褪黑素通过抑制铁死亡通路减轻亚硫酸钠诱导的小鼠骨质疏松

Melatonin alleviates sodium sulfite-induced osteoporosis in mice via suppression of the ferroptosis pathway.

作者信息Qiuping He, Lei Xie, Haining Peng, Xiao Xiao, Tengbo Yu
PMID40681799
期刊Apoptosis
发布时间2025-10
DOI10.1007/s10495-025-02135-8

实验完整度

包含体内小鼠模型(骨微结构、蛋白、血清指标)和体外MC3T3细胞(活力、成骨分化、铁死亡标志物)两个独立证据层级,且明确包含功能验证和机制验证。

主要模型

C57BL/6小鼠骨质疏松模型(亚硫酸钠灌胃) MC3T3-E1细胞(成骨细胞系)

重点核对

小鼠亚硫酸钠灌胃剂量(低剂量8.6 mg/kg,高剂量17.2 mg/kg)及时间(40天) MC3T3细胞亚硫酸钠处理浓度(2 mM)及时间(24小时) 褪黑素处理浓度(100 μM)及预处理时间(1小时) 动物分组(对照组、低剂量SS组、高剂量SS组、高剂量SS+MT组)及每组样本量(8只) 铁死亡相关蛋白(GPX4、SLC7A11、FTH1)表达检测

摘要

亚硫酸钠(SS)是一种常见的食品添加剂,被广泛吸收并分布于全身,但其过量摄入与不良健康效应相关。在此,我们研究了慢性SS暴露对骨组织的影响及其潜在机制。使用小鼠模型,我们证明长期SS暴露诱导显著的骨丢失,这与铁死亡相关标志物的改变相关。体外,SS暴露激活铁死亡,其特征是活性氧水平升高和MC3T3细胞成骨分化受损。值得注意的是,褪黑素是一种强效的内源性抗氧化剂,可减轻SS诱导的氧化应激,抑制铁死亡,恢复成骨细胞功能,并减轻小鼠骨丢失。这些发现强调铁死亡是SS诱导骨质疏松的关键因素,并确定褪黑素是预防和治疗SS诱导骨质疏松的有前景的治疗药物。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
慢性亚硫酸钠暴露是否通过铁死亡途径导致骨丢失,以及褪黑素能否有效干预这一过程?
核心机制
亚硫酸钠暴露通过激活铁死亡途径(表现为GPX4、SLC7A11、FTH1表达下调,脂质过氧化和ROS增加)抑制成骨细胞分化,导致骨形成减少,从而诱发骨质疏松;褪黑素通过抑制铁死亡、恢复抗氧化能力来减轻骨丢失。
主要证据
体内小鼠模型(微CT、HE、IHC、Western blot)和体外MC3T3细胞模型(ALP/ARS染色、qPCR、ROS和铁离子探针)共同证明SS诱导铁死亡和骨丢失,MT抑制铁死亡并恢复成骨能力。
研究意义
研究首次将亚硫酸钠暴露与铁死亡介导的骨质疏松联系起来,并证明褪黑素在其中的治疗潜力,为骨质疏松的防治提供了新策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体内建立亚硫酸钠诱导的骨质疏松小鼠模型

评估慢性亚硫酸钠暴露对小鼠骨量和骨微结构的影响。

使用C57BL/6小鼠,通过灌胃给予不同剂量亚硫酸钠(0、8.6、17.2 mg/kg)连续40天,随后进行micro-CT、HE染色、IHC染色分析。

2

体外验证亚硫酸钠对细胞活力和成骨分化的影响

确定亚硫酸钠对MC3T3细胞活力和成骨分化能力的影响。

MC3T3细胞用不同浓度SS处理24小时,检测细胞活力;用2 mM SS处理24小时后进行成骨诱导分化,进行ALP和ARS染色及成骨相关基因qPCR。

3

转录组分析及铁死亡相关基因验证

探索亚硫酸钠诱导成骨细胞损伤的分子机制,尤其是铁死亡通路。

对SS处理的MC3T3细胞进行RNA-seq,分析差异表达基因和KEGG富集;通过qPCR和Western blot验证铁死亡相关基因(GPX4、SLC7A11、FTH1)的表达。

4

细胞内铁死亡标志物检测

确认亚硫酸钠诱导MC3T3细胞发生铁死亡。

使用C11-BODIPY 581/591探针检测脂质过氧化,DCFH-DA探针检测ROS,FerroOrange探针检测Fe2+。

5

体内铁死亡标志物检测

验证亚硫酸钠暴露在小鼠体内诱导铁死亡。

对小鼠股骨进行Western blot检测GPX4、SLC7A11、FTH1表达,血清GSH和MDA水平,以及GPX4免疫组化染色。

6

褪黑素对细胞铁死亡和成骨分化的保护作用

验证褪黑素能否抑制亚硫酸钠诱导的细胞铁死亡并恢复成骨分化能力。

MC3T3细胞分为对照组、SS组、SS+MT组(MT预处理1小时后加SS处理),进行Western blot、探针染色、ALP和ARS染色及qPCR。

7

褪黑素对小鼠骨丢失的保护作用

评估褪黑素在体内对亚硫酸钠诱导的骨丢失的缓解作用及其机制。

小鼠分为对照组、SS组、SS+MT组,处理40天后进行micro-CT、HE、IHC、Western blot、GSH/MDA检测。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-最低必需培养基Procell--
胎牛血清Procell--
青霉素-链霉素Procell--
亚硫酸钠----
褪黑素----
CCK8工作液SolarbioCat#
BCIP/NBT碱性磷酸酶显色试剂盒Beyotime--
茜素红S染色试剂盒Beyotime--
DCFH-DA探针Beyotime--
C11-BODIPY 581/591----
FerroOrange探针Dojindo--
MDA检测试剂盒Servicebio--
GSH检测试剂盒Servicebio--
FastPure复杂组织/细胞总RNA提取试剂盒Vazyme--
反转录试剂盒Vazyme--
qPCR检测系统Thermo Fisher Scientific--
RIPA裂解液----
BCA试剂盒----
PVDF膜----
GPX4抗体AffinityDF6701
Slc7a11抗体BosterACGI-19
FTH1抗体Santa Cruzsc-376594
β-actin抗体Proteintech81115-1-RR
小鼠二抗BosterBA1050
兔二抗BosterBA1054
SABC-HRP试剂盒Beyotime--
DAB辣根过氧化物酶Beyotime--
山羊血清----
倒置显微镜Nikon--
荧光显微镜Nikon--
切片扫描仪3DHISTECH--
显微CT系统PerkinElmer--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物实验
小鼠品系、性别、体重、分组(对照组、低剂量SS、高剂量SS、高剂量SS+MT)、剂量(SS:8.6/17.2 mg/kg;MT:50 mg/kg)、给药方式(灌胃)、给药时间(40天)、样本量(每组8只)
阅读提示:Materials and methods 中的 Animal experiments 部分
细胞活力检测
细胞接种密度(5000 cells/well)、SS处理浓度范围及时间(24小时)
阅读提示:Materials and methods 中的 Cell viability 部分
成骨分化实验
SS处理条件(2 mM, 24小时)、成骨诱导时间(7天/21天)、染色方法
阅读提示:Materials and methods 中的 Osteogenic induction and ALP staining 和 Alizarin Red S staining
铁死亡相关检测
细胞处理(SS 2 mM、MT 100 μM预处理1小时)、探针孵育时间(30分钟)、检测指标(ROS、脂质过氧化、Fe2+)
阅读提示:Materials and methods 中的 Intracellular ROS measurement 和 C11-BODIPY and FerroOrange staining
Western blot检测
抗体信息(GPX4: Affinity DF6701; Slc7a11: Boster ACGI-19; FTH1: Santa Cruz sc-376594; β-actin: Proteintech 81115-1-RR)、一抗稀释比、检测蛋白(GPX4、SLC7A11、FTH1)
阅读提示:Materials and methods 中的 Western blot assay
micro-CT分析
扫描参数(voxel size 36 μm, 50 kV, 100 μA)、感兴趣区域(从生长板末端延伸1 mm)、骨形态参数(BV/TV, Tb.N, Tb.Th, Tb.Sp)
阅读提示:Materials and methods 中的 Micro-computed tomography
统计分析
重复次数(至少3次)、统计方法(Shapiro-Wilk test, Student's t-test, ANOVA, Kruskal-Wallis test)、显著性水平(p<0.05)
阅读提示:Materials and methods 中的 Statistical analysis