体外培养不同阶段CPS合成检测
评估05ZYH33在不同生长阶段CPS合成量的变化。
将05ZYH33培养至对数期(OD600 0.6)和稳定期(OD600 0.8),收集菌体,通过BATH实验测定表面疏水性,以反映CPS含量。同时检测其他血清型菌株。
Regulative synthesis of capsular polysaccharides in the pathogenesis of Streptococcus suis.
包含体外培养与细胞黏附、血液杀菌实验,以及鼻内感染小鼠模型、组织学、透射电镜、被动转移实验等多个独立证据层级,并进行了功能验证。
小鼠鼻内感染模型(C57BL/6JCnc小鼠) HEp-2人喉上皮细胞 人脑微血管内皮细胞(hBMECs) 猪链球菌血清2型菌株05ZYH33及其无荚膜突变株Δ2BSS2
菌株培养阶段(对数期OD6000.6,稳定期OD6000.8) 小鼠品系、周龄(C57BL/6JCnc,6-7周)和鼻内接种剂量(2×10^8 CFU/10 μL) 抗血清转移途径和剂量(i.n.或i.v.,具体剂量见原文) 感染后检测时间点(0.5h,1h,5h,12h等) 乙酸预处理(1%乙酸,pH4.0)的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估05ZYH33在不同生长阶段CPS合成量的变化。
将05ZYH33培养至对数期(OD600 0.6)和稳定期(OD600 0.8),收集菌体,通过BATH实验测定表面疏水性,以反映CPS含量。同时检测其他血清型菌株。
验证CPS对05ZYH33与宿主细胞结合能力的影响。
将对数期和稳定期的05ZYH33及其无荚膜突变株Δ2BSS2与HEp-2细胞或hBMECs共培养,测定黏附率。
评估CPS对05ZYH33在血液中存活能力的影响。
将对数期和稳定期的05ZYH33和Δ2BSS2与小鼠全血共孵育,测定存活率。
模拟猪链球菌自然感染途径,观察05ZYH33在体内的动态分布和致病过程。
C57BL/6JCnc小鼠经鼻内接种05ZYH33(稳定期),在不同时间点(0.5h至120h)检测NALT、肺、CSF、血液、脾脏和心脏中的CFU。
验证05ZYH33在不同体内部位(NALT、CSF、血液)CPS合成差异。
感染后12小时,从NALT、CSF和血液中分离05ZYH33,不经体外培养,通过BATH实验和透射电镜直接检测CPS层厚度。
评估抗CPS和抗V5血清对05ZYH33在不同部位定植的影响,验证CPS依赖性免疫和非CPS免疫的作用。
通过鼻内或静脉途径将抗CPS或抗V5血清转移至小鼠,6小时后鼻内攻毒05ZYH33,在攻毒后12小时或1小时检测各部位CFU。
确认05ZYH33是否通过嗅神经通路入侵中枢神经系统。
感染后1小时,取小鼠头部进行切片,免疫荧光染色检测嗅上皮和嗅球中的细菌及神经元结构;脑组织进行H&E染色观察炎症。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| Triton X-100 | -- | -- | |
| 细菌培养 | 胰蛋白胨大豆肉汤 | -- | -- |
| 血琼脂 | -- | -- | |
| 新生牛血清 | -- | -- | |
| 二甲苯 | -- | -- | |
| 十六烷 | -- | -- | |
| 蛋白表达纯化 | Ni-NTA琼脂糖 | QIAGEN | 30210 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | TIANGEN | PA115-02 | |
| 抗体纯化 | 不完全弗氏佐剂 | Becton Dickinson | -- |
| 透射电镜 | 环氧树脂(Epon 812) | Merck | -- |
| 醋酸铀 | -- | -- | |
| 柠檬酸铅 | -- | -- | |
| JEM-1400透射电子显微镜 | JEOL | -- | |
| 免疫荧光 | 兔抗猪链球菌抗体 | -- | -- |
| 小鼠抗β-tubulin III抗体 | Merck Millipore | mab5564 | |
| 驴抗兔Cy3 | Jackson ImmunoResearch Laboratories | 711-166-152 | |
| 驴抗小鼠FITC | Jackson ImmunoResearch Laboratories | 715-096-150 | |
| 含DAPI的Vectashield封片剂 | Vector Laboratories | H-1200 | |
| 组织学分析 | 乙酸 | -- | -- |
| 伊红 | -- | -- | |
| 仪器设备 | CMax Plus酶标仪 | Molecular Devices | -- |
| Leica Aperio Versa 200扫描显微镜 | Leica | -- | |
| Leica SCN400切片扫描仪 | Leica Microsystems | -- | |
| Morada数码相机 | Olympus SIS | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细菌培养与CPS检测 | 培养基(TSB-FBS)、生长阶段(log/stationary)、OD600值、BATH实验条件(烃类、孵育时间) 阅读提示:Materials and methods 中 'Bacterial strains and growth conditions'、'Growth curve of 05ZYH33'、'BATH assay' 及 Figure 1 图注 |
| 细胞黏附实验 | 细胞系(HEp-2, hBMECs)、MOI、感染时间、细胞密度 阅读提示:Materials and methods 中 'Cell lines' 及 'Bacterial adherence assay',Figure 2 图注 |
| 血液杀菌实验 | 细菌量、血液来源、孵育时间、对照 阅读提示:Materials and methods 中 'Bactericidal assay',Figure 2 图注 |
| 小鼠感染模型 | 小鼠品系和年龄、麻醉、乙酸预处理、接种剂量和体积、检测时间点 阅读提示:Materials and methods 中 'Mouse infection' 和 'Specimen collection and preparation',Figure 3 图注 |
| 体内CPS检测 | 感染后取材时间(12h)、分离部位、透射电镜样品制备(固定剂、染色) 阅读提示:Materials and methods 中 'Transmission electron microscopy',Figure 4 图注 |
| 被动转移抗血清实验 | 抗血清制备与纯化、转移途径、剂量、攻毒时间 阅读提示:Materials and methods 中 'Preparation and purification of anti-CPS and anti-V5 antibodies'、'Passive antiserum transfer',Figure 5 图注 |
| 组织学与免疫荧光 | 组织固定和切片方法、抗体稀释度、染色和成像参数 阅读提示:Materials and methods 中 'Immunofluorescence staining and confocal microscopy' 和 'Histological analysis of brain tissue',Figure 6 图注 |