FTO通过使NOLC1 mRNA不稳定来抑制牙髓干细胞衰老

FTO Suppresses Dental Pulp Stem Cell Senescence by Destabilizing NOLC1 mRNA.

作者信息Bingrong Li, Mi Xu, Junjun Huang, Rong Jia
PMID41301545
发布时间2025-11-19
DOI10.3390/biom15111627

实验完整度

包含细胞模型(DPSCs)、功能获得/丧失实验、RNA-seq、MeRIP、RNA稳定性检测及挽救实验,多层次验证FTO/NOLC1/p53轴机制。

主要模型

牙髓干细胞(DPSCs) HEK 293细胞 HEK 293T细胞

重点核对

DPSC传代次数(3P, 6P, 12P) siRNA浓度(20 nM或40 nM) FB23-2处理浓度(0-10 μM) NOLC1 mRNA上三个m6A位点 RNA稳定性检测中放线菌素D浓度(5 μg/mL)

摘要

细胞衰老是一个复杂的过程,严重限制干细胞功能。N6-甲基腺苷(m6A)擦除器,脂肪量和肥胖相关(FTO)蛋白控制干细胞命运的多个方面,包括分化、自我更新和衰老。然而,FTO在牙髓干细胞(DPSC)衰老中的作用尚未阐明。本研究旨在探讨FTO在DPSC衰老中的作用。FTO表达在DPSC衰老过程中下降。FTO缺失抑制DPSC增殖,加速衰老,并增加活性氧(ROS)水平。FTO过表达减少DPSC衰老,增强增殖,并减少ROS积累。RNA测序表明,FTO敲低抑制核糖体RNA前体(pre-rRNA)生物发生。我们发现核仁和coiled-body磷蛋白1(NOLC1)是FTO的新靶点。NOLC1在FTO敲低后上调,并促进DPSC衰老。机制上,FTO下调增加NOLC1 mRNA的m6A修饰,增加NOLC1 mRNA的稳定性。NOLC1上调抑制pre-rRNA的转录,导致核仁应激和p53积累。此外,NOLC1敲低部分挽救了FTO缺陷诱导的DPSC衰老。我们的发现确定了FTO/NOLC1/p53轴在DPSC衰老中的重要作用,并为预防DPSCs衰老提供了新的见解,这有利于DPSCs在再生医学和干细胞治疗中的应用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
FTO在牙髓干细胞衰老中的作用及其潜在机制是什么?
核心机制
FTO下调增加NOLC1 mRNA的m6A修饰,从而增强其稳定性,导致NOLC1蛋白上调,抑制pre-rRNA转录,引发核仁应激和p53积累,最终促进DPSC衰老。
主要证据
FTO敲低增加NOLC1 mRNA和蛋白水平,并延长其半衰期;MeRIP-RT-PCR显示m6A富集增加;NOLC1敲低部分逆转FTO敲低引起的衰老表型。
研究意义
揭示FTO/NOLC1/p53轴在DPSC衰老中的重要作用,为预防DPSC衰老提供新靶点,有利于DPSCs在再生医学和干细胞治疗中的应用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

DPSC衰老模型建立与FTO表达分析

验证DPSC在传代过程中是否出现衰老,并检测FTO表达变化。

培养DPSCs至第3、6、12代,通过茜素红S染色、β-半乳糖苷酶染色检测衰老特征,用RT-qPCR和Western blot检测FTO表达。

2

FTO功能获得和丧失实验

评估FTO对DPSC衰老、增殖、ROS和细胞周期的影响。

使用siRNA敲低FTO或过表达FTO,通过β-gal染色、p16蛋白检测、增殖曲线、流式细胞术检测ROS和细胞周期。

3

RNA-seq筛选FTO下游靶基因

鉴定FTO敲低后差异表达的基因和相关通路。

对siFTO和siNC处理的DPSCs进行RNA-seq,分析差异表达基因,GSEA分析,并验证核糖体蛋白基因和pre-rRNA水平。

4

验证NOLC1为FTO下游靶点

确认NOLC1在FTO调控下表达变化及其对pre-rRNA的影响。

通过RT-qPCR和Western blot检测FTO敲低或过表达后NOLC1表达,并检测NOLC1过表达对pre-rRNA的影响。

5

验证NOLC1对DPSC衰老的影响

测试NOLC1是否影响DPSC衰老和ROS水平。

敲低或过表达NOLC1,检测p16蛋白水平、β-gal染色、细胞周期、ROS和γH2AX。

6

检测p53蛋白水平

探究FTO和NOLC1是否影响p53表达。

在FTO或NOLC1敲低/过表达后,Western blot检测p53蛋白。

7

验证m6A修饰对NOLC1的调控

确定FTO是否通过m6A修饰调控NOLC1表达。

使用MeRIP-RT-PCR检测NOLC1 mRNA上m6A富集,构建m6A位点突变质粒,检测外源NOLC1表达,并检测mRNA稳定性。

8

挽救实验

验证NOLC1敲低是否能逆转FTO敲低诱导的衰老。

同时敲低FTO和NOLC1,检测β-gal染色、增殖能力和蛋白表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-MEM培养基HyClone--
DMEM培养基HyClone--
胎牛血清Gibco--
抗生素-抗真菌剂Gibco--
胶原酶----
Lipo293转染试剂Beyotime--
脂质体3000Invitrogen--
siFTO-1Sangon Biotech--
siFTO-2Sangon Biotech--
siNOLC1-1Sangon Biotech--
siNOLC1-2Sangon Biotech--
RNA小提试剂盒Axygen--
Maxima H Minus逆转录酶Thermo Fisher Scientific--
2× Taq预混液Vazyme--
ChamQ SYBR qPCR预混液Vazyme--
p53抗体Proteintech--
p16抗体ZenBio--
γH2AX抗体ZenBio--
FTO抗体Proteintech--
NOLC1抗体Abcam--
β-actin抗体Proteintech--
DCFH-DA活性氧检测试剂盒Beyotime--
β-半乳糖苷酶染色试剂盒Beyotime--
细胞周期检测试剂盒Multi Sciences--
TRIzol试剂Invitrogen--
NovaSeq 6000测序仪Illumina--
m6A抗体----
Dynabeads蛋白A/G磁珠Invitrogen--
CytoFLEX流式细胞仪Beckman Coulter--
pCMV3-FTO-Flag质粒Sino Biological Inc.--
pLVX-FTO-Flag-IRES-ZSgreen1质粒----
pLVX-IRES-Puro载体Clontech--
pEGFP-N1载体----
HEK 293细胞系Cellcook--
HEK 293T细胞系Procell--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
DPSC培养
培养基成分(α-MEM+20% FBS+1%抗生素)、培养条件(5% CO2, 37°C)、使用的细胞代次(3-12代)
阅读提示:Materials and Methods 2.1 Cell Culture
FTO敲低
siRNA序列(siFTO-1和siFTO-2)、转染浓度(20 nM或40 nM)、转染试剂(Lipofectamine 3000)
阅读提示:Materials and Methods 2.3 RNA Interference; Figure 7E legend
FTO过表达
使用的质粒(pCMV3-FTO-Flag或pLVX-FTO-Flag-IRES-ZSgreen1)、转染试剂(Lipo293)
阅读提示:Materials and Methods 2.2 Plasmids
ROS检测
DCFH-DA浓度(10 μM)、孵育时间(20分钟)和温度(37°C)、流式细胞仪型号(CytoFLEX)
阅读提示:Materials and Methods 2.6 Reactive Oxygen Species Detection
RNA稳定性实验
放线菌素D浓度(5 μg/mL)、时间点(0、6、12小时)
阅读提示:Materials and Methods 2.11 RNA Stability Assay
MeRIP实验
RNA fragmentation buffer(含ZnCl2)、m6A抗体、Dynabeads Protein A/G、IP buffer等
阅读提示:Materials and Methods 2.10 MeRIP Assay
β-半乳糖苷酶染色
β-gal染色试剂盒品牌(Beyotime)、固定和染色步骤
阅读提示:Materials and Methods 2.7 β-Galactosidase Staining