恩格列净预处理的骨髓间充质干细胞外泌体通过增强ATAD3A/PINK1依赖性线粒体自噬减轻心肌缺血再灌注损伤

Empagliflozin-pretreated BMSC exosomes attenuate myocardial ischemia-reperfusion injury by enhancing atad3a/pink1-dependent mitophagy.

作者信息Yuling Jing, Ying Cai, Qiuting Li, Zaiyong Zheng, Haiqiong Yang, Yang Yu, Chunxiang Zhang
PMID41163081
发布时间2025-10-29
DOI10.1186/s13287-025-04715-6

实验完整度

包含体外H/R细胞模型和体内MIRI小鼠模型两个独立证据层级,并通过Western blot、免疫荧光、TEM及siRNA敲低进行功能与机制验证。

主要模型

小鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs) 原代新生小鼠心肌细胞(NMCMs) HL-1心肌细胞系 心肌缺血再灌注(I/R)小鼠模型

重点核对

BMSCs预处理条件:恩格列净浓度1 µM,处理时间24 h 外泌体提取试剂盒(Umibio, UR52121)及外泌体表征方法(TEM、NTA、Western blot) H/R模型条件:缺氧95% N2/5% CO2 6 h,复氧4 h 心肌内注射外泌体剂量100 µg/小鼠,注射位点5处(心尖、梗死区、边缘区) I/R模型:LAD结扎30 min缺血,再灌注24 h

摘要

背景与目的:越来越多的证据表明,间充质干细胞(MSCs)来源的外泌体可以减轻心肌缺血再灌注损伤(MIRI)。然而,未经处理的MSC来源外泌体的治疗潜力仍然有限。在此,我们探讨SGLT2抑制剂预处理的MSCs来源的外泌体是否对MIRI表现出更强的心脏保护作用,并阐明其潜在机制。方法与结果:用SGLT2抑制剂恩格列净(EMPA)预处理小鼠骨髓来源的MSCs(BMSCs),并分离分泌的外泌体(EMPA-EXO)。原代新生心肌细胞与EMPA-EXO或未处理的外泌体(EXO)共培养24小时,然后进行缺氧复氧(H/R)损伤。在MIRI小鼠中,通过心肌内注射给予EXO或EMPA-EXO。EMPA预处理通过调节Alix、nSMase2和RAB27a的表达,显著增强了BMSCs的外泌体分泌。在体外,EXO和EMPA-EXO均提高了心肌细胞活力,减轻了细胞损伤,并抑制了H/R损伤后的细胞凋亡。在体内,EMPA-EXO和EXO给药改善了MIRI小鼠的心脏功能,减少了心肌凋亡和梗死面积。机制上,Western blot和透射电子显微镜(TEM)显示,两种外泌体均上调ATAD3A表达,从而激活PINK1/PARKIN介导的线粒体自噬,减轻心肌细胞损伤。结论:我们的研究结果表明,EMPA增强了BMSCs的外泌体分泌。EMPA-EXO和EXO均通过上调ATAD3A促进PINK1/PARKIN依赖性线粒体自噬,从而减轻MIRI。值得注意的是,EMPA-EXO显示出优于EXO的治疗效果,提示了优化缺血性心脏病中MSC来源外泌体治疗的一种有前景的策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
恩格列净预处理的间充质干细胞来源外泌体是否对心肌缺血再灌注损伤具有更强的心脏保护作用,以及其潜在机制是否涉及ATAD3A/PINK1介导的线粒体自噬。
核心机制
EMPA-EXO通过上调ATAD3A表达,激活PINK1/PARKIN介导的线粒体自噬,从而减轻心肌细胞损伤。
主要证据
体外H/R心肌细胞和体内I/R小鼠模型均显示,EMPA-EXO较EXO更显著提高心肌细胞活力、降低凋亡和ROS水平,改善心脏功能、减少心肌梗死面积,并上调ATAD3A、PINK1、PARKIN和LC3II/LC3I,TEM观察到自噬体增加。
研究意义
该研究为优化缺血性心脏病中MSC来源外泌体治疗提供了一种有前景的策略,即通过恩格列净预处理提高外泌体产量和疗效。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

外泌体的分离与表征

验证BMSCs分泌的外泌体成功提取并具有典型外泌体特征,同时比较EMPA预处理对产量和粒径的影响。

使用Umibio试剂盒从BMSCs上清中分离外泌体,通过TEM观察形态,NTA分析粒径和浓度,Western blot检测CD9/CD63/CD81和Calnexin,BCA定量蛋白浓度。

2

体外H/R心肌细胞损伤模型评估

评估EXO和EMPA-EXO对H/R诱导的心肌细胞损伤的保护作用,并比较两者的疗效。

原代新生小鼠心肌细胞与EXO或EMPA-EXO共培养24 h后,进行H/R处理,检测细胞活力(MTT)、LDH释放、细胞凋亡(流式)、ROS水平及凋亡相关蛋白(BAX、Bcl-2)表达。

3

体内心肌缺血再灌注模型评估

评估EXO和EMPA-EXO对小鼠缺血再灌注损伤的心脏保护作用,并比较两者疗效。

雄性C57BL/6小鼠LAD结扎30 min,再灌注前心肌内注射外泌体或PBS,24 h后通过超声心动图、HE染色、TUNEL和TTC染色评估心脏功能、组织损伤、凋亡和梗死面积。

4

机制验证:ATAD3A/PINK1依赖性线粒体自噬

验证外泌体通过上调ATAD3A激活PINK1/PARKIN介导的线粒体自噬,从而减轻心肌细胞损伤。

通过Western blot和免疫荧光检测H/R心肌细胞和I/R心肌组织中ATAD3A、PINK1、PARKIN、LC3II/LC3I、P62表达;使用siRNA敲低ATAD3A检测PINK1变化;TEM观察心肌线粒体形态和自噬体形成。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基文中未明确说明--
胎牛血清文中未明确说明--
青霉素-链霉素文中未明确说明--
外泌体分离试剂盒UmibioUR52121
PKH67荧光染料文中未明确说明--
DAPI文中未明确说明--
Thermo STERI-CYCLE i160 CO2培养箱Thermo--
MTT试剂文中未明确说明--
二甲基亚砜文中未明确说明--
TUNEL凋亡检测试剂盒BeyotimeC1088
RIPA裂解液文中未明确说明--
PVDF膜文中未明确说明--
ECL底物文中未明确说明--
ATAD3A抗体Abcamab317252
PINK1抗体Proteintech23274-1-AP
ALIX抗体HUABIOET1705-74
RAB27A抗体Proteintech66058-1-Ig
SMPD2抗体Proteintech15239-1-AP
Parkin抗体Proteintech14060-1-AP
BAX抗体Proteintech60267-1-Ig
P62抗体Abcamab314504
LC3B抗体CST43566T
BCL-2抗体Abcamab196495
GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
HRP标记二抗文中未明确说明--
Annexin V/FITC4 A Biotech--
碘化丙啶文中未明确说明--
ROS探针SolarbioD6470-25 mg
Vevo2100小动物超声成像系统FUJIFILM--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
外泌体分离与表征
BMSCs预处理浓度(1 µM EMPA,24 h)、外泌体分离试剂盒(Umibio UR52121)、外泌体浓度和粒径(NTA)、外泌体标志物(CD9/CD63/CD81、Calnexin)
阅读提示:见Methods:Exosome isolation and characterization,以及Figure 1
体外H/R模型
原代心肌细胞分离方法、共培养时间(24 h)、缺氧条件(95% N2/5% CO2,6 h)、复氧时间(4 h)、MTT浓度(0.5 mg/mL,2 h)、LDH检测方法
阅读提示:见Methods:Hypoxia-reoxygenation (H/R) model,MTT cell viability assay,LDH activity assay,以及Figure 3
体内I/R模型
小鼠品系(雄性C57BL/6,8周龄)、分组(Control、I/R、EXO、EMPA-EXO,每组25只)、缺血时间(30 min)、再灌注时间(24 h)、外泌体剂量(100 µg/小鼠)及注射位点(5处)、超声心动图参数(LVEF、LVFS)、TTC染色条件
阅读提示:见Methods:Animals,Myocardial I/R model and exosome delivery,Echocardiography,Myocardial infarction assessment,以及Figure 4
机制验证
ATAD3A/PINK1/PARKIN/LC3B/P62抗体信息及稀释比例、siRNA敲低ATAD3A、免疫荧光条件(ATAD3A 1:200)、TEM观察线粒体形态
阅读提示:见Methods:Western blot,Immunofluorescence,以及Figure 5