细胞活力检测
评估铀对HK-2细胞的细胞毒性作用。
使用CCK-8试剂盒测定不同浓度铀处理24小时后的细胞活力,计算IC50。
Toxicological Mechanisms of Uranium-Induced Apoptosis in HK-2 Cells: A Proteomics and Metabolomics Study.
包含细胞活力检测、流式凋亡、彗星实验、DAPI染色等体外功能验证,并整合蛋白质组学和代谢组学进行机制验证,证据层级完整。
人肾近端小管上皮细胞(HK-2)
铀暴露浓度递增(100-1000 μM)下的细胞活力变化 24小时和48小时暴露时间对DNA损伤的影响 800 μM铀浓度下差异表达蛋白和差异代谢物的筛选 Annexin V/PI和AO/PI染色区分细胞凋亡与坏死
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估铀对HK-2细胞的细胞毒性作用。
使用CCK-8试剂盒测定不同浓度铀处理24小时后的细胞活力,计算IC50。
确认铀暴露是否诱导细胞凋亡及其方式。
采用Annexin V-FITC/PI流式细胞术、AO/PI双荧光染色和DAPI染色观察凋亡细胞比例和形态特征。
评估铀暴露对DNA的损伤程度。
利用彗星实验(单细胞凝胶电泳)检测不同铀浓度处理24小时和48小时后的DNA断裂情况。
鉴定铀暴露后差异表达蛋白并分析相关通路。
提取对照组和800 μM铀处理组的总蛋白,进行label-free定量蛋白质组学分析,筛选差异蛋白,进行KEGG、GO、COG和PPI分析。
鉴定铀暴露后差异代谢物及相关代谢通路。
使用LC-MS进行非靶向代谢组学分析,比较对照组和800 μM组的代谢物变化,进行KEGG富集分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | VivaCell | -- |
| 胎牛血清 | VivaCell | -- | |
| 青霉素-链霉素 | VivaCell | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | APExBIO | K1018 |
| 流式分析 | Annexin V/PI染料 | Uelandy | -- |
| 凋亡染色 | AO/PI双染试剂盒 | Bestbio | -- |
| 细胞染色 | DAPI染色液 | -- | -- |
| 代谢组学 | 超高效液相色谱系统 | Waters | -- |
| 四极杆飞行时间质谱仪 | Waters | -- | |
| 蛋白质组学 | 高效液相色谱系统 | RIGOL L-3000 | -- |
| Orbitrap Fusion质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | HK-2细胞系来源、培养基成分、培养条件(37°C、5% CO2)、细胞密度 阅读提示:参见Materials and Methods 2.1节 |
| 细胞活力检测 | 铀浓度梯度(0-1000 μM)、处理时间(24h)、细胞密度(7×10^3/孔)、HCCK-8试剂盒 阅读提示:参见Materials and Methods 2.2节和Figure 1 |
| 凋亡检测 | 铀浓度、处理时间(24h)、Annexin V/PI染色步骤、AO/PI染色浓度和时间、DAPI染色浓度和时间 阅读提示:参见Materials and Methods 2.3-2.6节和Figure 2 |
| DNA损伤检测 | 铀浓度、处理时间(24h和48h)、彗星实验电泳参数(25V, 20min) 阅读提示:参见Materials and Methods 2.5节和Figure 3 |
| 蛋白质组学 | 铀浓度(800 μM)、蛋白提取方法、质谱参数、差异蛋白筛选标准(FC>2, p<0.01) 阅读提示:参见Materials and Methods 2.8节和Figure 4 |
| 代谢组学 | 铀浓度(800 μM)、样品制备、质谱条件、差异代谢物筛选标准(FC≥2, p<0.05, VIP≥1) 阅读提示:参见Materials and Methods 2.7节和Figure 8 |