生物信息学预测miR-155和miR-543表达
通过在线数据库预测miR-155和miR-543在胃癌组织中的表达差异。
使用dbDEMC数据库查询miR-155和miR-543在胃癌组织与癌旁或正常组织中的表达差异,并进行统计分析。
Relationship between the degree of Helicobacter pylori infection and miR-155 and miR-543 expression levels in gastric cancer.
包含回顾性临床队列、RT-qPCR表达检测、14C-UBT和Warthin-Starry染色确定感染程度,以及Cox回归和Kaplan-Meier生存分析,但缺乏功能验证和机制验证。
胃癌患者组织样本 胃癌细胞系AGS、HGC-27、KATO III 人胃黏膜上皮细胞CP-H048
HP感染U值测定采用14C-UBT,阳性阈值>100 dpm/mmol miR-155和miR-543表达经RT-qPCR检测,U6作为内参,且经cel-miR-39-3p外参验证 HP感染程度经Warthin-Starry染色分级,分为阳性组和强阳性组 患者分组基于miR-155和miR-543中位数(1.575和1.480) 多因素Cox回归模型调整了肿瘤直径、TNM分期、分化程度和淋巴结转移
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过在线数据库预测miR-155和miR-543在胃癌组织中的表达差异。
使用dbDEMC数据库查询miR-155和miR-543在胃癌组织与癌旁或正常组织中的表达差异,并进行统计分析。
验证miR-155和miR-543在胃癌细胞系中的表达水平。
培养胃癌细胞系AGS、HGC-27、KATO III和人正常胃黏膜上皮细胞CP-H048,提取RNA,逆转录,进行qPCR检测miR-155和miR-543表达。
评估胃癌患者组织中HP感染程度,并分析其与miRNA表达的关系。
收集405例胃癌患者的癌组织标本,使用14C-UBT测定U值,并通过Warthin-Starry染色分级HP感染程度。
分析miR-155和miR-543表达与HP感染程度的关系。
使用Spearman相关分析miR-155和miR-543表达水平与HP感染U值的相关性,并比较HP阳性与阴性、HP阳性组内不同感染程度组间的表达差异。
探讨miR-155和miR-543表达与HP阳性胃癌患者临床病理特征的关系。
收集患者基线数据(年龄、性别、TNM分期、肿瘤直径、分化程度、淋巴结转移等),分析miR-155和miR-543表达水平与这些特征的相关性。
评估miR-155和miR-543表达对HP阳性胃癌患者术后2年生存的影响。
收集患者术后2年随访数据,根据miR-155和miR-543中位数分为高、低表达组,采用Kaplan-Meier曲线和Cox回归分析生存差异及危险因素。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 生物信息学分析 | dbDEMC | -- | -- |
| 细胞培养 | AGS | Pricella | -- |
| HGC-27 | Pricella | -- | |
| KATO III | Pricella | -- | |
| CP-H048 | Pricella | -- | |
| CM-0022 | Pricella | -- | |
| CM-0107 | Pricella | -- | |
| CM-0372 | Pricella | -- | |
| CM-H048 | Pricella | -- | |
| 胰蛋白酶 | Pricella | -- | |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| 安捷伦2100生物分析仪 | Agilent | -- | |
| TaqMan™ microRNA逆转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| SYBR®Premix Ex Taq™ II | Takara | -- | |
| ABI 7900HT快速实时PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| cel-miR-39-3p | BioVendor | XY-RDM0000C | |
| 14C-UBT | 碳-14尿素胶囊 | Headway Biotechnology | -- |
| HP检测仪 | LeZhongsheng Medical Technology | -- | |
| 统计分析 | G*Power 3.1.9.7 | University of Dusseldorf | -- |
| SPSS 27.0 | IBM Corp. | -- | |
| GraphPad Prism 9.5 | GraphPad Software Inc. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者纳入 | 纳入标准:依据CSCO指南诊断的GC患者,TNM分期I-III,首次诊断,未接受抗肿瘤、抗炎或抗HP治疗;排除标准包括远处转移、其他恶性肿瘤、严重感染等。 阅读提示:Materials and methods, Research subject, Inclusion and exclusion criteria |
| HP感染程度评估 | 14C-UBT检查前需停用抗生素和铋剂30天、质子泵抑制剂2周;空腹或餐后2小时进行;阳性阈值>100 dpm/mmol。Warthin-Starry染色分级标准:阳性组(+和++)平均密度0.1-2.4/HPF,强阳性组(+++)平均密度≥2.5/HPF。 阅读提示:Materials and methods, Determination of HP infection degree, Carbon-14 urea breath test |
| miRNA表达检测 | RT-qPCR反应条件:95℃ 10分钟预变性,95℃ 10秒变性,60℃ 20秒退火,72℃ 34秒延伸,40个循环;U6作为内参,并使用外参cel-miR-39-3p验证;每个样品3个复孔,实验重复3次。 阅读提示:Materials and methods, Reverse transcription-quantitative polymerase chain reaction |
| 临床病理特征 | 收集年龄、性别、TNM分期、肿瘤直径、分化程度、淋巴结转移和浸润深度;miR-155和miR-543表达水平在不同肿瘤直径、TNM分期、分化程度和淋巴结转移中存在差异。 阅读提示:Results, Correlations of miR-155 and miR-543 expression patterns with clinical pathological characteristics of HP-positive GC patients, Table 1 |
| 生存分析 | 根据miR-155和miR-543中位数(1.575和1.480)分组,高表达组和低表达组各135例;Cox回归模型中校正了肿瘤直径、TNM分期、分化程度和淋巴结转移;使用Kaplan-Meier曲线和log-rank检验。 阅读提示:Materials and methods, Statistical analysis; Results, High expression patterns of miR-155 and miR-543 increased 2-year postoperative death risk in HP-positive GC patients |