体外细胞感染模型建立
验证HUVECs和U-87 MG细胞对CV-A10的易感性,并构建体外血脑屏障模型观察病毒穿越。
HUVECs和U-87 MG细胞分别培养,感染CV-A10(MOI 0.1),并在Transwell小室中构建BBB模型,检测病毒载量、滴度和VP1表达。
Coxsackievirus A10 blocks autophagosome-lysosome fusion to promote viral nonlytic spread and inflammatory cytokine release.
包含体外细胞实验(HUVECs、U-87 MG、Vero)、Transwell血脑屏障模型、药物抑制剂处理、乳鼠体内实验及多方法验证(WB、IF、流式、qRT-PCR、IHC等),涵盖功能验证和机制探索。
人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 人胶质瘤细胞系(U-87 MG) 非洲绿猴肾细胞(Vero细胞) 乳鼠感染模型
CV-A10感染诱导自噬体形成但抑制其与溶酶体融合的机制 自噬分泌途径相关蛋白(GRASP65、RAB8A、TSG101、Alix、SEC22B、TRIM-16)的表达变化 3-MA、GW4869、CQ、巴弗洛霉素A1对炎性细胞因子释放和病毒颗粒分泌的影响 GW4869对乳鼠体内CV-A10传播及炎症反应的抑制作用
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证HUVECs和U-87 MG细胞对CV-A10的易感性,并构建体外血脑屏障模型观察病毒穿越。
HUVECs和U-87 MG细胞分别培养,感染CV-A10(MOI 0.1),并在Transwell小室中构建BBB模型,检测病毒载量、滴度和VP1表达。
确定CV-A10是否诱导自噬并影响自噬体与溶酶体的融合。
利用GFP-LC3和RFP-GFP-LC3质粒转染,结合免疫荧光和Western blot检测LC3-II、p62和LAMP-1水平,观察自噬体累积情况。
验证CV-A10感染是否激活自噬分泌途径。
通过Western blot检测自噬分泌途径关键蛋白(GRASP65、RAB8A、TSG101、Alix、SEC22B、TRIM-16)的表达,以及细胞免疫荧光观察病毒粒子与溶酶体、内体、分泌性自噬体的共定位。
检测CV-A10感染后炎性细胞因子和病毒颗粒在细胞外囊泡中的释放情况。
使用商业试剂盒提取细胞外囊泡,通过流式细胞术检测12种炎性细胞因子,qRT-PCR和TCID50检测病毒载量和滴度,Western blot检测VP1表达。
探究自噬分泌途径在CV-A10感染中的作用,并区分不同抑制剂的效果。
使用3-MA、GW4869、氯喹和巴弗洛霉素A1处理CV-A10感染的HUVECs,检测自噬分泌途径相关蛋白、炎性细胞因子和病毒颗粒的变化。
验证自噬分泌途径在CV-A10感染引起的体内病理变化和炎症反应中的作用。
1日龄BALB/c乳鼠感染CV-A10,并给予GW4869治疗,观察临床症状、生存率、病毒载量、病理变化和炎性细胞因子释放。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 杜氏改良Eagle培养基 | Corning | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素溶液 | Biosharp | -- | |
| 病毒滴度测定 | 柯萨奇病毒A10 RNA检测试剂盒 | TIANLONG | -- |
| RNA提取 | 病毒RNA提取试剂盒 | TIANGEN | -- |
| miRNA提取试剂盒 | TIANGEN | -- | |
| qRT-PCR | SYBR Premix Ex Taq | TAKARA | -- |
| ABI 7500实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| GENTIER 96仪器 | TIANLONG | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Beyotime | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 聚偏二氟乙烯膜 | Millipore | -- | |
| 增强化学发光底物 | Biosharp | -- | |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | Solarbio | -- |
| 牛血清白蛋白 | Solarbio | -- | |
| 4',6-二脒基-2-苯基吲哚 | -- | -- | |
| 共聚焦显微镜 | 共聚焦显微镜 | Leica | -- |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 细胞外囊泡提取 | 外泌体捕获分离试剂盒 | Takara | -- |
| 细胞因子检测 | Bio-Plex细胞因子检测试剂盒 | RAISECARE | -- |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Beyotime | -- |
| 动物实验 | GW4869 | -- | -- |
| 3-甲基腺嘌呤 | -- | -- | |
| 氯喹 | -- | -- | |
| 巴弗洛霉素A1 | -- | -- | |
| 免疫组化 | 柠檬酸盐抗原修复液 | Servicebio | -- |
| 数字病理切片扫描仪 | KFBIO | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养和病毒感染 | HUVECs、U-87 MG和Vero细胞的来源和培养条件;CV-A10毒株信息(subgenotype C,GenBank MN557275);MOI和感染时间 阅读提示:Materials and Methods中的Cell culture and viral infection |
| 自噬通量检测 | GFP-LC3和RFP-GFP-LC3质粒的来源和转染方法;药物处理(rapamycin、NH4Cl)的浓度和时长 阅读提示:Materials and Methods中的Plasmids and transfection和Immunofluorescence (IF) staining部分 |
| 自噬分泌途径相关蛋白检测 | 所用抗体(LC3、p62、LAMP-1、GRASP65等)的种属和稀释比;Western blot的蛋白上样量和检测条件 阅读提示:Materials and Methods中的Western blotting (WB) analysis部分 |
| 炎性细胞因子和病毒颗粒检测 | 细胞外囊泡提取试剂盒的具体操作;流式细胞术检测的细胞因子种类和数据分析方法;病毒载量和滴度测定的标准曲线 阅读提示:Materials and Methods中的Isolation of extracellular vesicles、Assessment of inflammatory cytokines by flow cytometry和Determination of the 50% tissue culture infectious dose (TCID50)部分 |
| 动物实验 | 乳鼠的品系、年龄和分组;CV-A10的感染剂量和途径;GW4869的给药剂量、时间和途径;观察时间点和终点指标 阅读提示:Materials and Methods中的Animal experiments部分 |