染试剂BeyotimeC0533
佛波醇肉豆蔻酸乙酸酯MedChemExpressHY-18739
脂多糖MedChemExpressHY-D1056
2-脱氧-D-葡萄糖----
PARIS试剂盒ThermoFisherAM 1921
逆转录试剂盒AGBIOAG11705
RNA提取试剂盒ForeGeneRE-03111
SYBR Green试剂盒AGBIOAG11741
PE标记的CD86抗体Biolgend374205
APC标记的CD206抗体Biolgend321109
磷酸盐缓冲液SangonE607008
CytoFlex流式细胞仪Beckman--
Annexin V-FITC和PI染色液Yeasen40302ES20
TNF-α、IL-1β、IL-6 ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H0109/E-EL-H0149/E-EL-H6156
酶标仪DeTiebio--
葡萄糖摄取检测试剂盒xabiolite23500
乳酸检测试剂盒AbbkineKTB1100
ATP含量检测试剂盒AbbkineKTB1016
Seahorse XFp分析仪Agilent--
CCK-8试剂盒Research-BioD002-1
RIP试剂盒BeyotimeP1801S
抗IGF2BP2抗体Proteintech11601-1-AP
Cy3标记的DANCR反义探针RiboBio--
Alexa Fluor 488偶联二抗InvitrogenA-11008
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0010
抗HK2抗体Cell Signaling Technology#2867
抗β-actin抗体Abcamab6276
HRP标记的二抗ZSGB-BIOZB-2301
ECL化学发光试剂BeyotimeP0018FS
ChemiDoc成像系统Bio-Rad--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
THP-1细胞培养基:RPMI-1640补充0.05 mM β-巯基乙醇、10% FBS、1%青霉素-链霉素;AC16细胞培养基:DMEM/F12补充10% FBS和1%青霉素-链霉素。培养条件:37°C、5% CO2。
阅读提示:Materials and methods 2.1 Cell culture
细胞分化与刺激
THP-1细胞用100 ng/mL PMA处理24小时分化为巨噬细胞,随后用50 ng/mL LPS处理48小时。
阅读提示:Materials and methods 2.3 Cell treatment
细胞转染
质粒用量1 μg,siRNA浓度50 nM,使用Lipo8000转染试剂。转染效率在48小时后通过qRT-PCR验证。
阅读提示:Materials and methods 2.2 Cell transfection
mRNA表达检测
qRT-PCR使用SYBR Green,内参为β-actin或U6,使用2^-ΔΔCT法计算相对表达量。
阅读提示:Materials and methods 2.4 qRT-PCR and Table 1
M1极化检测
流式细胞术检测CD86和CD206的表达,抗体浓度和孵育时间:30分钟,4°C,避光。
阅读提示:Materials and methods 2.5 Flow cytometry
炎症因子检测
ELISA检测TNF-α、IL-1β和IL-6,细胞以1×10^6 cells/well接种于6孔板。
阅读提示:Materials and methods 2.6 ELISA
糖酵解功能检测
Seahorse XFp分析仪检测ECAR和OCR,细胞以5×10^4 cells/well接种,OCR使用Mito Stress Test,ECAR使用Glycolysis Stress Test。
阅读提示:Materials and methods 2.8 Real-time cell metabolism assay
心肌细胞损伤检测
条件培养基与新鲜培养基1:1处理心肌细胞24小时,CCK-8检测细胞活力,流式细胞术检测凋亡(Annexin V-FITC/PI染色)。
阅读提示:Materials and methods 2.9 Cell viability and 2.5 Flow cytometry
RNA稳定性
使用5 μg/mL放线菌素D处理细胞不同时间后提取RNA,进行qRT-PCR。
阅读提示:Materials and methods 2.13 RNA stability assay
统计设计
所有实验至少3次独立生物重复,技术重复3孔;统计方法:多组间单因素或双因素ANOVA,两组间t检验,P < 0.05为显著。
阅读提示:Materials and methods 2.15 Statistical analysis