使用不依赖表位信息的光流控系统鉴定抗原特异性功能性CD8+ T细胞

Identification of antigen-specific functional CD8+ T cells using an optofluidic system independent of epitope information.

作者信息Wei Zhang, Yu Liu, Hongxiang Zeng, Xuejiao Liao, Juanjuan Zhao, Xian Tang, Zheng Zhang
PMID41098775
期刊iScience
发布时间2025-09-19
DOI10.1016/j.isci.2025.113600

实验完整度

文献包含基于Lightning平台的MicroFAST工作流程建立、已知表位验证(HCMV NLV)、未知表位筛选(SARS-CoV-2)、TCR功能验证(ICS、ELISPOT、杀伤实验)及表位鉴定等多层级实验。

主要模型

TCR转导的J76.8细胞系 TCR转导的原代CD8+ T细胞 T2细胞 人PBMCs及自体CD4+和CD8+ T细胞去除的PBMCs

重点核对

MicroFAST筛选流程:IFN-γ捕获珠、单CD8+ T细胞和APCs顺序加载至OptoSelect 1500芯片NanoPen中 共培养过夜后,阳性NanoPen定义为含有单CD8+ T细胞和IFN-γ捕获珠(内源Cy5和PE信号合并) 阳性NanoPen中的细胞卸载后用于单细胞TCR测序 TCR功能验证:J76.8荧光素酶报告系统、IFN-γ ELISPOT、细胞内细胞因子染色(ICS) 表位鉴定:通过J76.8细胞与肽脉冲的APCs共培养,检测荧光素酶表达上调

摘要

大多数研究仅通过测量T细胞受体(TCR)与肽-主要组织相容性复合体(p-MHC)的结合亲和力来检测和分离抗原特异性CD8+ T细胞,而不考虑T细胞功能。在此,我们提出了一种基于功能的策略,利用Lightning光流控平台筛选抗原特异性CD8+ T细胞,命名为MicroFAST(基于微流控功能的抗原特异性单个T淋巴细胞筛选),适用于有限样本体积。我们通过使用该方法分离靶向已知HLA-A∗02:01限制性表位的人巨细胞病毒(HCMV)特异性CD8+ T细胞来验证该方法。我们最终应用此方法鉴定了多个SARS-CoV-2特异性TCR,这些TCR以识别HLA-B∗35:01限制性TPS表位(TPSGTWLTY)为特征,证明了我们系统的实用性。TCR结合亲和力与其功能性无关。总之,我们开发了一种在有无肽-MHC特异性先验知识的情况下分离抗原特异性功能性CD8+ T细胞的工作流程,这将促进工程化TCR-T疗法和基于T细胞的疫苗的开发。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何在不依赖肽-MHC特异性先验知识的情况下,分离和鉴定抗原特异性功能性CD8+ T细胞及其TCR?
核心机制
基于IFN-γ分泌的功能性筛选,在单细胞水平上检测CD8+ T细胞的激活,从而识别功能性TCR,且TCR结合p-MHC的亲和力与其功能性无关。
主要证据
通过MicroFAST从健康供者中分离出HCMV NLV表位特异性TCR(Pen998),并通过TCR转导、荧光素酶报告、ELISPOT和ICS验证其功能;从COVID-19恢复期供者中筛选出SARS-CoV-2特异性TCR(Pen346等),并鉴定其表位为HLA-B∗35:01限制性TPSGTWLTY。
研究意义
该工作流程有助于开发工程化TCR-T疗法和基于T细胞的疫苗,尤其是针对慢性感染和癌症。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立MicroFAST工作流程

验证基于IFN-γ分泌的单细胞功能性筛选平台能否检测抗原特异性CD8+ T细胞激活

在Lightning平台上,将IFN-γ捕获珠、单克隆CD8+ T细胞和APCs依次加载至OptoSelect 1500芯片的NanoPen中,共培养过夜,染色成像后鉴定阳性NanoPen,并卸载细胞用于TCR测序。

2

验证已知表位抗原特异性CD8+ T细胞

评估MicroFAST能否从健康供者中分离HCMV NLV表位特异性功能性CD8+ T细胞

对5名健康供者的PBMCs进行NLV表位特异性短时扩增,然后富集CD8+ T细胞,与NLV肽脉冲的T2细胞共培养,进行MicroFAST筛选,并从阳性NanoPen中导出细胞进行TCR测序。

3

筛选未知表位SARS-CoV-2特异性CD8+ T细胞

评估MicroFAST能否在没有肽-MHC特异性先验知识的情况下,从恢复期供者中分离SARS-CoV-2特异性功能性CD8+ T细胞

从一名SARS-CoV-2感染恢复期供者PBMCs中,用肽池扩增T细胞(N肽池等),富集CD8+ T细胞,与自体CD4+和CD8+ T细胞去除的PBMCs共培养,进行MicroFAST筛选,并从阳性NanoPen中导出细胞进行TCR测序。

4

表位鉴定

确定MicroFAST筛选出的SARS-CoV-2特异性TCR所识别的精确表位和限制性HLA等位基因

将编码TCR的质粒转导至J76.8细胞,通过荧光素酶报告实验和CD69上调检测不同肽段诱导的激活,确定表位为TPSGTWLTY;通过转染HLA等位基因的K562细胞确定限制性为HLA-B∗35:01。

5

功能验证

评估MicroFAST筛选出的SARS-CoV-2特异性TCR的功能性,包括细胞因子分泌、脱粒和细胞毒性

将TCR转导至原代T细胞,与自体LCLs(脉冲的靶肽或对照)共培养,通过细胞内细胞因子染色检测IFN-γ、TNF-α和CD107a;与TPS肽脉冲的K562-B∗35:01细胞共培养,评估细胞毒性。

6

评估TCR结合亲和力与功能性相关性

比较TCR与p-MHC多聚体的结合亲和力与其在T细胞中的功能性之间的关系

用HLA-B∗35:01/TPS Dextramer染色,比较不同TCR的亲和力;通过ICS检测转导TCR的原代T细胞的功能性,并进行Pearson相关性分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基Gibco61870036
DMEM培养基Gibco--
IMDM培养基Gibco--
胎牛血清Gibco10099-141C
人血清GeminiBio100-512
GT-T551 H3培养基TAKARAWK593S
青霉素-链霉素Gibco--
HEPESGibco--
B-27添加剂Gibco17504044
Ficoll-Paque™ plusCytiva17144002
人IL-7Peprotech200-07-100UG
人IL-2Peprotech200-02-50UG
T细胞TransACTMiltenyi130-111-160
合成肽GenScript--
β2-微球蛋白Sino Biological11976-H08H
环孢素AMCEHY-B0579
PEI转染试剂Polysciences24885-2
RetronectinTAKARAT100A
CD3单克隆抗体(OKT3)Invitrogen16-0037-85
抗人CD28抗体Biolegend302923
IFN-γ检测抗体Biolegend740282
BUV805 小鼠抗人CD3(克隆SK7)BD Biosciences612893
BUV737 小鼠抗人CD8(克隆RPA-T8)BD Biosciences749367
BB700 小鼠抗人CD4(克隆SK3)BD Biosciences566392
APC 小鼠抗人TCR αβ(克隆T10B9.1A-31)BD Biosciences563826
PE-Cy7 小鼠抗人CD69(克隆FN50)BD Biosciences557745
APC 小鼠抗人IFN-γ(克隆B27)BD Biosciences562017
APC/Cy7 抗人CD8a(克隆HIT8a)Biolegend300926
APC/Cy7 抗人IL-2(克隆MQ1-17H12)Biolegend500342
PE 抗人CD3(克隆SK7)Biolegend981004
PE/Dazzle™ 594 抗人TNF-α(克隆MAb11)Biolegend502946
PE/Cy7 抗人CD107a(LAMP-1)(克隆H4A3)Biolegend328618
BV421 抗人CD8(克隆SK1)Biolegend344748
BV510/eFluor506可固定活力染料eBioscience65-0866-14
DRAQ7™试剂Biolegend424001
CellTrace™ violetInvitrogenC34557
PMA/离子霉素Biolegend423301
布雷菲德菌素A溶液Biolegend420601
人IFN-γ ELISPOTpro试剂盒Mabtech3420-2AST-10
Bio-Lite荧光素酶检测系统VazymeDD1201-03
Lightning OptoSelect™ 1500芯片(含润湿液)Berkeley Lights750-00060
润湿添加剂Berkeley Lights750-08091
冲洗芯片Berkeley Lights500-00030
BLI清洗液Berkeley Lights520-08000
IFN-γ捕获珠Biolegend740276
Agencourt RNAClean XP磁珠Beckman CoulterA63987
一步法RT-PCR试剂盒Qiagen210212
Q5热启动高保真2×预混液NEBM0494L
CD8+ T细胞分离试剂盒Miltenyi130-096-495
CD3微磁珠Miltenyi130-050-101
BD Cytofix/Cytoperm™固定/破膜试剂盒BD Biosciences554714
pEASY-Blunt Simple克隆载体TransGenCB111-01
HLA-B∗35:01/TPSGTWLTY/Dextramer-PEImmuDexWK057590XG
HLA-A∗02:01 CMV pp65四聚体-PEMBLTS-0010-1C

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
样本制备
PBMCs分离方法(Ficoll密度梯度离心);细胞培养基(RPMI-1640或GT-T551 H3含10%人血清、2% HEPES、100 U/mL青霉素和100 μg/mL链霉素)
阅读提示:STAR Methods:Human participants 和 Cell lines
T细胞扩增
肽池或单肽浓度(2.5 μg/ml);IL-7浓度(20 ng/ml)和IL-2浓度(20 U/ml);扩增时间(3天+9天)
阅读提示:STAR Methods:T cell lines (TCLs) and LCLs preparation
MicroFAST操作
芯片类型(OptoSelect 1500);IFN-γ捕获珠、单CD8+ T细胞和APCs的加载顺序和体积;共培养时间(过夜);染色和成像条件(曝光时间:Cy5 2000 ms, PE 800 ms, FITC 4000 ms, DAPI 1000 ms)
阅读提示:STAR Methods:Lightning™ operation
TCR测序
RNA提取和纯化方法(Agencourt RNAClean XP Beads);RT-PCR和多重PCR条件(One-Step RT-PCR kit, Q5 Hot Start High Fidelity 2× Master Mix);引物序列(TRAC-seq, TRBC-seq, C25-P1, C25-P2等)
阅读提示:STAR Methods:Single-cell sequencing and analysis
表位鉴定
J76.8细胞与APCs共培养比例(1:1);肽浓度(5 μg/ml);共培养时间(8小时);荧光素酶检测试剂(Bio-Lite Luciferase Assay System)
阅读提示:STAR Methods:Luciferase assay