SSc患者肠道菌群失调分析
比较SSc患者与健康对照的肠道菌群组成和功能差异,并关联炎症因子。
对10名SSc患者和健康对照的粪便样本进行宏基因组测序,分析α多样性、β多样性、物种丰度及功能通路;对PBMC进行qPCR检测TNF-α和IL-6。
Mesenchymal stem cells alleviate pulmonary fibrosis and gut microbiota dysbiosis in systemic sclerosis.
包含体外细胞鉴定、动物模型(BLM诱导SSc小鼠)、人体样本(患者粪便/血液)、多组学分析(转录组、宏基因组、代谢组)及功能验证(病理染色、免疫组化、qPCR)。
博来霉素诱导的系统性硬化症小鼠模型 人脐带间充质干细胞(hUC-MSCs) 系统性硬化症患者粪便和血液样本
BLM剂量:100 μL,0.5 mg/mL,背部皮下注射,每日一次,持续4周 MSC治疗剂量:5×10^5 hUC-MSCs/只,尾静脉注射,第5周和第7周各一次 小鼠品系与性别:雌性C57BL/6小鼠,6周龄 组别:CON(PBS)、SSC(BLM+PBS)、MSC(BLM+MSCs),每组6只 RNA-seq DEGs筛选标准:FC≥1.5且p<0.05
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
比较SSc患者与健康对照的肠道菌群组成和功能差异,并关联炎症因子。
对10名SSc患者和健康对照的粪便样本进行宏基因组测序,分析α多样性、β多样性、物种丰度及功能通路;对PBMC进行qPCR检测TNF-α和IL-6。
鉴定SSc患者粪便中差异代谢物及涉及的代谢通路。
对粪便样本进行非靶向代谢组学,通过PCA/PLS-DA、火山图、热图和KEGG富集分析。
获取并验证符合国际细胞治疗学会标准的人脐带间充质干细胞。
从人脐带分离hUC-MSCs,使用3D FloTrix培养基培养,流式细胞术检测表面标志物,并进行成脂、成软骨、成骨诱导分化及染色。
评估MSCs治疗对BLM诱导SSc小鼠肺损伤和纤维化的影响。
C57BL/6小鼠随机分为CON、SSC、MSC组,BLM诱导4周,第5和第7周分别尾静脉注射MSCs或PBS,第8周处死,取肺组织进行H&E、Masson染色和IHC检测α-SMA和COL1A1。
揭示MSCs治疗对SSc小鼠肺组织基因表达谱的影响及涉及的信号通路。
对肺组织进行RNA-seq,分析PCA/PCoA、火山图、维恩图、GO和KEGG富集分析。
评估MSCs治疗对SSc小鼠肠道菌群多样性、组成和功能的影响。
对小鼠粪便样本进行宏基因组测序,分析α多样性、β多样性、物种注释、LEfSe等。
分析MSCs治疗对SSc小鼠粪便代谢物的影响。
对粪便样本进行非靶向代谢组学,通过PCA/PLS-DA、火山图、热图和KEGG富集分析。
探究肺组织基因表达、肠道菌群和代谢物之间的潜在关联。
使用Spearman相关性分析和Mantel检验评估差异基因、差异菌群和差异代谢物之间的相关性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 3D FloTrix®间充质干细胞培养基 | CytoNiche Biotech | -- |
| DMEM/F12培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | -- | -- | |
| 细胞分化 | 干细胞分化培养基 | Procell | -- |
| 流式分析 | 抗人CD44抗体 | Biolegend | 338,805 |
| 抗人CD73抗体 | Biolegend | 344,003 | |
| 抗人CD90抗体 | Biolegend | 328,109 | |
| 抗人CD105抗体 | Biolegend | 800,505 | |
| 抗人CD34抗体 | Biolegend | 343,603 | |
| 抗人CD45抗体 | Biolegend | 304,011 | |
| 动物实验 | 博来霉素 | -- | -- |
| 组织病理 | 抗α-SMA抗体 | CST | 19245 |
| 抗COL1A1抗体 | Affinity | AF7001 | |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | Servicebio | GB23303 | |
| EasyScan 6系统 | Motic | -- | |
| qPCR | TriQuick试剂 | Solarbio | -- |
| FastPure细胞/组织总RNA提取试剂盒V2 | Vazyme | -- | |
| HiScript II Q-RT SuperMix逆转录试剂盒 | Vazyme | -- | |
| Taq Pro通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| Applied Biosystems QuantStudio 5实时荧光定量PCR系统 | Thermofisher | -- | |
| 宏基因组测序 | 磁珠法土壤和粪便DNA提取试剂盒 | TianGen | -- |
| 代谢组学 | Vanquish超高效液相色谱系统 | ThermoFisher | -- |
| Orbitrap Q Exactive HF-X质谱仪 | Thermo Fisher | -- | |
| 转录组测序 | RNA Nano 6000检测试剂盒 | Agilent Technologies | -- |
| Agilent Bioanalyzer 2100系统 | Agilent Technologies | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| SSc患者样本收集 | 患者纳入标准、年龄(40-60岁)、样本处理(粪便-80°C保存,PBMC提取后反转录) 阅读提示:Methods 2.1 |
| hUC-MSCs培养与鉴定 | 初始培养基、3D FloTrix培养基、传代次数、流式标志物及阳性阈值、分化诱导时间 阅读提示:Methods 2.2, Results 3.3, Figure 3 |
| BLM诱导SSc小鼠模型及MSC治疗 | 小鼠品系、性别、周龄、BLM剂量和给药方式、MSC注射剂量和次数、时间点(第5、7周)、处死时间(第8周) 阅读提示:Methods 2.3, Results 3.4, Figure 4A |
| 病理学评估 | 固定方式、切片厚度、染色方法、抗体稀释度、孵育条件 阅读提示:Methods 2.4 |
| qPCR | RNA提取试剂盒、逆转录试剂盒、SYBR Master Mix、仪器型号、引物序列(补充表S1) 阅读提示:Methods 2.5 |
| 宏基因组分析 | DNA提取试剂盒、测序平台、数据分析软件版本(MEGAHIT, DIAMOND, MEGAN)、差异分析参数(LEfSe LDA≥4) 阅读提示:Methods 2.6 |
| 代谢组学分析 | 样本量(人类10例/组,小鼠6例/组)、样本提取方法、LC-MS条件、DEMs筛选标准(VIP>1, p<0.05, FC≥1.5或≤0.667) 阅读提示:Methods 2.7 |
| 转录组分析 | 样本量(每组6只)、RNA完整性检测、文库构建方法、测序平台、DEGs筛选标准(FC≥1.5, p<0.05) 阅读提示:Methods 2.8 |
| 统计分析 | R版本(4.3.3)、PCoA距离矩阵(Bray-Curtis)、PERMANOVA、Spearman相关性、Mantel检验、显著性阈值(p<0.05) 阅读提示:Methods 2.9 |