计算虚拟筛选
筛选TCMSP数据库中靶向CYP51的天然小分子候选物。
使用分子对接(AutoDock vina)和药效团建模(Discovery Studio)双重策略筛选数据库,并通过生物利用度和类药性预筛选。
Integrative computational-experimental discovery of α-hederin as a multi-mechanistic, low-toxicity antifungal agent targeting Candida albicans CYP51.
体外抗真菌活性、细胞毒性、生物膜、菌丝、疏水性、麦角固醇、联合用药实验,体内小鼠模型,以及分子动力学模拟等至少两个独立证据层级。
白色念珠菌CMCC(F)98001菌株 293T、Raw264.7和KB细胞 BALB/c小鼠口腔念珠菌病模型
α-hederin对白色念珠菌的MIC为32 μg/mL(微肉汤稀释法,37°C,24-36h) α-hederin浓度32 μg/mL时完全抑制菌丝形成,256 μg/mL时完全抑制生物膜形成 α-hederin在128 μg/mL时降低细胞表面疏水性85% 体内实验中α-hederin以32 μg/mL和128 μg/mL加入饮水中,处理5天 分子动力学模拟显示α-hederin与CYP51形成4-5个氢键,结合自由能低于氟康唑
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选TCMSP数据库中靶向CYP51的天然小分子候选物。
使用分子对接(AutoDock vina)和药效团建模(Discovery Studio)双重策略筛选数据库,并通过生物利用度和类药性预筛选。
确定候选化合物对白色念珠菌的最低抑菌浓度。
采用微量肉汤稀释法测定α-hederin和elemicin对白色念珠菌的MIC,并以氟康唑为对照。
评估候选化合物对哺乳动物细胞的毒性。
使用CCK-8试剂盒检测α-hederin、elemicin和氟康唑在293T、Raw264.7和KB细胞中的细胞活力。
观察α-hederin处理对白色念珠菌细胞结构的影响。
使用SEM和TEM观察α-hederin和氟康唑处理后的细胞表面和内部结构变化。
评估α-hederin对白色念珠菌生物膜形成和成熟生物膜的影响。
使用结晶紫染色测定总生物膜生物量,XTT法测定代谢活性。
评估α-hederin对菌丝形成、细胞表面疏水性和麦角固醇合成的影响。
在RPMI-1640培养基中诱导菌丝,测定疏水性百分比,并测定麦角固醇含量。
评估α-hederin与氟康唑的协同抗真菌作用。
使用棋盘微量稀释法测定FICI值。
评估α-hederin对小鼠口腔念珠菌感染的治疗效果。
建立BALB/c小鼠口腔念珠菌病模型,给予α-hederin或氟康唑治疗,检测体重、真菌负荷和血液学指标。
揭示α-hederin与CYP51结合的稳定性和相互作用机制。
使用Gromacs 4.5.1进行100ns分子动力学模拟,分析RMSD、RMSF、结合自由能、氢键等。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 菌株培养 | YEPD琼脂培养基 | -- | -- |
| YEPD液体培养基 | -- | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Biosharp Co., Ltd. | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 虚拟筛选 | AutoDock vina | -- | -- |
| Discovery Studio 2019 | -- | -- | |
| 细胞毒性实验 | CCK-8试剂 | -- | -- |
| 扫描电镜 | NOVA450扫描电子显微镜 | FEI | -- |
| Nova 450扫描电子显微镜 | FEI | -- | |
| 生物膜实验 | 结晶紫 | -- | -- |
| 动物实验 | 醋酸可的松 | -- | -- |
| 水合氯醛 | -- | -- | |
| Sysmax XN-550血液分析仪 | Sysmax | -- | |
| PANNORAMIC 250 FLASH玻片扫描仪 | 3DHISTECH | -- | |
| 分子动力学模拟 | Gromacs 4.5.1 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 菌株和培养条件 | 菌株为CMCC(F)98001,YEPD培养基,30°C,220rpm过夜培养 阅读提示:Materials and methods, 'Strains, cells and growth conditions' |
| 虚拟筛选 | CYP51结构PDB:5TZ1,活性位点残基Tyr118, His310, Ser378,TCMSP预筛OB>30%, DL>18% 阅读提示:Materials and methods, 'Virtual screening of antifungal natural small molecules targeting CYP51' |
| MIC测定 | 细胞密度1×10^6 CFU/mL,浓度范围0.5-256 μg/mL或μL/mL,37°C培养24h和36h,MIC定义为生长≤未处理对照 阅读提示:Materials and methods, 'Determination of the minimum inhibitory concentration (MICs) of α-hederin and elemicin against C. albicans' |
| 细胞毒性 | 细胞密度1×10^5 cells/well,处理24h,CCK-8试剂10% v/v,孵育2h,450nm吸光度 阅读提示:Materials and methods, 'Cytotoxicity assessment of α-hederin and elemicin in Raw264.7, 293 T and KB cells' |
| 生物膜抑制 | 生物膜形成:1×10^7 CFU/mL,α-hederin浓度16-256 μg/mL,37°C 24h;代谢活性:1×10^5 cells/mL,8-128 μg/mL 阅读提示:Materials and methods, 'Determination of total biofilm biomasses' and 'Effect of α-hederin on metabolic activity of C. albicans cells during biofilm formation and in mature biofilms' |
| 菌丝形成 | RPMI-1640+10% FBS,1×10^5 CFU/mL,α-hederin浓度梯度,37°C,100rpm,24h 阅读提示:Materials and methods, 'Effect of α-hederin on the hyphal growth of C. albicans' |
| 疏水性 | 1×10^5 CFU/mL,α-hederin,28°C 1h,n-octane分配,OD600 阅读提示:Materials and methods, 'Effect of α-hederin on the cell surface hydrophobicity of C. albicans' |
| 麦角固醇含量 | 0.2g菌丝粉末,皂化液,80°C 1h,石油醚萃取,UV测定230-281nm 阅读提示:Materials and methods, 'Determination of ergosterol content in C. albicans' |
| 联合药敏 | α-hederin 8-128 μg/mL,氟康唑0.5-8 μg/mL,棋盘法,FICI计算 阅读提示:Materials and methods, 'Determination of synergistic antifungal effect of α-hederin and fluconazole against C. albicans' |
| 动物模型 | BALB/c小鼠,25-30g,25只,5组,每组5只;免疫抑制用醋酸可的松;感染1×10^8 CFU/mL;治疗α-hederin 32和128 μg/mL加入饮水,氟康唑128 μg/mL,持续5天 阅读提示:Materials and methods, 'Therapeutic effect of α-hederin on mice oral infected with C. albicans' |
| 分子动力学模拟 | Gromacs 4.5.1,100ns,300K,NPT,RMSD/RMSF,结合自由能分解 阅读提示:Materials and methods, 'Molecular dynamics simulation of the interaction between α-hederin and CYP51' |