巨噬细胞极化模型建立与表型验证
建立M1和M2巨噬细胞极化模型,并验证极化成功及CD44v5表达差异。
使用PMA诱导THP-1分化为巨噬细胞,然后分别用IL-4或IFN-γ加LPS极化M2和M1,通过免疫印迹检测CD86和CD163表达。
CD44v5 enhances the IL-4/IL-4Rα/STAT6/SAM68 aix inducing M2 polarization and promoting triple-negative breast cancer progression.
包含细胞极化模型、功能实验(划痕、侵袭、集落形成)、siRNA敲低、抗体阻断、分子对接和免疫荧光共定位等多层级验证,并进行了机制验证。
THP-1细胞诱导的M1/M2巨噬细胞 MDA-MB-468三阴性乳腺癌细胞系 THP-1与MDA-MB-468共培养诱导的肿瘤相关巨噬细胞
M2极化诱导条件:PMA 100 ng/mL处理24小时,IL-4 20 ng/mL处理 CD44v5阻断:使用CD44v5单克隆抗体或siRNA敲低,验证对M2极化的影响 共培养条件:THP-1与MDA-MB-468共培养48小时,使用0.4 μm孔径插片 STAT6信号通路抑制:使用AS1517499抑制STAT6磷酸化 功能实验条件:划痕、侵袭(含Matrigel)和集落形成实验的具体参数
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立M1和M2巨噬细胞极化模型,并验证极化成功及CD44v5表达差异。
使用PMA诱导THP-1分化为巨噬细胞,然后分别用IL-4或IFN-γ加LPS极化M2和M1,通过免疫印迹检测CD86和CD163表达。
探究M1和M2巨噬细胞对三阴性乳腺癌细胞迁移、侵袭和增殖的影响。
将M1或M2巨噬细胞与MDA-MB-468细胞共培养,进行划痕实验、侵袭实验和集落形成实验。
验证IL-4Rα/STAT6通路是否诱导M2极化并上调CD44v5。
使用dupilumab阻断IL-4Rα,或AS1517499抑制STAT6磷酸化,检测STAT6磷酸化、GATA3和CD44v5表达。
验证CD44v5在M2极化及其促肿瘤功能中的必要性。
使用CD44v5单克隆抗体阻断或siRNA敲低CD44v5,检测M2极化标志物和功能变化。
探究CD44v5阻断是否诱导M2向M1表型转变。
检测CD163和CD86表达,以及IL-4和IL-6分泌水平。
验证CD44v5与IL-4Rα的物理相互作用及其稳定IL-4Rα信号传导的机制。
使用免疫荧光观察共定位,使用微管稳定剂紫杉醇处理阻断内化,检测IL-4Rα表达。
探究SAM68表达是否受IL-4Rα/STAT6通路及CD44v5调控。
使用dupilumab、AS1517499或CD44v5阻断/敲低处理,检测SAM68表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | Leibovitz's L-15培养基 | Gibco | -- |
| RPMI 1640培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | Lonsera | S711-001S | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯 | MCE | HY-18739 | |
| 细胞诱导 | 白细胞介素-4 | PeproTech | 200-04-20μg |
| 干扰素-γ | PeproTech | 300-02-20μg | |
| 脂多糖 | Sigma | L2880-10MG | |
| 共培养 | 0.4 μm多孔插入物 | Corning | 3412 |
| 免疫印迹 | RIPA裂解液 | Beyotime Biotechnology | P0038 |
| 蛋白酶抑制剂 | Biosharp | BL612A | |
| 磷酸酶抑制剂 | Beyotime Biotechnology | P1082 | |
| BCA蛋白浓度测定试剂盒 | Boster | AR0197 | |
| PVDF膜 | Millipore | ISEQ00010 | |
| ECL化学发光底物 | Biosharp | BL520A | |
| 抗CD44v5抗体 | Invitrogen | BMS115 | |
| 抗IL-4Rα抗体 | Proteintech | 67051-1-IG | |
| 抗磷酸化STAT6抗体 | Abclonal | AP1309 | |
| 抗磷酸化STAT6抗体 | Abcam | -- | |
| 抗CD163抗体 | Nature Biosciences | A17011 | |
| 抗CD86抗体 | Abmart | T40013 | |
| 抗SAM68抗体 | Proteintech | 10222-1-AP | |
| 山羊抗小鼠IgG (H+L) HRP | Affinity | S0002 | |
| 山羊抗兔IgG (H+L) HRP | Affinity | S0001 | |
| 细胞侵袭 | Matrigel基质胶 | Acro Biosystems | AC-M082704 |
| Transwell小室 | -- | -- | |
| 转染 | RNA转染试剂 | Sangon Biotech | E607402-0100 |
| 免疫荧光 | 磷酸盐缓冲液 | Boster | AR0032 |
| 快速免疫封闭液 | Beyotime Biotechnology | P0260 | |
| DAPI染色液 | Beyotime Biotechnology | P0131 | |
| 激光共聚焦扫描显微镜 | Cellsens Microsystems | -- | |
| 细胞因子检测 | 电化学发光免疫分析系统 | Roche | -- |
| 磁微粒化学发光免疫分析系统 | Ranos | IMS1200 | |
| 功能实验 | 奥林巴斯CK2显微镜 | Olympus | CK2 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与分化 | THP-1细胞来源(Pricella),MDA-MB-468细胞来源,培养基种类和血清浓度 阅读提示:Methods 2.1 Cell lines |
| M2巨噬细胞极化 | PMA浓度和刺激时间,IL-4浓度和刺激时间 阅读提示:Methods 2.3 Co-culture experiments |
| CD44v5阻断 | CD44v5单克隆抗体浓度或siRNA序列,转染条件 阅读提示:Methods 2.7 siRNA sequences and transfection; Results 3.3 |
| 信号通路抑制 | dupilumab和AS1517499的浓度和处理时间 阅读提示:Results 3.2 |
| 共培养实验 | 细胞比例、共培养时间、插入物孔径 阅读提示:Methods 2.3 Co-culture experiments |
| 细胞功能实验 | 划痕实验的细胞密度和观察时间,侵袭实验的细胞数、Matrigel包被浓度和时间,集落形成实验细胞数和培养天数 阅读提示:Methods 2.4, 2.5, 2.6 |
| 细胞因子检测 | 检测方法(ECLIA)、样品处理(稀释倍数) 阅读提示:Methods 2.9 Cytokine detection |