SPI1上调LILRB2通过抑制TLR8介导的MyD88/NF-κB信号增强LPS耐受巨噬细胞的免疫抑制表型

SPI1 upregulated LILRB2 to enhance the immunosuppressive phenotype of LPS-tolerant macrophages by inhibiting TLR8-mediated MyD88/NF-κB signaling.

作者信息Ruojing Bai, Jun Guo
PMID40551156
发布时间2025-06-23
DOI10.1186/s13062-025-00669-0

实验完整度

实验中包含体外细胞模型、功能验证(CCK-8、凋亡、极化)和机制验证(Co-IP、ChIP、双荧光素酶),但缺乏动物模型和临床样本验证。

主要模型

THP-1细胞衍生的巨噬细胞 人外周血单核细胞衍生的巨噬细胞

重点核对

LPS处理浓度10 ng/mL及单次或连续刺激 LILRB2敲低和过表达效率验证 SPI1敲低和过表达对LILRB2表达的影响 TLR8激动剂VTX-2337(1 µg/mL)处理

摘要

在脓毒症中,免疫抑制通常表现为巨噬细胞的脂多糖(LPS)耐受。白细胞免疫球蛋白样受体B2(LILRB2)是免疫细胞上的抑制性受体,可能在LPS耐受巨噬细胞的免疫抑制表型中发挥关键作用,尽管其在脓毒症中的确切功能仍不清楚。在本研究中,巨噬细胞接受单次或连续LPS刺激以诱导LPS刺激或耐受。使用CCK-8法评估细胞活力,通过流式细胞术检测细胞凋亡和巨噬细胞极化,通过RT-qPCR和ELISA测量促炎细胞因子水平。使用Co-IP、ChIP和双荧光素酶实验探索分子相互作用,而mRNA和蛋白表达通过RT-qPCR和Western blotting评估。结果显示,LPS刺激后巨噬细胞中LILRB2上调,在LPS耐受组中增加更显著。敲低LILRB2逆转了LPS耐受巨噬细胞的免疫抑制表型,并恢复了由LPS耐受引起的MyD88/NF-κB信号和p65核转位的抑制。机制上,LILRB2与Toll样受体8(TLR8)相互作用,抑制LPS耐受巨噬细胞中的MyD88/NF-κB信号通路。此外,Spi-1原癌基因(SPI1)的上调通过转录激活LILRB2增强免疫抑制表型。总之,SPI1上调通过激活LILRB2转录促进LPS耐受巨噬细胞的免疫抑制表型,从而抑制TLR8介导的MyD88/NF-κB信号。本研究阐明了LILRB2在LPS耐受巨噬细胞中的作用及其潜在机制。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
LILRB2在LPS耐受巨噬细胞免疫抑制表型中的作用及其机制是什么?
核心机制
SPI1转录激活LILRB2,上调的LILRB2与TLR8相互作用,抑制TLR8介导的MyD88/NF-κB信号通路,从而增强巨噬细胞的免疫抑制表型。
主要证据
体外巨噬细胞模型(THP-1和PBMC来源)中,LPS耐受诱导LILRB2上调;敲低LILRB2逆转免疫抑制表型并恢复MyD88/NF-κB信号;Co-IP验证LILRB2与TLR8互作;ChIP和双荧光素酶验证SPI1对LILRB2的转录激活。
研究意义
本研究揭示了脓毒症免疫抑制的新机制,将LILRB2作为逆转巨噬细胞LPS耐受的潜在治疗靶点,为脓毒症免疫抑制治疗提供理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立LPS耐受巨噬细胞模型

诱导并验证LPS耐受巨噬细胞的免疫抑制表型。

使用THP-1细胞经PMA诱导分化为巨噬细胞,或用GM-CSF从PBMC分化巨噬细胞,通过单次或连续LPS刺激建立LPS刺激和LPS耐受模型,并通过CCK-8、流式细胞术、RT-qPCR和ELISA验证细胞活力、凋亡、极化及炎症因子水平。

2

敲低或过表达LILRB2

探究LILRB2对LPS耐受巨噬细胞免疫抑制表型的影响。

用慢病毒感染THP-1细胞建立稳定的LILRB2敲低或过表达,然后诱导LPS耐受,检测细胞活力、凋亡、炎症因子和M1极化。

3

验证LILRB2与TLR8的互作及信号通路

确定LILRB2是否通过TLR8抑制MyD88/NF-κB通路。

通过STRING数据库预测并Co-IP验证LILRB2与TLR8互作,Western blot检测MyD88/NF-κB通路蛋白以及p65核转位。

4

测试TLR8激动剂对LILRB2诱导表型的逆转

确认LILRB2对免疫抑制表型的作用依赖于TLR8。

在LILRB2过表达的LPS耐受巨噬细胞中,用TLR8激动剂VTX-2337处理,观察细胞活力、凋亡、炎症因子和M1极化是否恢复。

5

验证SPI1对LILRB2的转录调控

证实SPI1转录激活LILRB2表达。

通过GeneCard预测转录因子,敲低SPI1观察LILRB2表达变化,用JASPAR预测结合位点,并通过ChIP和双荧光素酶报告基因验证。

6

验证SPI1-LILRB2轴的因果链

确认SPI1通过调控LILRB2影响LPS耐受表型。

在SPI1敲低的基础上过表达LILRB2,观察细胞活力、凋亡、炎症因子、M1极化和MyD88/NF-κB通路是否逆转。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
佛波醇酯Millipore Sigma--
粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子BioLegend--
RosetteSep试剂盒----
脂多糖----
VTX-2337----
Lipofectamine 3000Thermo Fisher Scientific--
嘌呤霉素Thermo Fisher--
CCK-8试剂盒Dojindo Laboratories--
Annexin V凋亡检测试剂盒Beyotime Biotechnology--
FACSCanto IIBD--
FlowJo软件----
抗CD86抗体Abcamab239075
抗CD206抗体Wuhan Proteintech18704-1-AP
ChIP试剂盒Cell Signaling Technology--
SPI1抗体Abcamab302623
pGL3载体Promega--
Lipofectamine 2000Invitrogen--
蛋白A/G琼脂糖珠Sigma-Aldrich--
IgG抗体Abcamab172730
LILRB2抗体Thermo Fisher ScientificH00010288-M01
TLR8抗体Santa Cruz Biotechnologysc-135584
TNF-α、IL-6、IL-1β、IL-8 ELISA试剂盒R&D Systems--
NE-PER核质提取试剂盒Thermo Fisher Scientific--
BCA蛋白定量试剂盒Thermo Fisher--
TRIzol试剂Invitrogen--
PrimeScript反转录试剂盒Takara--
SYBR Green PCR预混液----
ABI 7500实时荧光定量PCR系统Applied Biosystems--
LILRB2抗体Thermo Fisher ScientificH00010288-M01
TLR8抗体Santa Cruz Biotechnologysc-135584
p65抗体Abcamab32536
磷酸化p65抗体Abcamab7630
MyD88抗体Abcamab133739
磷酸化TAK1抗体Abcamab109404
β-肌动蛋白抗体Abcamab8226
辣根过氧化物酶标记二抗----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与分化
THP-1细胞用PMA浓度150 ng/mL处理24小时;PBMC用GM-CSF 5000 U/mL培养
阅读提示:Materials and methods: Cell culture and differentiation
LPS耐受诱导
LPS浓度10 ng/mL,单次或连续刺激时间均为24小时
阅读提示:Materials and methods: Treatment of LPS-tolerant macrophages; Figure S1
基因敲低或过表达
慢病毒载体(sh-LILRB2, sh-SPI1, LV-LILRB2)的序列及感染效率;嘌呤霉素筛选浓度5 µg/mL,处理5天
阅读提示:Materials and methods: Lentivirus packaging and infection
TLR8激动剂处理
VTX-2337浓度1 µg/mL,处理时间24小时
阅读提示:Materials and methods: Treatment of LPS-tolerant macrophages
检测方法与统计
所有实验生物学重复3次;数据分析使用单因素方差分析和Tukey事后检验,显著性水平P<0.05
阅读提示:Materials and methods: Data analysis