构建IL-10分泌型工程化巨噬细胞
获得稳定分泌IL-10的巨噬细胞,用于后续治疗。
利用慢病毒载体将小鼠IL-10基因导入RAW264.7细胞,经嘌呤霉素筛选后,通过免疫荧光、qPCR和ELISA验证IL-10表达。
Revolutionizing nephrocalcinosis treatment: IL-10 engineered macrophages as a novel therapeutic approach.
包含体外细胞实验(RAW264.7、TCMK-1共培养)、体内小鼠模型(乙醛酸盐诱导)、组织学染色、流式、ELISA、qPCR等,并涉及机制验证。
乙醛酸盐诱导的草酸钙小鼠模型 RAW264.7细胞系 TCMK-1肾小管上皮细胞系
乙醛酸盐诱导剂量:75 mg/kg/天,连续6天腹腔注射 工程化巨噬细胞移植剂量:2.5 × 10^5个细胞/只,尾静脉注射 重组IL-10剂量:50 μg/kg 模型诱导后给药时间:首次乙醛酸盐注射后10小时 动物分组:8组,每组n=5
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得稳定分泌IL-10的巨噬细胞,用于后续治疗。
利用慢病毒载体将小鼠IL-10基因导入RAW264.7细胞,经嘌呤霉素筛选后,通过免疫荧光、qPCR和ELISA验证IL-10表达。
验证Mφ-IL10是否诱导巨噬细胞M2极化并抑制炎症因子表达。
将RAW264.7细胞与Mφ-IL10或Mφ-vec共培养,检测M2标志物(Ym-1、Arg-1)mRNA及炎症因子(IL-6、TNF-α、IL-1β)表达。
评估Mφ-IL10移植对小鼠肾钙质沉着症的减轻作用。
建立乙醛酸盐诱导的CaOx小鼠模型,尾静脉注射Mφ-IL10、Mφ-vec、rIL-10或PBS,观察体重、肾功能及肾组织学变化。
探究Mφ-IL10通过M2极化促进晶体清除的机制。
收集Mφ-IL10或Mφ-vec上清诱导RAW264.7分化,检测CD86/CD206表达,评估细胞对COM晶体的粘附能力及溶酶体活性。
验证Mφ-IL10通过M2极化减轻COM晶体对肾小管上皮细胞的毒性。
将预处理的RAW264.7细胞与TCMK-1共培养,然后加入COM晶体,检测细胞死亡、ROS水平和LDH释放。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| MEM培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | Evergreen | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 构建工程化巨噬细胞 | pCDH载体 | System Biosciences | -- |
| 细胞筛选 | 嘌呤霉素 | -- | -- |
| RNA提取 | FastPure细胞/组织总RNA提取试剂盒 | Vazyme | RC101 |
| 反转录 | HiScript III反转录预混液 | Vazyme | RC323 |
| qPCR | SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q712 |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Invitrogen | -- |
| 免疫组化 | 抗OPN抗体 | Proteintech | 22952-1-AP |
| 抗IL-10抗体 | Proteintech | 60269-1-Ig | |
| 抗IL-1β抗体 | Cell Signaling Technology | 12242 | |
| 免疫荧光 | 抗F4/80抗体 | Abcam | ab-6640 |
| 含DAPI的抗淬灭封片剂 | Beyotime | P0131 | |
| 流式细胞术 | 抗CD45抗体 | BioLegend | 103247 |
| 抗CD86抗体 | BioLegend | 105029 | |
| 抗CD206抗体 | BioLegend | 141717 | |
| 抗F4/80抗体 | BioLegend | 123149 | |
| 细胞活性检测 | Calcein/PI细胞检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| ROS检测 | 二氢乙啶 | Beyotime | -- |
| LDH检测 | LDH检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 肾功能检测 | 尿素检测试剂盒 | Changchun Huili | -- |
| 肌酐检测试剂盒 | Changchun Huili | -- | |
| 仪器 | NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo | -- |
| qPCR仪器 | ABI 7500实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- |
| 显微镜 | AX10偏振光光学显微镜 | Zeiss | -- |
| 流式细胞仪 | FACS Aria II流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 酶标仪 | Clariostar酶标仪 | BMG Labtech | -- |
| 细胞系 | RAW264.7 | Pricella | -- |
| TCMK-1 | QuiCell | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、体重、乙醛酸盐剂量、给药途径、给药周期 阅读提示:Methods 2.1, Figure 2a |
| 工程化巨噬细胞制备 | 慢病毒载体、细胞系、转染方法、筛选浓度和时间 阅读提示:Methods 2.3, 2.2 |
| 细胞治疗给药 | 细胞数量、给药途径、给药时间点 阅读提示:Methods 2.1 |
| 脏器评估 | 取材时间、染色方法(HE、PAS、Von Kossa)、评分标准 阅读提示:Methods 2.8, 2.10, Figure 2d, 3a |
| 分子检测 | qPCR引物序列、内参基因、ELISA试剂盒 阅读提示:Methods 2.6, 2.7 |