建立CCL11诱导的认知障碍小鼠模型
验证CCL11是否诱导小鼠认知功能障碍
对2月龄C57BL/6小鼠腹腔注射CCL11,每三天一次,持续84天,随后进行行为学测试。
Qifuyin against CCL11-Induced cognitive impairment by inhibiting microglial senescence via CCR3 signaling.
包含体内动物模型(C57BL/6小鼠)、体外细胞模型(HMC3和HT-22细胞),并通过行为学、电生理、组织学及分子生物学等多层级验证,明确了功能与机制。
C57BL/6小鼠(CCL11诱导的认知障碍模型) HMC3细胞(人源小胶质细胞系,CCR3敲除/过表达) HT-22细胞(小鼠海马神经元细胞系)
CCL11腹腔注射剂量:10 ng·g⁻¹·d⁻¹,每三天一次 芪福饮给药剂量:5.6 g·kg⁻¹·d⁻¹,每日口服 行为学测试时间点:治疗后84天 细胞实验中CCL11浓度:32 ng/mL 细胞实验中芪福饮成分浓度:DISS 50 µM、G-Rg1 50 µM、TEN 4 µM、18β-GA 16 µM、LQ 16 µM
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证CCL11是否诱导小鼠认知功能障碍
对2月龄C57BL/6小鼠腹腔注射CCL11,每三天一次,持续84天,随后进行行为学测试。
检测CCL11和芪福饮对小鼠认知功能的影响
进行新物体识别测试、Morris水迷宫测试和条件性恐惧测试。
验证CCL11是否损害海马突触可塑性及芪福饮的保护作用
采用MEA记录海马CA3-CA1通路LTP,Golgi染色观察树突棘密度,透射电镜观察突触超微结构,ELISA检测突触相关蛋白表达。
验证CCL11是否诱导小胶质细胞衰老及芪福饮的抑制作用
通过SA-β-Gal染色检测衰老细胞,多重免疫荧光检测p21/Iba-1共定位,Luminex检测血浆和脑组织中SASP因子水平。
验证CCL11通过CCR3受体促进小胶质细胞衰老
使用CCR3敲除和过表达的HMC3细胞,用CCL11和芪福饮入脑成分处理,流式细胞术检测细胞周期,免疫荧光检测p16和p21表达,ELISA/Luminex检测SASP因子。
验证CCL11诱导的小胶质细胞衰老是否损害神经元突触连接
将经CCL11和芪福饮成分处理的CCR3-OE HMC3细胞的条件培养基加入HT-22细胞培养,观察神经突生长,ELISA检测突触蛋白。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | CCL11 | -- | -- |
| 芪福饮 | Lunan Pharmaceutical Group Corporation | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | GIBCO | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 流式细胞术 | 7-AAD | Biologend | -- |
| 细胞处理 | SB297006 | -- | -- |
| 3',6-二芥子酰蔗糖 | -- | -- | |
| 人参皂苷Rg1 | -- | -- | |
| 细叶远志皂苷 | -- | -- | |
| 18β-甘草次酸 | -- | -- | |
| 甘草苷 | -- | -- | |
| 电生理记录 | VF-2000振动切片机 | Compresstome | -- |
| MEA2100-60多电极阵列 | -- | -- | |
| STG-1004刺激器 | Multi-Channel Systems | -- | |
| Golgi染色 | FD NeuroTechnologies试剂盒 | FD Neurotechnologies Inc. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型与分组 | 动物品系、性别、年龄、数量、分组和给药方案 阅读提示:Materials and Methods 中 'Animals and treatment' 部分 |
| 行为学测试 | 测试设备(如箱子尺寸、水迷宫直径)、训练和测试时间、条件 阅读提示:Materials and Methods 中 'Behavioral tests' 下的各测试小节 |
| 电生理记录 | 脑片厚度、孵育时间、记录和刺激参数、LTP诱导条件 阅读提示:Materials and Methods 中 'Extracellular electrophysiology with multi-electrodearrays (MEA)' 部分 |
| 细胞实验 | 细胞系来源、CCR3敲除/过表达方法、培养条件、处理药物浓度和时间 阅读提示:Materials and Methods 中 'Cell grouping and treatment' 部分及表1 |
| 共培养实验 | 条件培养基制备方法、HT-22细胞处理方式 阅读提示:Materials and Methods 中 'Cell conditioned culture' 部分 |