CAR-T细胞构建与卵巢癌细胞系工程化
建立靶向MSLN的CAR-T细胞和高表达MSLN的卵巢癌细胞系,用于后续实验。
从健康供体外周血单个核细胞中分离CD8+ T细胞,通过慢病毒转导生成MSLN-CAR-T细胞;将卵巢癌细胞系SKOV3和OVCAR3转导慢病毒载体表达MSLN和荧光素酶,生成SKOV3-ML和OVCAR3-ML细胞。
B7-H3-mediated reversal of CAR-T cell exhaustion induces a notable antitumour response in ovarian cancer models.
包含体外细胞共培养、体内小鼠模型(同系、异种移植、PDX)及患者样本分析,并进行了功能验证和机制验证(基因敲除、过表达、抑制剂)。
MSLN-CAR-T细胞 SKOV3-ML和OVCAR3-ML卵巢癌细胞系 ID8-Luc同系小鼠模型 OVCAR3-ML异种移植和患者来源异种移植模型
CAR-T细胞与肿瘤细胞共培养的效应-靶比(2:1或5:1) 12-HETE处理浓度(0.5-1.5 μM) HI-TOPK-032剂量(5-20 mg/kg)和给药方式(腹腔注射) CAR-T细胞注射时间(第0、7、14天)和剂量(5×10^6或1×10^7细胞) 患者来源异种移植模型中12-LOX和B7-H3的表达水平
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立靶向MSLN的CAR-T细胞和高表达MSLN的卵巢癌细胞系,用于后续实验。
从健康供体外周血单个核细胞中分离CD8+ T细胞,通过慢病毒转导生成MSLN-CAR-T细胞;将卵巢癌细胞系SKOV3和OVCAR3转导慢病毒载体表达MSLN和荧光素酶,生成SKOV3-ML和OVCAR3-ML细胞。
评估肿瘤细胞及其代谢产物对CAR-T细胞功能的影响。
将CAR-T细胞与肿瘤细胞共培养或使用肿瘤细胞条件培养基处理,检测细胞因子分泌、增殖和耗竭标志物。
验证肿瘤分泌的12-HETE是否通过GPR31促进CAR-T细胞耗竭。
通过LC-MS/MS检测卵巢癌组织中12-HETE水平;用不同浓度12-HETE处理CAR-T细胞;使用GPR31敲除或敲低模型评估功能变化。
探究B7-H3如何调节12-LOX和12-HETE的产生。
通过siRNA筛选鉴定B7-H3为12-LOX上游调控因子;使用shRNA敲低和过表达B7-H3检测12-LOX表达;RNA-seq和KEGG分析揭示FOXO信号通路;验证FOXO3对12-LOX的调控。
筛选并验证能够抑制B7-H3的小分子化合物。
对2745个化合物进行基于结构的虚拟筛选,选出10个最高评分化合物进行实验验证;测试HI-TOPK-032对B7-H3、12-LOX和12-HETE表达的影响,并在重复抗原刺激模型中评估其对CAR-T耗竭的逆转效果。
评估HI-TOPK-032联合CAR-T细胞疗法在动物模型中的抗肿瘤效果和安全性。
使用同系小鼠模型、异种移植模型和患者来源异种移植模型,给予CAR-T细胞和/或HI-TOPK-032,监测肿瘤生长、生存和免疫指标。
探究HI-TOPK-032与抗PD-1抗体联合使用的疗效。
在OVCAR3-ML异种移植模型中,单独或联合给予HI-TOPK-032和抗PD-1抗体,监测肿瘤生长、生存和CD8+ T细胞功能。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | SKOV-3 | ATCC | HTB-77 |
| OVCAR-3 | ATCC | HTB-161 | |
| ID8 | Merck | SCC145 | |
| 外周血单个核细胞 | Procell | CP-H182 | |
| 细胞毒性分析 | LDH检测试剂盒 | Dojindo | -- |
| 脱颗粒测定 | GolgiStop蛋白转运抑制剂 | BD Biosciences | -- |
| 抗CD107a PE-Cy7抗体 | BioLegend | 328617 | |
| 细胞因子检测 | 人IL-2 ELISA试剂盒II | BD Biosciences | 550611 |
| 小鼠IL-2 ELISA试剂盒 | BD Biosciences | 555148 | |
| 人12-HETE ELISA试剂盒 | BlueGene Biotech | E01A0653 | |
| 脂质过氧化测定 | BODIPY 581/591 C11 | -- | -- |
| 脂质过氧化MDA检测试剂盒 | Beyotime | S0131S | |
| 淋巴细胞分离 | Percoll | Sigma-Aldrich | P1644 |
| 流式分析 | CD3-BV421抗体 | BioLegend | 300434 |
| CD8-PE抗体 | BioLegend | 344769 | |
| 抗小鼠ox-LDL抗体 | Thermo Fisher Scientific | BS-1698 R | |
| IgG FITC抗体 | Abcam | ab6717 | |
| 动物实验 | D-荧光素 | -- | -- |
| 异氟烷 | -- | -- | |
| Xenogen IVIS-200成像系统 | Xenogen | -- | |
| Living Image软件 | PerkinElmer | -- | |
| 安全性分析 | VetScan VS2分析仪 | -- | -- |
| 高通量虚拟筛选 | HI-TOPK-032 | -- | -- |
| RNA-seq | Illumina HiSeq 4000测序仪 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| CAR-T细胞生成 | PBMC来源、慢病毒转导效率、CAR-T细胞扩增时间(约10天) 阅读提示:Methods部分:Cell lines和Functional assays |
| 体外共培养 | 效应-靶比(2:1或5:1)、共培养时间(6小时、8小时或24小时)、培养基成分(X-Vivo 15) 阅读提示:Methods部分:Co-culture systems |
| 12-HETE处理 | 12-HETE浓度(0.5、1、1.5 μM)、处理时间(24小时) 阅读提示:Results部分:12-HETE promotes CAR-T cell exhaustion |
| 动物模型 | 小鼠品系(C57BL/6、NSG)、细胞系和数量、注射途径(腹腔或皮下)、CAR-T细胞剂量和注射时间 阅读提示:Methods部分:Animal models and treatment |
| HI-TOPK-032治疗 | 剂量(5-20 mg/kg)、给药方式(腹腔注射)、频率(每周三次或每天) 阅读提示:Methods部分:Treatment administration and dosing |
| 流式分析 | 抗体克隆和荧光标记、细胞表面和细胞内染色方案 阅读提示:Methods部分:Functional assays和Lipid peroxidation assays |