建立DM合并MAFLD大鼠模型
建立糖尿病合并代谢相关脂肪性肝病大鼠模型,以评估hUC-MSCs的治疗效果。
雄性SD大鼠随机分为对照组和DM组,DM组腹腔注射STZ(60 mg/kg),同时对照组注射等量柠檬酸缓冲液。造模成功后,DM组给予高脂高糖饮食至实验结束。第10周,DM组随机分为DM组和DM+hUC-MSCs组,后者经尾静脉注射hUC-MSCs悬液(1×10^6 cells/mL)。
Human umbilical cord mesenchymal stem cells ameliorate liver metabolism in diabetic rats with metabolic-associated fatty liver disease.
包含细胞培养、动物模型建立、生化指标检测、组织学染色、肝脏代谢组学分析及多组学数据验证,证据层级丰富。
Sprague-Dawley大鼠模型 STZ诱导的糖尿病合并MAFLD大鼠模型 hUC-MSCs(人脐带间充质干细胞)
STZ剂量:60 mg/kg,单次腹腔注射;STZ溶液浓度2%(w/v) hUC-MSCs注射细胞数:1×10^6 cells/mL,1 mL,尾静脉注射 DM模型成功标准:连续3天血糖≥16.7 mmol/L DM组在造模后给予高脂高糖饮食,对照组正常饮食 实验终点:第14周末,检测血清TG、ALT、AST
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立糖尿病合并代谢相关脂肪性肝病大鼠模型,以评估hUC-MSCs的治疗效果。
雄性SD大鼠随机分为对照组和DM组,DM组腹腔注射STZ(60 mg/kg),同时对照组注射等量柠檬酸缓冲液。造模成功后,DM组给予高脂高糖饮食至实验结束。第10周,DM组随机分为DM组和DM+hUC-MSCs组,后者经尾静脉注射hUC-MSCs悬液(1×10^6 cells/mL)。
评估hUC-MSCs对体重、空腹血糖、血清TG、ALT、AST水平及肝脏病理变化的影响。
每周记录体重和FBG;实验结束时,采集血清和肝组织。血清检测TG、ALT、AST;肝组织固定后行HE染色观察脂肪变性和损伤。
探究hUC-MSCs对肝脏代谢谱的调节作用及潜在代谢通路。
采用非靶向液相色谱-质谱联用技术分析肝组织代谢物,通过PCA、OPLS-DA、KEGG通路富集分析及差异代谢物筛选,评估hUC-MSCs对肝脏代谢的影响。
评估关键差异代谢物对DM合并MAFLD的诊断价值及对hUC-MSC治疗效果的预测能力,并分析其与生化指标的相关性。
对70种关键差异代谢物进行ROC曲线分析,构建随机森林模型,并进行Spearman相关性分析,探讨代谢物与FBG、TG、ALT、AST的关系。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| DM+MAFLD模型建立 | STZ剂量(60 mg/kg,单次腹腔注射)、STZ溶液浓度(2% w/v)、模型成功标准(连续3天血糖≥16.7 mmol/L)、高脂高糖饮食(12451M) 阅读提示:Materials and Methods: Establishment of a rat model of DM and grouping |
| hUC-MSCs干预 | 细胞浓度(1×10^6 cells/mL)、注射体积(1 mL)、注射途径(尾静脉)、细胞代数(第三代和第五代) 阅读提示:Materials and Methods: Cell culture and Cell suspension |
| 样本采集与检测 | 实验终点(第14周末)、血清TG/ALT/AST检测、肝组织固定(4%多聚甲醛) 阅读提示:Materials and Methods: Sample collection |
| 肝脏代谢组学 | 样本量(对照组n=8,DM组n=6,DM+hUC-MSCs组n=5)、色谱条件(Waters ACQUITY Premier HSS T3 Column)、质谱正负离子模式、差异代谢物筛选标准(VIP>1, P<0.05) 阅读提示:Materials and Methods: Liver metabolomics and Metabolomic data analysis |
| 统计分析与验证 | 统计方法(t检验、单因素方差分析、Spearman相关)、ROC分析(AUC阈值)、随机森林模型 阅读提示:Materials and Methods: Statistical analysis and Results: Key differential metabolites |