GA-MSCs与GSCs的分离与鉴定
验证所得细胞符合MSCs和GSCs的特征。
从人胶质瘤标本中分离GA-MSCs,通过表面标记物流式鉴定和多向分化实验验证其MSC特性;GSCs通过悬浮和贴壁培养及标记物免疫荧光验证。
PDCL3 promotes the vasculogenic mimicry of glioma-associated mesenchymal stem cells through VEGFR-2 in glioma environment.
包含体外细胞模型(GA-MSCs、HUVECs)、基因敲低/过表达、蛋白质互作验证(Co-IP)、体内原位移植瘤模型及组织学分析,具有功能与机制验证。
胶质瘤相关间充质干细胞(GA-MSCs) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 胶质瘤干细胞(GSCs) BALB/c裸鼠原位移植瘤模型
PDCL3敲低对GA-MSCs分化和血管生成拟态的影响 PDCL3与VEGFR-2的相互作用 外源VEGF处理对GA-MSCs血管生成拟态的影响 VEGFR-2过表达对PDCL3敲低效应的挽救 动物实验中GA-MSCs与GSCs共植入的肿瘤体积和血管标记物表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证所得细胞符合MSCs和GSCs的特征。
从人胶质瘤标本中分离GA-MSCs,通过表面标记物流式鉴定和多向分化实验验证其MSC特性;GSCs通过悬浮和贴壁培养及标记物免疫荧光验证。
检测胶质瘤条件培养基对GA-MSCs血管生成拟态和周细胞标记物表达的影响。
用U87-CM和GSC-CM处理GA-MSCs,进行试管形成实验和western blot检测周细胞标记物(α-SMA、DESMIN),以及免疫荧光染色。
鉴定在胶质瘤条件下GA-MSCs中变化显著的血管生成相关基因。
对DMEM和GSC-CM处理的GA-MSCs进行基因微阵列分析,筛选差异表达基因,通过生信分析选择PDCL3,并通过western blot和RT-qPCR验证。
确定PDCL3是否调控GA-MSCs的周细胞分化和血管生成拟态。
用shPDCL3慢病毒敲低GA-MSCs中PDCL3表达,检测PDCL3、VEGFR-2和周细胞标记物的表达,并进行试管形成实验。
评估PDCL3在体内对胶质瘤进展和血管生成的作用。
将shPDCL3-MSC或NC-MSC与GSCs共植入裸鼠颅内,监测肿瘤体积,并通过免疫组化和免疫荧光检测CD31和α-SMA表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Hyclone | SH30243.01 |
| 胎牛血清 | Vivacell | C04001-500 | |
| 青霉素-链霉素溶液,100X | Biosharp | BL505A | |
| Accutase | Stemcell | 07922 | |
| DMEM/F12培养基 | Hyclone | SH30023.01 | |
| B27添加剂 | Gibco | 17504044 | |
| N2添加剂 | Gibco | 17502048 | |
| 成纤维细胞生长因子2 | Gibco | GMP100-18B-1MG | |
| 表皮生长因子 | Gibco | GMP100-15-500UG | |
| 层粘连蛋白 | Gibco | 23017015 | |
| 基质胶 | Corning | 354234 | |
| 药物处理 | 人VEGF121重组蛋白 | Proteintech | HZ-1204 |
| Western blot | RIPA裂解液 | Servicebio | G2002-100ML |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Servicebio | G2026-200T | |
| PDCL3兔多克隆抗体 | Invitrogen/Thermo Fisher | PA5-113381 | |
| VEGF受体2兔单克隆抗体 | Abcam | ab315238 | |
| VEGF受体2兔多克隆抗体 | Abcam | ab2349 | |
| α-平滑肌肌动蛋白小鼠单克隆抗体 | Abcam | ab7817 | |
| 结蛋白兔单克隆抗体 | Abcam | ab32362 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | Servicebio | GB23303 | |
| 免疫沉淀 | BeyoMag™蛋白A+G磁珠 | Beyotime | P2108 |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | Takara | 9108 |
| 逆转录试剂盒 | Takara | RR036A | |
| TB Green Premix Ex Taq II | Takara | RR820A | |
| 流式分析 | CD105单克隆抗体(APC) | eBioscience/Thermo Fisher | 17-1057-42 |
| CD90单克隆抗体(PerCP-Cyanine5.5) | eBioscience/Thermo Fisher | 45-0909-42 | |
| CD73单克隆抗体(APC-eFluor780) | eBioscience/Thermo Fisher | 47-0739-42 | |
| CD44单克隆抗体(FITC) | eBioscience/Thermo Fisher | 11-0441-86 | |
| 免疫组化/免疫荧光 | CD31兔单克隆抗体 | Abclonal | A19014 |
| 免疫荧光 | CD133兔多克隆抗体 | Proteintech | 18470-1-AP |
| Nestin兔多克隆抗体 | Proteintech | 19483-1-AP | |
| iF488-酪胺信号放大试剂 | Servicebio | G1231-25UL | |
| iF555-酪胺信号放大试剂 | Servicebio | G1233-25UL | |
| 细胞分离 | 含酚红无EDTA胰酶溶液 | Beyotime | C0207 |
| 70微米尼龙网 | Falcon/Corning | 352340/431751 | |
| 红细胞裂解液 | Servicebio | G2015-500ML | |
| 淋巴细胞分离液 | Servicebio | G2097-100ML | |
| 基因微阵列 | 人类基因表达芯片 | Affymetrix | 902923 |
| Agilent RNA 6000纳米试剂盒 | Agilent | 5067-1511 | |
| 基因芯片WT PLUS试剂盒 | Thermo Fisher | 902280 | |
| 基因芯片杂交洗涤染色试剂盒 | Thermo Fisher | 900720 | |
| 动物实验 | 汉密尔顿注射器 | Hamilton Company | -- |
| 生物发光成像系统 | Bruker Corporation | -- | |
| 组织学染色 | DAB显色液 | Servicebio | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| GA-MSCs分离和培养 | 组织来源、消化时间、离心条件、培养条件和传代方法 阅读提示:STAR★Methods: Isolation and culture of human GA-MSCs |
| GSCs分离和培养 | 组织消化、培养基成分(B27、N2、FGF2、EGF浓度)和培养条件 阅读提示:STAR★Methods: Isolation and culture of human glioma stem cells |
| 条件培养基收集 | 细胞密度、血清饥饿时间、离心速度和时间 阅读提示:STAR★Methods: Collection of glioma stem cells and U87 MG cells conditioned medium |
| 慢病毒转染 | 慢病毒载体类型、转染时细胞密度、病毒体积、观察时间 阅读提示:STAR★Methods: Lentivirus and transfection |
| Western blot | 抗体稀释比例、孵育条件、蛋白提取和定量方法 阅读提示:STAR★Methods: Western blot and co-immunoprecipitation (Co-IP) assays |
| RT-qPCR | RNA提取方法、逆转录试剂盒、PCR系统、内参基因 阅读提示:STAR★Methods: RT-qPCR |
| 试管形成实验 | Matrigel包被条件、细胞接种密度、培养基条件、观察时间 阅读提示:STAR★Methods: Tube formation |
| 体内实验 | 小鼠品系、年龄、性别、细胞注射数量、注射坐标、监测方法 阅读提示:STAR★Methods: Intracranial xenograft model |