PRDM1表达分析
验证PRDM1在胃癌组织和细胞中的表达水平及其与患者预后的关系。
利用TNMplot、GEPIA2和KMplot在线数据库分析PRDM1表达及生存关联;通过RT-qPCR和Western blot检测胃癌细胞系中PRDM1的表达。
PRDM1 promotes the stemness of gastric cancer cells by enhancing the transactivation of Myc.
包含体外细胞功能实验(干细胞标志物、成球、CD44+)、体内移植瘤实验、机制验证(ChIP、荧光素酶报告基因)及生信分析等多层级证据。
人胃癌细胞系MKN45和AGS 顺铂耐药AGS细胞系AGS-cisR BALB/c裸鼠皮下移植瘤模型 TCGA胃癌患者样本队列
PRDM1在MKN45和AGS中的敲低效率(RT-qPCR验证) shRNA序列及慢病毒载体GV248 皮下移植瘤细胞数量(1×10^7、1×10^6、1×10^5)及小鼠数量(每组6只) ChIP实验中的PRDM1抗体及Myc启动子富集
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证PRDM1在胃癌组织和细胞中的表达水平及其与患者预后的关系。
利用TNMplot、GEPIA2和KMplot在线数据库分析PRDM1表达及生存关联;通过RT-qPCR和Western blot检测胃癌细胞系中PRDM1的表达。
探究PRDM1是否调控胃癌细胞干性相关标志物的表达。
通过慢病毒感染构建PRDM1稳定敲低的MKN45和AGS细胞,利用RT-qPCR和Western blot检测Oct4、KLF4、Myc等标志物的表达变化。
验证PRDM1对胃癌细胞干性功能特性的影响。
通过球体形成实验评估成球大小和数量;通过流式细胞术检测CD44+细胞亚群比例。
评估PRDM1对胃癌细胞体内致瘤能力的影响。
将不同数量的MKN45细胞(PRDM1敲低或对照)皮下注射至裸鼠,21天后记录肿瘤形成率和大小,并使用ELDA分析干细胞频率,通过IHC检测肿瘤组织中Oct4和KLF4表达。
探究PRDM1对胃癌细胞转移和耐药能力的影响。
通过Transwell实验检测迁移和侵袭能力;通过CCK8实验检测细胞在顺铂处理下的存活率,并使用AGS-cisR细胞验证PRDM1表达与耐药的关系。
验证PRDM1是否通过直接结合Myc启动子调控其转录。
使用JASPAR预测结合位点,通过ChIP实验验证PRDM1与Myc启动子的结合;通过荧光素酶报告基因实验检测PRDM1敲低或结合位点突变对Myc启动子活性的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Procell | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| RT-qPCR | qScript cDNA合成预混液 | Quantabio | -- |
| Power SYBR Green预混液 | Invitrogen | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | KeyGen | -- |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| ECL发光液 | Solarbio | -- | |
| 慢病毒包装 | GV248载体 | Genechem | -- |
| CCK8实验 | CCK-8试剂盒 | Solarbio | -- |
| Transwell实验 | 基质胶 | Chemicon | -- |
| 荧光素酶报告基因 | pmirGLO质粒 | Promega | -- |
| Mut Express II快速突变试剂盒V2 | Vazyme | C214-01 | |
| 双荧光素酶检测试剂盒 | Promega | -- | |
| ChIP实验 | SimpleChIP酶法染色质IP试剂盒 | CST | -- |
| 动物实验 | BALB/c裸鼠 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源(Procell)、培养基类型、培养条件(37°C、5% CO2)、AGS-cisR细胞耐药指数 阅读提示:Materials and methods: Cell culture |
| RT-qPCR | 总RNA提取试剂、逆转录试剂、qPCR试剂、引物序列、内参基因(GAPDH)、相对定量方法(2^-ΔΔCt) 阅读提示:Materials and methods: Real-time quantitative PCR |
| Western blot | 蛋白提取缓冲液、SDS-PAGE凝胶浓度、转膜条件、抗体孵育条件、ECL显色试剂 阅读提示:Materials and methods: Western blot |
| 慢病毒感染 | shRNA序列、载体GV248、感染方法(polybrene)、筛选药物(puromycin)、敲低效率验证 阅读提示:Materials and methods: Lentivirus package and stable cell line construction |
| 成球实验 | 具体实验步骤(参考前期研究) 阅读提示:Materials and methods: Sphere-formation assay |
| 流式细胞术 | 细胞密度(10^6 cells/mL)、离心条件、抗体(anti-CD44-APC)及孵育条件 阅读提示:Materials and methods: Flow cytometry assay |
| CCK8实验 | 细胞接种密度(1000 cells/well)、顺铂浓度(500 nM)、处理时间(24、48、72小时)、CCK-8孵育条件 阅读提示:Materials and methods: CCK8 assay |
| Transwell实验 | 细胞接种数量、Matrigel包被与否、下室含10% FBS培养基、孵育时间(48小时) 阅读提示:Materials and methods: Transwell migration and invasion analysis |
| 荧光素酶报告基因 | 启动子载体构建(pmirGLO)、突变试剂盒(Vazyme C214-01)、转染条件、检测时间(72小时) 阅读提示:Materials and methods: Luciferase reporter assay |
| ChIP实验 | 染色质片段大小(200-600 bp)、抗体(PRDM1、IgG)、孵育时间(6小时)、qPCR检测 阅读提示:Materials and methods: Chromatin immunoprecipitation assay |
| 体内致瘤实验 | 细胞数量(1×10^7、1×10^6、1×10^5)、注射部位(右腋窝)、小鼠周龄和体重(6周、18-22g)、每组数量(6只)、观察时间(21天)、ELDA分析 阅读提示:Materials and methods: In vivo tumorigenic assay |
| IHC | 抗原修复条件、抗体孵育条件、DAB显色时间、苏木素复染时间 阅读提示:Materials and methods: Immunohistochemistry assay |