ANXA1通过解偶联蛋白1改善糖尿病肾病中的线粒体稳态

ANXA1 improves mitochondrial homeostasis through uncoupling protein 1 in diabetic nephropathy.

作者信息Zi-Han Li, Lu Fang, Liang Wu, Dong-Yuan Chang, Manyuan Dong, Liang Ji, Qi Zhang, Ming-Hui Zhao, Sydney C W Tang, Lemin Zheng, Min Chen
PMID41275961
期刊J Adv Res
发布时间2026-08
DOI10.1016/j.jare.2025.11.039

实验完整度

包含动物模型(HFD/STZ诱导、db/db小鼠、基因敲除/过表达)、细胞实验(HK-2、原代PTECs)、转录组学、代谢组学/脂质组学及功能验证,并证实机制通路。

主要模型

HK-2细胞 原代小鼠近端肾小管上皮细胞(MPTECs) HFD/STZ诱导的糖尿病小鼠模型 db/db小鼠模型

重点核对

糖尿病模型建立:高脂饮食(HFD)联合链脲佐菌素(STZ)腹腔注射,具体剂量方案见补充方法。 基因敲除/过表达:Anxa1-/-、Ucp1-/-、Ggt-Cre/Anxa1fl/fl小鼠,AAV9-Ucp1/Crls1肾脏局部递送。 药物处理:CL316243(3mg/kg)灌胃,每日9:00,共4周。 细胞处理:高糖(30 mmol/L)处理72小时,hrANXA1、siRNA、lentivirus等处理条件。 检测指标:uACR、肾组织病理(PAS染色)、电镜线粒体形态、Western blot、qPCR、代谢组学/脂质组学。

摘要

引言:糖尿病肾病(DN)是一个主要的公共卫生问题。我们先前的研究发现,膜联蛋白A1(ANXA1)通过改善线粒体稳态来缓解DN。然而,其潜在机制尚不完全清楚。目的:本研究旨在探讨ANXA1改善线粒体稳态的机制,并确定DN的新治疗靶点。方法:构建了糖尿病Anxa1-/-/解偶联蛋白1(Ucp1)-/-小鼠和肾脏Ucp1/心磷脂合酶1(Crls1)过表达小鼠。使用高脂饮食(HFD)加链脲佐菌素(STZ)建立糖尿病模型。使用CL316243在db/db小鼠中上调UCP1。在近端肾小管上皮细胞(PTECs)中构建了敲低和过表达。应用了代谢组学和脂质组学。结果:转录组学显示,在糖尿病Anxa1-KO小鼠肾脏中,Ucp1是下调最显著的线粒体相关基因。功能验证表明,在Anxa1-KO糖尿病小鼠中,肾脏局部过表达Ucp1可减轻尿白蛋白与肌酐比值(uACR)、组织病理学中的肾脏损伤以及线粒体分裂。在体外,UCP1沉默消除了人重组ANXA1对高糖(HG)诱导的PTECs炎症、纤维化和线粒体功能障碍的改善作用。在HG条件下,ANXA1的沉默/过表达分别降低/增加了HK-2细胞中转录因子GATA结合蛋白3(GATA3)的稳定性。GATA3可以与UCP1的近端启动子区域结合,从而增强其转录活性。UCP1在DN患者和小鼠的肾脏中显著上调。UCP1缺乏减少了肾脏心磷脂,并加剧了糖尿病诱导的肾脏损伤,包括加重的uACR、间质性炎症和纤维化,以及增强的线粒体分裂。机制上,UCP1通过调节aristaless相关同源盒(ARX)上调CRLS1,从而促进心磷脂生物合成并减少线粒体分裂。治疗上,通过CL316243药理学上调UCP1可减轻db/db小鼠中已建立的DN。结论:ANXA1稳定GATA3以上调UCP1,UCP1通过ARX/CRLS1轴促进心磷脂生物合成,抑制线粒体分裂,从而缓解DN。这项研究强调了靶向UCP1在DN中的治疗潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ANXA1通过何种机制改善糖尿病肾病中的线粒体稳态,以及能否作为治疗靶点?
核心机制
ANXA1稳定转录因子GATA3,GATA3直接结合UCP1启动子增强其转录,UCP1通过ARX/CRLS1通路促进心磷脂生物合成,抑制线粒体分裂,维持线粒体稳态。
主要证据
转录组学、体外敲低/过表达、ChIP、双荧光素酶报告基因、动物模型(Anxa1-KO、Ucp1-KO、Ggt-Cre/Anxa1fl/fl)及CL316243治疗实验。
研究意义
揭示ANXA1调节线粒体稳态的分子机制,提出靶向UCP1治疗糖尿病肾病的潜在策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

细胞模型验证ANXA1-UCP1轴

验证ANXA1是否通过UCP1改善高糖诱导的线粒体功能障碍

在HK-2细胞和原代PTECs中,使用hrANXA1处理、UCP1 siRNA敲低、ANXA1/lentivirus过表达等,检测炎症、纤维化、线粒体功能指标。

2

转录因子GATA3调控UCP1表达

验证GATA3是否介导ANXA1对UCP1的调控

检测GATA3表达变化,ChIP验证GATA3结合UCP1启动子,双荧光素酶报告基因验证转录激活,以及ANXA1对GATA3稳定性的影响。

3

体内验证ANXA1-GATA3-UCP1轴

在体内证实ANXA1通过GATA3调节UCP1以及相关肾脏保护作用

构建PTECs特异性Anxa1敲除小鼠(Ggt-Cre/Anxa1fl/fl),检测GATA3、UCP1表达及肾损伤表型。

4

Ucp1过表达对Anxa1-KO小鼠的保护作用

评估Ucp1过表达能否逆转Anxa1缺失导致的肾损伤和线粒体分裂

通过AAV9-Ucp1肾脏局部递送,检测uACR、肾病理、线粒体形态和相关蛋白表达。

5

UCP1基因敲除对糖尿病肾损伤的影响

确定UCP1在糖尿病肾病中的病理生理作用

使用Ucp1-/-小鼠,在HFD/STZ糖尿病模型下,检测肾损伤指标、线粒体形态、脂质沉积等。

6

UCP1-ARX-CRLS1通路机制验证

阐明UCP1调节心磷脂生物合成和线粒体动力学的机制

结合代谢组学/脂质组学,检测心磷脂水平,通过siRNA、ChIP、双荧光素酶、AAV9-Crls1过表达等验证ARX/CRLS1通路。

7

CL316243对db/db小鼠已建立的DN的疗效

验证药理性激活UCP1是否能治疗已建立的糖尿病肾病

对db/db小鼠灌胃给予CL316243(3mg/kg)4周,检测uACR、肾病理和线粒体形态。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
CL316243MedChemExpress--
链脲佐菌素----
线粒体示踪剂Beyotime--
线粒体复合体I-V活性检测试剂盒Elabscience--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
糖尿病模型诱导
HFD/STZ注射剂量和频率、HFD持续时间(文中未明确说明,见补充方法)
阅读提示:Materials and methods, Animal studies, 和Supplementary Methods
细胞处理
高糖浓度30 mmol/L处理72小时
阅读提示:Materials and methods, Cell culture and treatment
AAV9介导的肾脏基因递送
AAV9血清型、注射途径(肾实质注射)、注射时间(STZ注射后15天)、剂量和体积(文中未明确说明)
阅读提示:Materials and methods, Renal cortical adeno-associated virus delivery in mice, 和Fig. 3A
UCP1药理激活
CL316243剂量3 mg/kg、给药途径(灌胃)、给药频率(每日9:00 a.m.)、持续时间4周
阅读提示:Materials and methods, Administration of CL316243 in db/db mice
基因敲除/过表达细胞模型
siRNA转染浓度、lentivirus感染复数(MOI)、转染时间(文中未明确说明)
阅读提示:Materials and methods, Lentivirus-mediated gene expression and interference, 和siRNA-mediated gene knockdown and transfections