猪链球菌致病过程中荚膜多糖的调控合成

Regulative synthesis of capsular polysaccharides in the pathogenesis of Streptococcus suis.

作者信息Xingye Wang, Jie Wang, Ning Li, Xin Fan, Beinan Wang
PMID40548692
期刊Elife
发布时间2025-06-23
DOI10.7554/eLife.101760

实验完整度

高

包含体外培养与细胞黏附、血液杀菌实验,以及鼻内感染小鼠模型、组织学、透射电镜、被动转移实验等多个独立证据层级,并进行了功能验证。

主要模型

小鼠鼻内感染模型(C57BL/6JCnc小鼠) HEp-2人喉上皮细胞 人脑微血管内皮细胞(hBMECs) 猪链球菌血清2型菌株05ZYH33及其无荚膜突变株Δ2BSS2

重点核对

菌株培养阶段(对数期OD6000.6,稳定期OD6000.8) 小鼠品系、周龄(C57BL/6JCnc,6-7周)和鼻内接种剂量(2×10^8 CFU/10 μL) 抗血清转移途径和剂量(i.n.或i.v.,具体剂量见原文) 感染后检测时间点(0.5h,1h,5h,12h等) 乙酸预处理(1%乙酸,pH4.0)的影响

摘要

猪链球菌是一种重要的人畜共患病原体,给养猪业造成重大经济损失。猪链球菌血清2型(SS2)常从病猪中分离。猪链球菌表达荚膜多糖(CPS),这是一种对其在血液中存活至关重要的毒力因子。然而,CPS在猪链球菌致病过程中的作用尚不完全清楚。在此,我们表明薄的CPS或无CPS与SS2菌株05ZYH33有效结合呼吸道上皮细胞相关,而厚的CPS增强了05ZYH33对血液清除的抵抗力。在小鼠感染模型中,鼻内接种后30分钟内,在鼻相关淋巴组织(NALT)和脑脊液(CSF)中检测到05ZYH33,而无菌血症。组织学分析显示,鼻腔中的05ZYH33侵入嗅上皮,导致早期脑炎症。透射电子显微镜显示,在感染早期从NALT和CSF分离的05ZYH33具有薄层CPS,而在接种后5小时在血液中检测到的05ZYH33显示出更厚的CPS。此外,过继转移抗CPS限制了05ZYH33在血液中,但在NALT或CSF中没有。然而,针对多种非CPS毒力因子的抗血清(抗V5)有效抑制了05ZYH33在NALT、CSF和血液中的存在。因此,05ZYH33在没有CPS的情况下更有效地定植于NALT,随后通过嗅觉神经系统侵入脑膜。这些发现为治疗猪链球菌感染和开发针对猪链球菌跨血清型的、靶向CPS非依赖性免疫的疫苗提供了有价值的信息。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
猪链球菌血清2型菌株05ZYH33在自然感染途径(鼻内)中,荚膜多糖(CPS)的合成是否被动态调控,以及CPS在鼻咽定植、血液存活和中枢神经系统入侵中的具体作用是什么?
核心机制
05ZYH33在不同感染阶段动态调控CPS合成:无CPS或薄CPS有利于鼻咽黏膜定植和经嗅神经入侵中枢神经系统;厚CPS增强在血液中的存活能力。
主要证据
通过鼻内感染小鼠模型,检测不同时间点各器官CFU;BATH实验和透射电镜显示不同部位菌株CPS厚度差异;组织学证实嗅上皮入侵;被动转移抗CPS和抗V5血清显示非CPS免疫可阻断鼻-中枢传播。
研究意义
为猪链球菌感染的治疗和开发跨血清型的非CPS依赖性免疫疫苗提供了有价值的信息。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外培养不同阶段CPS合成检测

评估05ZYH33在不同生长阶段CPS合成量的变化。

将05ZYH33培养至对数期(OD600 0.6)和稳定期(OD600 0.8),收集菌体,通过BATH实验测定表面疏水性,以反映CPS含量。同时检测其他血清型菌株。

2

细胞黏附实验

验证CPS对05ZYH33与宿主细胞结合能力的影响。

将对数期和稳定期的05ZYH33及其无荚膜突变株Δ2BSS2与HEp-2细胞或hBMECs共培养,测定黏附率。

3

血液杀菌实验

评估CPS对05ZYH33在血液中存活能力的影响。

将对数期和稳定期的05ZYH33和Δ2BSS2与小鼠全血共孵育,测定存活率。

4

小鼠鼻内感染模型

模拟猪链球菌自然感染途径,观察05ZYH33在体内的动态分布和致病过程。

C57BL/6JCnc小鼠经鼻内接种05ZYH33(稳定期),在不同时间点(0.5h至120h)检测NALT、肺、CSF、血液、脾脏和心脏中的CFU。

5

体内CPS检测

验证05ZYH33在不同体内部位(NALT、CSF、血液)CPS合成差异。

感染后12小时,从NALT、CSF和血液中分离05ZYH33,不经体外培养,通过BATH实验和透射电镜直接检测CPS层厚度。

6

被动转移抗血清实验

评估抗CPS和抗V5血清对05ZYH33在不同部位定植的影响,验证CPS依赖性免疫和非CPS免疫的作用。

通过鼻内或静脉途径将抗CPS或抗V5血清转移至小鼠,6小时后鼻内攻毒05ZYH33,在攻毒后12小时或1小时检测各部位CFU。

7

组织学和免疫荧光分析

确认05ZYH33是否通过嗅神经通路入侵中枢神经系统。

感染后1小时,取小鼠头部进行切片,免疫荧光染色检测嗅上皮和嗅球中的细菌及神经元结构;脑组织进行H&E染色观察炎症。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
Triton X-100----
胰蛋白胨大豆肉汤----
血琼脂----
新生牛血清----
二甲苯----
十六烷----
Ni-NTA琼脂糖QIAGEN30210
BCA蛋白定量试剂盒TIANGENPA115-02
不完全弗氏佐剂Becton Dickinson--
环氧树脂(Epon 812)Merck--
醋酸铀----
柠檬酸铅----
JEM-1400透射电子显微镜JEOL--
兔抗猪链球菌抗体----
小鼠抗β-tubulin III抗体Merck Milliporemab5564
驴抗兔Cy3Jackson ImmunoResearch Laboratories711-166-152
驴抗小鼠FITCJackson ImmunoResearch Laboratories715-096-150
含DAPI的Vectashield封片剂Vector LaboratoriesH-1200
乙酸----
伊红----
CMax Plus酶标仪Molecular Devices--
Leica Aperio Versa 200扫描显微镜Leica--
Leica SCN400切片扫描仪Leica Microsystems--
Morada数码相机Olympus SIS--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细菌培养与CPS检测
培养基(TSB-FBS)、生长阶段(log/stationary)、OD600值、BATH实验条件(烃类、孵育时间)
阅读提示:Materials and methods 中 'Bacterial strains and growth conditions'、'Growth curve of 05ZYH33'、'BATH assay' 及 Figure 1 图注
细胞黏附实验
细胞系(HEp-2, hBMECs)、MOI、感染时间、细胞密度
阅读提示:Materials and methods 中 'Cell lines' 及 'Bacterial adherence assay',Figure 2 图注
血液杀菌实验
细菌量、血液来源、孵育时间、对照
阅读提示:Materials and methods 中 'Bactericidal assay',Figure 2 图注
小鼠感染模型
小鼠品系和年龄、麻醉、乙酸预处理、接种剂量和体积、检测时间点
阅读提示:Materials and methods 中 'Mouse infection' 和 'Specimen collection and preparation',Figure 3 图注
体内CPS检测
感染后取材时间(12h)、分离部位、透射电镜样品制备(固定剂、染色)
阅读提示:Materials and methods 中 'Transmission electron microscopy',Figure 4 图注
被动转移抗血清实验
抗血清制备与纯化、转移途径、剂量、攻毒时间
阅读提示:Materials and methods 中 'Preparation and purification of anti-CPS and anti-V5 antibodies'、'Passive antiserum transfer',Figure 5 图注
组织学与免疫荧光
组织固定和切片方法、抗体稀释度、染色和成像参数
阅读提示:Materials and methods 中 'Immunofluorescence staining and confocal microscopy' 和 'Histological analysis of brain tissue',Figure 6 图注