动物模型建立与药物处理
建立DHEA处理的雌性小鼠模型,以评估其抗抑郁作用。
6-8周龄雌性C57BL/6J小鼠适应环境后,随机分为DHEA组和对照组,DHEA组每日皮下注射DHEA(30 mg/kg),对照组注射等体积芝麻油,连续21天。
Androgens alleviate the depression-like phenotype in female mice by inhibiting AVPR1a in the hippocampal brain region.
包含体内行为学与电生理、转录组分析、分子验证和体外机制实验等至少两个独立证据层级,并进行功能与机制验证。
雌性C57BL/6J小鼠模型 HT22小鼠海马神经元细胞系
DHEA给药剂量:30 mg/kg/天,皮下注射,连续21天;体外处理浓度10 µM和20 µM,24-48小时 行为学测试包括FST、TST和OFT,每组15-16只(FST/TST),OFT行为测试在末次给药后24小时内进行 在体电生理记录vHPC CA1区神经元放电频率,每组3只小鼠,每只记录2-3个神经元 RNA-seq分析每组4只小鼠的海马组织,筛选差异表达基因阈值:p<0.05且FC≥2或≤0.5 ChIP-PCR验证AR与Avpr1a启动子结合,实验重复三次
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立DHEA处理的雌性小鼠模型,以评估其抗抑郁作用。
6-8周龄雌性C57BL/6J小鼠适应环境后,随机分为DHEA组和对照组,DHEA组每日皮下注射DHEA(30 mg/kg),对照组注射等体积芝麻油,连续21天。
评估DHEA处理对雌性小鼠抑郁样和焦虑样行为的影响。
在给药结束后,依次进行OFT、FST和TST行为测试,记录不动时间、总运动距离等指标。
检测DHEA处理对雌性小鼠腹侧海马CA1区神经元兴奋性的影响。
在给药第22天,麻醉小鼠并固定于立体定位仪,记录vHPC CA1区神经元的自发放电活动。
筛选DHEA处理后海马组织中差异表达基因及富集通路。
提取海马组织总RNA,进行RNA-seq,使用DESeq2分析差异表达基因,并进行GO和KEGG富集分析。
验证RNA-seq结果中候选差异基因的表达变化。
在额外海马样本中用qRT-PCR检测Avpr1a、Pomc、P2ry10b、Wnt3a、Aox2、Ccr10的mRNA水平。
检测DHEA处理对海马AVP系统(AVPR1a、AVP、OT)的影响。
用Western blot检测AVPR1a蛋白水平,用ELISA检测AVP和OT含量。
验证DHEA调控Avpr1a表达的分子机制,即AR直接结合Avpr1a启动子。
在HT22细胞中用ChIP-PCR检测AR与Avpr1a启动子区域的结合。
验证DHEA通过AR抑制AVPR1a表达的剂量和时间依赖性,并测试受体拮抗剂的作用。
用不同浓度(0, 10, 20 µM)的DHEA处理HT22细胞不同时间(24, 48 h),并用氟他胺预处理,检测AR和AVPR1a的mRNA和蛋白水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | 脱氢表雄酮 | MCE | HY-14650 |
| 药物处理(对照) | 芝麻油 | Beyotime | ST2627 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素溶液 | -- | -- | |
| 药物处理 | 氟他胺 | -- | -- |
| 行为学实验 | 强迫游泳实验装置 | -- | -- |
| 悬尾实验装置 | -- | -- | |
| 旷场实验装置 | -- | -- | |
| 在体电生理 | 立体定位仪 | Narishige | -- |
| 微电极拉制仪 | Sutter | P-97 | |
| 考马斯亮蓝 | Beyotime | P0017 | |
| 前置放大器 | Axon Clamp 900A | -- | |
| 示波器 | Nicolet | 2090-I | |
| Clampfit 10.2软件 | Axon | -- | |
| 恒温加热垫 | WPI | ATC1000 | |
| RNA-seq | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo Scientific | -- | |
| Agilent 2100生物分析仪 | Agilent Technologies | -- | |
| VAHTS Universal V6 RNA-seq文库制备试剂盒 | -- | -- | |
| ChIP-PCR | SimpleChIP®酶染色质免疫沉淀试剂盒(磁珠) | Cell Signaling Technology | #9003 |
| G蛋白磁珠 | Invitrogen | 10612D | |
| Western blot | 抗AVPR1a抗体 | Boster | BA3463-2 |
| 抗AR抗体 | Abcam | ab108341 | |
| 抗GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | #5174 | |
| 山羊抗兔IgG | Abcam | ab6721 | |
| 化学发光反应液 | BIO-RAD | #170-5061 | |
| 化学发光成像分析系统 | Tanon | #4600SF | |
| qRT-PCR | M-MLV逆转录酶 | Invitrogen | -- |
| 染料法qRT-PCR定量试剂盒 | GenePharma | #E21001 | |
| 实时荧光定量PCR仪 | Thermo | ABI 7500 | |
| ELISA | AVP ELISA试剂盒 | BYabscience | #BY-EM222476 |
| OT ELISA试剂盒 | MEIMIAN | #MM-0276M1 | |
| 组织学 | 乙醇 | -- | -- |
| 石蜡 | -- | -- | |
| 切片机 | Leica | CM1850 | |
| 光学显微镜 | Nikon | Eclipse Ci-L | |
| 生化分析 | RIPA裂解缓冲液 | -- | -- |
| 蛋白酶抑制剂 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物处理 | 雌性C57BL/6J小鼠,6-8周龄,DHEA剂量30 mg/kg/天,皮下注射,连续21天;对照组芝麻油;行为测试在动情周期间情期或间情期进行 阅读提示:Materials and methods: Animal housing and drug administration |
| 行为学测试 | FST和TST每组15-16只,OFT进行10分钟,FST和TST测试6分钟记录后4分钟;行为测试在末次给药后24小时内进行(OFT和FST),TST在48小时内进行 阅读提示:Materials and methods: Behavior tests, FST, TST, OFT |
| 在体电生理 | 记录vHPC CA1区,AP: -2.92 mm; ML: ±3.04 mm; DV: -2.8 mm;电极电阻6-8 MΩ;戊巴比妥钠麻醉45 mg/kg i.g.;每组3只小鼠,每只记录2-3个神经元 阅读提示:Materials and methods: In vivo electrophysiology |
| RNA-seq | 每组4只小鼠的海马组织;测序平台Illumina NovaSeq 6000;差异基因阈值p<0.05且FC≥2或≤0.5 阅读提示:Materials and methods: RNA sequencing and differentially expressed gene analysis |
| 分子验证 | qRT-PCR每组n=9,内参ACTB;Western blot每组n=3,抗体anti-AVPR1a (1:1000),anti-GAPDH (1:1000);ELISA每组n=7-8 阅读提示:Materials and methods: Quantitative real-time PCR, Western blot, Enzyme-linked immunosorbent assay |
| ChIP-PCR | HT22细胞,anti-AR抗体(#ab108341),针对Avpr1a启动子的5对引物,实验重复三次 阅读提示:Materials and methods: Chromatin Immunoprecipitation (ChIP) assay |
| 细胞功能实验 | HT22细胞,DHEA浓度0、10、20 µM,处理24和48小时;氟他胺10 µM预处理1小时 阅读提示:Materials and methods: Cell culture and androgen treatment |