外泌体的分离与表征
验证BMSCs分泌的外泌体成功提取并具有典型外泌体特征,同时比较EMPA预处理对产量和粒径的影响。
使用Umibio试剂盒从BMSCs上清中分离外泌体,通过TEM观察形态,NTA分析粒径和浓度,Western blot检测CD9/CD63/CD81和Calnexin,BCA定量蛋白浓度。
Empagliflozin-pretreated BMSC exosomes attenuate myocardial ischemia-reperfusion injury by enhancing atad3a/pink1-dependent mitophagy.
包含体外H/R细胞模型和体内MIRI小鼠模型两个独立证据层级,并通过Western blot、免疫荧光、TEM及siRNA敲低进行功能与机制验证。
小鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs) 原代新生小鼠心肌细胞(NMCMs) HL-1心肌细胞系 心肌缺血再灌注(I/R)小鼠模型
BMSCs预处理条件:恩格列净浓度1 µM,处理时间24 h 外泌体提取试剂盒(Umibio, UR52121)及外泌体表征方法(TEM、NTA、Western blot) H/R模型条件:缺氧95% N2/5% CO2 6 h,复氧4 h 心肌内注射外泌体剂量100 µg/小鼠,注射位点5处(心尖、梗死区、边缘区) I/R模型:LAD结扎30 min缺血,再灌注24 h
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证BMSCs分泌的外泌体成功提取并具有典型外泌体特征,同时比较EMPA预处理对产量和粒径的影响。
使用Umibio试剂盒从BMSCs上清中分离外泌体,通过TEM观察形态,NTA分析粒径和浓度,Western blot检测CD9/CD63/CD81和Calnexin,BCA定量蛋白浓度。
评估EXO和EMPA-EXO对H/R诱导的心肌细胞损伤的保护作用,并比较两者的疗效。
原代新生小鼠心肌细胞与EXO或EMPA-EXO共培养24 h后,进行H/R处理,检测细胞活力(MTT)、LDH释放、细胞凋亡(流式)、ROS水平及凋亡相关蛋白(BAX、Bcl-2)表达。
评估EXO和EMPA-EXO对小鼠缺血再灌注损伤的心脏保护作用,并比较两者疗效。
雄性C57BL/6小鼠LAD结扎30 min,再灌注前心肌内注射外泌体或PBS,24 h后通过超声心动图、HE染色、TUNEL和TTC染色评估心脏功能、组织损伤、凋亡和梗死面积。
验证外泌体通过上调ATAD3A激活PINK1/PARKIN介导的线粒体自噬,从而减轻心肌细胞损伤。
通过Western blot和免疫荧光检测H/R心肌细胞和I/R心肌组织中ATAD3A、PINK1、PARKIN、LC3II/LC3I、P62表达;使用siRNA敲低ATAD3A检测PINK1变化;TEM观察心肌线粒体形态和自噬体形成。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | 文中未明确说明 | -- |
| 胎牛血清 | 文中未明确说明 | -- | |
| 青霉素-链霉素 | 文中未明确说明 | -- | |
| 外泌体分离 | 外泌体分离试剂盒 | Umibio | UR52121 |
| 外泌体摄取实验 | PKH67荧光染料 | 文中未明确说明 | -- |
| 细胞染色 | DAPI | 文中未明确说明 | -- |
| H/R模型 | Thermo STERI-CYCLE i160 CO2培养箱 | Thermo | -- |
| MTT细胞活性检测 | MTT试剂 | 文中未明确说明 | -- |
| 二甲基亚砜 | 文中未明确说明 | -- | |
| TUNEL检测 | TUNEL凋亡检测试剂盒 | Beyotime | C1088 |
| Western blot | RIPA裂解液 | 文中未明确说明 | -- |
| PVDF膜 | 文中未明确说明 | -- | |
| ECL底物 | 文中未明确说明 | -- | |
| ATAD3A抗体 | Abcam | ab317252 | |
| PINK1抗体 | Proteintech | 23274-1-AP | |
| ALIX抗体 | HUABIO | ET1705-74 | |
| RAB27A抗体 | Proteintech | 66058-1-Ig | |
| SMPD2抗体 | Proteintech | 15239-1-AP | |
| Parkin抗体 | Proteintech | 14060-1-AP | |
| BAX抗体 | Proteintech | 60267-1-Ig | |
| P62抗体 | Abcam | ab314504 | |
| LC3B抗体 | CST | 43566T | |
| BCL-2抗体 | Abcam | ab196495 | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| HRP标记二抗 | 文中未明确说明 | -- | |
| 流式细胞术 | Annexin V/FITC | 4 A Biotech | -- |
| 碘化丙啶 | 文中未明确说明 | -- | |
| ROS检测 | ROS探针 | Solarbio | D6470-25 mg |
| 超声心动图 | Vevo2100小动物超声成像系统 | FUJIFILM | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 外泌体分离与表征 | BMSCs预处理浓度(1 µM EMPA,24 h)、外泌体分离试剂盒(Umibio UR52121)、外泌体浓度和粒径(NTA)、外泌体标志物(CD9/CD63/CD81、Calnexin) 阅读提示:见Methods:Exosome isolation and characterization,以及Figure 1 |
| 体外H/R模型 | 原代心肌细胞分离方法、共培养时间(24 h)、缺氧条件(95% N2/5% CO2,6 h)、复氧时间(4 h)、MTT浓度(0.5 mg/mL,2 h)、LDH检测方法 阅读提示:见Methods:Hypoxia-reoxygenation (H/R) model,MTT cell viability assay,LDH activity assay,以及Figure 3 |
| 体内I/R模型 | 小鼠品系(雄性C57BL/6,8周龄)、分组(Control、I/R、EXO、EMPA-EXO,每组25只)、缺血时间(30 min)、再灌注时间(24 h)、外泌体剂量(100 µg/小鼠)及注射位点(5处)、超声心动图参数(LVEF、LVFS)、TTC染色条件 阅读提示:见Methods:Animals,Myocardial I/R model and exosome delivery,Echocardiography,Myocardial infarction assessment,以及Figure 4 |
| 机制验证 | ATAD3A/PINK1/PARKIN/LC3B/P62抗体信息及稀释比例、siRNA敲低ATAD3A、免疫荧光条件(ATAD3A 1:200)、TEM观察线粒体形态 阅读提示:见Methods:Western blot,Immunofluorescence,以及Figure 5 |