KPF对正常B淋巴细胞和DLBCL细胞增殖的影响
评估KPF对正常B淋巴细胞(GM12878)的毒性作用及对DLBCL细胞(OCI-LY1和U2932)增殖的抑制效果。
使用CCK-8实验检测不同浓度KPF处理后GM12878细胞及DLBCL细胞的活力,并计算IC50。
Kaempferitrin's Dual Assault: Inducing Apoptosis and Ferroptosis in Diffuse Large B-Cell Lymphoma via NF-κB Inactivation.
包括体外细胞增殖和凋亡检测、铁死亡指标检测、机制验证(NF-κB通路及RANKL回复)以及体内异种移植瘤模型验证。
OCI-LY1细胞 U2932细胞 U2932细胞异种移植瘤小鼠模型 GM12878细胞
KPF浓度(0, 3.75, 7.5, 15, 30, 60, 120 μM)及处理时间(1天)对GM12878和DLBCL细胞的影响 细胞系来源:OCI-LY1(Fenghbio),U2932(Sunncell),GM12878(Sunncell) KPF处理浓度30 μM及抑制剂/激活剂处理:erastin (5 mM), ferrostatin-1 (1 mM), Z-VAD-FMK (10 μM), TNF-α (5 ng/mL), RANKL (100 ng/mL), NAC (0.5 mM) 体内实验:U2932细胞皮下注射1×10^7,KPF 20 mg/kg腹腔注射,每周测量肿瘤体积共5周 统计方法:t检验、单因素方差分析,p<0.05为显著
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估KPF对正常B淋巴细胞(GM12878)的毒性作用及对DLBCL细胞(OCI-LY1和U2932)增殖的抑制效果。
使用CCK-8实验检测不同浓度KPF处理后GM12878细胞及DLBCL细胞的活力,并计算IC50。
验证KPF是否促进DLBCL细胞凋亡。
利用流式细胞术检测不同浓度KPF处理后DLBCL细胞的凋亡率。
验证KPF是否通过铁死亡途径发挥作用。
检测KPF处理后DLBCL细胞内Fe2+、ROS水平以及铁死亡相关蛋白GPX4和SLC7A11的表达;使用铁死亡抑制剂和激活剂进行回复实验。
探索KPF是否抑制NF-κB通路,并验证NF-κB抑制在KPF抗肿瘤作用中的必要性。
Western blot检测NF-κB通路关键蛋白(p-IKKα/β, p-NF-κB, p-IKBα)变化;用TNF-α和RANKL激活NF-κB,观察对KPF效应的回复。
评估KPF在异种移植瘤模型中对DLBCL生长的抑制作用。
建立U2932细胞皮下异种移植瘤小鼠模型,腹腔注射KPF,测量肿瘤体积和重量,并通过HE染色、TUNEL、IHC和Western blot分析肿瘤组织学变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Procell | -- |
| 胎牛血清 | Procell | -- | |
| 细胞处理 | 山柰酚-3,7-二鼠李糖苷 | Biobiopha | BBP00574 |
| Erastin | MedChemExpress | HY-15763 | |
| Ferrostatin-1 | MedChemExpress | HY-100579 | |
| Z-VAD-FMK | -- | -- | |
| 肿瘤坏死因子-α | -- | -- | |
| RANKL | MedChemExpress | HY-P73388 | |
| N-乙酰半胱氨酸 | MedChemExpress | HY-B0215 | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8溶液 | MedChemExpress | -- |
| 酶标仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 流式细胞术 | 凋亡检测试剂盒 | KeyGen Bio Tech | KGA1030 |
| 流式细胞仪(Cytoflex) | Beckman | -- | |
| Fe2+检测 | Fe2+检测试剂盒 | Abcam | -- |
| ROS检测 | 活性氧检测试剂盒 | Yeasen | -- |
| H2DCFH-DA荧光探针 | -- | -- | |
| 荧光显微镜 | Zeiss | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio | -- |
| SDS-PAGE凝胶 | Solarbio | -- | |
| PVDF膜 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| GPX4抗体 | Abcam | ab125066 | |
| IKK α/β抗体 | Abcam | ab32041 | |
| p-IKK α/β抗体 | Abcam | ab38515 | |
| p-NF-κB抗体 | Abcam | ab76302 | |
| NF-κB抗体 | Abcam | ab16502 | |
| p-IKBα抗体 | Abcam | ab92700 | |
| IKBα抗体 | Abcam | ab32518 | |
| GAPDH抗体 | Abcam | ab8245 | |
| 二抗 | Abcam | -- | |
| 增强化学发光试剂 | Beyotime | -- | |
| 动物实验 | NOD/SCID小鼠 | Cyagen | -- |
| HE染色 | 伊红染色液 | Shzysw | -- |
| 光学显微镜 | Zeiss | -- | |
| TUNEL实验 | 无DNase蛋白酶K | Thermo Fisher Scientific | -- |
| TUNEL溶液 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Hoechst染液 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| IHC | GPX4抗体 | Abcam | ab125066 |
| HRP标记二抗 | Abcam | -- | |
| 统计 | SPSS 20.0软件 | SPSS | -- |
| GraphPad Prism软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源:GM12878 (Sunncell),OCI-LY1 (Fenghbio),U2932 (Sunncell);培养基:RPMI-1640 + 10% FBS;培养条件:37°C,5% CO2 阅读提示:Materials and Methods 2.1 Cell Culture |
| 药物处理 | KPF处理浓度和时间:0-120 μM处理1天;抑制剂处理浓度:erastin 5 mM, ferrostatin-1 1 mM, Z-VAD-FMK 10 μM, TNF-α 5 ng/mL处理3天, RANKL 100 ng/mL处理1天, NAC 0.5 mM处理1天 阅读提示:Materials and Methods 2.2 Cell Treatment |
| 细胞增殖检测 | 细胞接种密度:5×10^3 cells/well;CCK-8孵育时间:1.5小时;检测波长450 nm 阅读提示:Materials and Methods 2.3 CCK-8 Assay |
| 凋亡检测 | Annexin V-PE和PI各用量(5 μL和10 μL);孵育15分钟;流式细胞仪型号(Cytoflex, Beckman) 阅读提示:Materials and Methods 2.4 Flow Cytometry |
| 铁死亡检测 | Fe2+检测试剂盒(Abcam);ROS检测使用H2DCFH-DA探针,孵育25分钟;荧光显微镜型号(Zeiss) 阅读提示:Materials and Methods 2.5 Detection of Fe2+ and ROS Levels |
| Western blot | 抗体稀释比例、孵育条件(4°C过夜);二抗孵育(室温1小时);蛋白上样量未明确说明 阅读提示:Materials and Methods 2.6 Western Blot |
| 动物实验 | 动物品系:雌性NOD/SCID小鼠,6周龄,20±2 g;细胞接种量:1×10^7;KPF剂量:20 mg/kg腹腔注射;测量周期:每周一次,共5周;肿瘤体积计算公式V=a×b2/2 阅读提示:Materials and Methods 2.7 Tumor Xenograft Model |
| 组织染色 | HE染色固定时间(2天)和切片厚度(5 μm);TUNEL实验蛋白酶K浓度(20 μg/mL)和处理时间(20分钟);TUNEL孵育时间1小时;IHC切片厚度(4 μm) 阅读提示:Materials and Methods 2.8 HE Staining, 2.9 TUNEL Assay, 2.10 Immunohistochemistry |