MSCs的分离与鉴定
验证所购大鼠骨髓MSCs的纯度和干性标志物表达。
使用流式细胞术检测MSCs表面标志物CD29、CD44、CD90、CD105、CD34和CD45的表达。
MiR-126 regulates the effect of mesenchymal stem cell vascular repair on carotid atherosclerosis through MAPK/ERK signaling pathway.
包含体外细胞实验(增殖、迁移、凋亡、内皮分化)、分子机制验证(Western blot检测MAPK/ERK磷酸化)、体内大鼠颈动脉球囊损伤模型移植实验,多个独立证据层级。
大鼠骨髓间充质干细胞 大鼠颈动脉球囊损伤模型
大鼠骨髓间充质干细胞表面标志物表达(CD29、CD44、CD90、CD105阳性,CD34、CD45阴性) miR-126 mimics和inhibitor转染效率及浓度(30 nM) miR-126 mimics对p-ERK1/2和p-p38蛋白磷酸化水平的影响 大鼠颈动脉球囊损伤模型构建(球囊直径1.5-2.0 mm,压力4-6 atm,持续30秒,重复3次) CD31阳性细胞比例及内皮相关基因(vWF、eNOS、VE-cadherin)表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证所购大鼠骨髓MSCs的纯度和干性标志物表达。
使用流式细胞术检测MSCs表面标志物CD29、CD44、CD90、CD105、CD34和CD45的表达。
检测miR-126对MSCs增殖、迁移和凋亡的影响。
使用miR-126 mimics、inhibitor及阴性对照转染MSCs,通过CCK-8、Transwell、流式凋亡检测评估细胞功能。
评估miR-126对MSCs分泌VEGF和bFGF的影响。
通过ELISA检测不同处理组MSCs培养上清中VEGF和bFGF的浓度。
验证miR-126是否通过MAPK/ERK通路发挥作用。
通过Western blot检测各组MSCs中p-ERK1/2、ERK1/2、p-p38、p38的蛋白表达水平。
检测miR-126对MSCs向内皮细胞分化的影响。
使用流式细胞术和免疫荧光检测CD31阳性细胞比例,并通过RT-qPCR检测内皮相关基因(vWF、eNOS、VE-cadherin)的表达。
评估miR-126修饰的MSCs对颈动脉新生内膜增生的治疗效果。
构建大鼠颈动脉球囊损伤模型,将不同处理的MSCs移植入大鼠,28天后开始每隔15天输注一次,至60天处死,进行组织学分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 大鼠骨髓间充质干细胞 | Procell | CP-R131 |
| 完全大鼠MSC培养基 | Qisai Biotechnology | QS-R207A | |
| 低糖DMEM培养基 | Procell | PM150220 | |
| 胎牛血清 | Procell | 164210-50 | |
| 血管内皮生长因子 | Procell | PCK266 | |
| EGM-2 MV SingleQuot试剂盒 | -- | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | -- | -- | |
| 流式细胞术 | CD34抗体 | Thermo Fisher | PA5-85917 |
| CD105抗体 | Thermo Fisher | MA1-19594 | |
| CD29抗体 | BioLegend | 102207 | |
| CD90抗体 | BioLegend | 206105 | |
| CD44抗体 | Thermo Fisher | MA5-17522 | |
| CD45抗体 | BioLegend | 202207 | |
| CD31抗体 | Thermo Fisher | MA5-16954 | |
| 流式细胞仪 | Beckman | CytoFLEX | |
| 细胞转染 | 对照模拟物 | RiboBio | miRN0000001-1-10 |
| miR-126模拟物 | RiboBio | miR10000831-1-5 | |
| 对照抑制剂 | RiboBio | miR2N0000001-1-10 | |
| miR-126抑制剂 | RiboBio | miR20000831-1-5 | |
| CCK-8检测 | CCK-8溶液 | MCE | HY-K0301 |
| 细胞凋亡检测 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | KeyGEN BioTECH | KGA108 |
| ELISA | 大鼠VEGF ELISA试剂盒 | MLbio | ML064294 |
| 大鼠bFGF ELISA试剂盒 | MLbio | ML003037 | |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | Beyotime | P0013B |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0012S | |
| 磷酸化ERK1/2抗体 | Affinity | AF1015 | |
| ERK1/2抗体 | Affinity | AF0155 | |
| 磷酸化p38抗体 | Affinity | AF4001 | |
| p38抗体 | Affinity | AF6456 | |
| GAPDH抗体 | Abcam | ab8245 | |
| 辣根过氧化物酶标记的抗兔IgG | Wuhan Boshide Biotechnology Co. | BA1054 | |
| 山羊抗小鼠IgG (H+L) HRP | Affinity | S0002 | |
| ECL化学发光试剂盒 | Beyotime | P0018 | |
| 扫描仪 | Canon | K10486 | |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | -- | -- |
| EntiLink™第一链cDNA合成试剂盒 | ELK Biotechnology | EQ003 | |
| EnTurbo™ SYBR Green PCR SuperMix | ELK Biotechnology | EQ001 | |
| StepOne™实时荧光定量PCR系统 | Life Technologies | -- | |
| 转染 | 聚凝胺 | -- | -- |
| 动物实验 | 大鼠 | Shanghai Jihui Laboratory Animal Breeding Co., Ltd. | SCXK(Shanghai)2022-0009 |
| 球囊导管 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与鉴定 | 大鼠骨髓MSCs来源(产品号CP-R131)和培养条件(37°C, 5% CO2);表面标志物表达比例(CD29 93.75%, CD44 93.58%, CD90 98.01%, CD105 96.08%阳性;CD34 4.12%, CD45 3.44%阴性) 阅读提示:Materials and Methods: Cell culture; Flow cytometry; Figure 2 |
| miR-126转染与功能检测 | 转染试剂类型和浓度(30 nM mimics/inhibitor);CCK-8检测时间点(48小时)和吸光度测量;Transwell迁移实验的细胞密度(5×10^5/mL)和孵育时间(24小时);凋亡检测的孵育时间(10分钟) 阅读提示:Materials and Methods: CCK-8 assay; Transwell assay; Cell apoptosis; Figure 3 |
| ELISA检测VEGF和bFGF | ELISA试剂盒(MLbio)和操作步骤(标准品和样本各50 μL,生物素化抗体,37°C孵育1小时) 阅读提示:Materials and Methods: Enzyme-linked immunosorbent assay; Figure 6 |
| Western blot检测MAPK通路 | 细胞裂解和蛋白定量;一抗稀释比例(1:1000)和孵育条件(4°C过夜);二抗稀释比例(1:10000或1:5000)和孵育条件(37°C, 2小时) 阅读提示:Materials and Methods: Western blot analysis; Figure 4 |
| 内皮分化评估 | CD31阳性细胞比例(VEGF+miR-126 mimics: 72.26%, VEGF-only: 54.85%, VEGF+miR-126 inhibitor: 20.49%);内皮相关基因表达(vWF, eNOS, VE-cadherin)的RT-qPCR条件 阅读提示:Results: Characterization of differentiated cells: CD31; Figure 7; Figure 8 |
| 体内动物模型 | 大鼠品系、周龄(约8周)、体重和饲养条件;球囊损伤参数(球囊直径1.5-2.0 mm,压力4-6 atm,持续30秒,重复3次);MSC移植时间点(术后28天、42天、58天)和数量(未明确说明);组织收集时间(术后60天) 阅读提示:Materials and Methods: Surgical procedures; Results: MSC transplantation reduces rat carotid arteriosclerosis; Figure 9 |