铜死亡基因鉴定与相关性分析
鉴定与已知铜死亡核心基因相关的MSigDB铜死亡基因,并通过WGCNA分析共表达网络和相关性,筛选出UVM中特定的铜死亡基因。
从GSEA网站获取169个MSigDB铜死亡基因,与11个实验验证的铜死亡核心基因进行相关分析(阈值0.3),取四个数据库交集得到22个MSigDB基因,合并得到33个铜死亡基因;生成相关性热图并进行GO/KEGG功能分析。
Prognostic evaluation and experimental validation of cuproptosis-related hub genes identified through weighted gene co-expression network analysis in uveal melanoma.
包含多数据库转录组分析、scRNA-seq、细胞功能实验(CCK-8、EdU、凋亡、周期、ROS)及qRT-PCR验证和铜死亡抑制实验,具有独立证据层级。
M619和92-1葡萄膜黑色素瘤细胞系 GSE139829单细胞RNA测序数据 221例UVM患者队列(TCGA-UVM、GSE22138、GSE44295、GSE84976)
UVM样本队列:221例来自GEO和TCGA,含生存信息,批次效应校正 铜死亡诱导剂elesclomol-CuCl2(1:1比例)处理浓度及IC50(M619 201.2nM,92-1 94.5nM) 铜死亡抑制剂TTM预处理的浓度5 µM及处理时间 细胞处理时间:24小时(活力、增殖、凋亡、ROS)、12小时(细胞周期) 模型基因表达验证:单细胞RNA-seq(GSE139829)及qRT-PCR检测FDX1、ATP7B、GCSH表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定与已知铜死亡核心基因相关的MSigDB铜死亡基因,并通过WGCNA分析共表达网络和相关性,筛选出UVM中特定的铜死亡基因。
从GSEA网站获取169个MSigDB铜死亡基因,与11个实验验证的铜死亡核心基因进行相关分析(阈值0.3),取四个数据库交集得到22个MSigDB基因,合并得到33个铜死亡基因;生成相关性热图并进行GO/KEGG功能分析。
基于铜死亡基因表达模式,通过共识聚类将UVM患者分为不同亚型,并分析亚型间预后和TME差异。
使用ConsensusClusterPlus对221例UVM患者进行共识聚类,得到两个铜死亡亚型(cluster A和B);用PCA、Kaplan-Meier分析验证亚型差异;评估免疫浸润、TME评分和免疫检查点表达。
通过比较两个铜死亡亚型的转录组差异,鉴定差异表达基因(DEGs),并基于这些DEGs进一步聚类为新的基因簇。
使用limma包进行差异分析,得到1306个DEGs(logFC=0.585,p<0.05);用单变量Cox分析筛选预后相关DEGs(1181个);基于DEGs进行无监督聚类,得到基因簇A和B;分析基因簇间预后及免疫特征。
利用LASSO-Cox回归构建基于铜死亡相关DEGs的预后模型,并验证其预测能力。
从1181个预后CRGs中,通过LASSO-Cox回归筛选出8个模型基因(JAG2, P4HA1, SAP30, TCF12, MAPKAPK3, NICN1, PLXNB1, NKIRAS1),构建CRG_score公式;根据中位CRG_score将患者分为高低风险组;在四个独立数据集中验证模型的预后效能(Kaplan-Meier和ROC曲线)。
在单细胞水平上验证模型基因的细胞类型特异性表达。
从GEO获取GSE139829单细胞数据,经质量控制后获得53,362个高质量细胞;使用UMAP降维聚类,注释10种细胞类型;分析8个模型基因在各细胞类型中的表达。
在UVM细胞系中验证铜死亡诱导剂elesclomol-CuCl2对细胞活力、增殖、凋亡、周期和ROS的影响。
使用M619和92-1细胞系,用elesclomol-CuCl2处理,CCK-8检测活力,EdU检测增殖,流式细胞术检测凋亡和细胞周期,DCFH-DA探针检测ROS,qRT-PCR检测铜死亡相关基因表达,并用TTM作为抑制剂验证铜死亡的特异性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 药物处理 | 埃莱司他莫 | MedChemexpress | -- |
| 四硫代钼酸盐 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞活力检测 | 细胞计数试剂盒-8 | Selleck Chemicals | -- |
| 细胞增殖检测 | 5-乙炔基-2'-脱氧尿苷 | Beyotime | -- |
| Hoechst 33342 | -- | -- | |
| 细胞凋亡检测 | Annexin V/FITC | -- | -- |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| 凋亡检测试剂盒 | KeyGEN BioTECH | -- | |
| 细胞周期检测 | 细胞周期检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| ROS检测 | ROS检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| qRT-PCR | 细胞总RNA提取试剂盒 | Foregene | -- |
| PrimeScript逆转录试剂盒 | TaKaRa | -- | |
| SYBR Green PCR预混液 | Selleck Chemicals | -- | |
| 引物 | Sangon Biotech | -- | |
| 显微镜观察 | 荧光显微镜(Cytation 5) | Bio-Tek | -- |
| 流式细胞术 | FACSCalibur流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 数据定量 | ImagePro Plus软件(版本6.0) | -- | -- |
| 统计绘图 | Prism软件(版本9.5.1) | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 数据预处理与批次校正 | 四个数据集的样本量(GSE22138 n=63,GSE44295 n=57,GSE84976 n=28,TCGA n=80),数据归一化方法(RMA,TMP),批次效应校正方法(SVA) 阅读提示:参见Materials and methods:UVM datasets and preprocessing |
| 铜死亡基因筛选 | 相关系数阈值0.3,取四个数据库交集,最终33个铜死亡基因 阅读提示:参见Materials and methods:Obtaining and screening cuproptosis genes; Table 1 |
| 亚型聚类 | ConsensusClusterPlus参数(k=2),样本数221,聚类稳定性 阅读提示:参见Materials and methods:Unsupervised clustering for cuproptosis clusters and gene clusters; Figure 3a |
| 预后模型构建 | LASSO-Cox回归的λ值,8个模型基因及其系数,分组阈值(中位CRG_score) 阅读提示:参见Materials and methods:Construction and assessment of the prognostic cuproptosis-related score (CRG_score) model; Figure 4 |
| 单细胞数据处理 | GSE139829数据质量过滤参数(UMI>400,基因200-8000,线粒体<10%),聚类分辨率0.5,批次校正方法(harmony) 阅读提示:参见Materials and methods:Single-cell sequencing data collection and processing |
| 细胞实验 | 细胞系来源(M619来自BeiNa,92-1来自Procell),培养条件,药物处理浓度(IC50),作用时间(24h或12h),TTM浓度5µM 阅读提示:参见Materials and methods:Cell culture; Cell counting kit-8 assay; EdU assay; Cell apoptosis assay; Cell cycle assay; Cellular ROS assay |