以米替福新靶向CCR5作为血小板减少症的治疗策略

Targeting CCR5 with miltefosine as a therapeutic strategy for thrombocytopenia.

作者信息Qinyao Li, Ting Zhang, Zhichao Li, Xiao Qi, Xinyue Mei, Sheng Liu, Siyu He, Gan Qiao, Rong Li, Hongping Shen, Jing Zeng, Feihong Huang, Shuang Dai, Sirui Li, Jiesi Luo, Jianming Wu, Long Wang
PMID40292315
期刊iScience
发布时间2025-04-08
DOI10.1016/j.isci.2025.112379

实验完整度

包含体外细胞分化实验、体内小鼠模型、分子结合实验及信号通路抑制验证等多层级实验,并进行了机制验证。

主要模型

K562细胞 HEL细胞 辐照诱导血小板减少症小鼠模型(RIT小鼠)

重点核对

米替福新浓度及处理时间:体外10-40 μM处理5天,体内10、20、40 mg/kg连续给药16天 CCR5抑制剂maraviroc(1 μM)对米替福新诱导巨核细胞分化的阻断作用 MAPK抑制剂SCH772984(1 μM)和JAK2抑制剂ruxolitinib(0.5 μM)对信号通路和转录因子的影响 分子结合验证:DARTS和SPR实验的米替福新浓度及CCR5蛋白固定化条件

摘要

血小板减少症仍然是一种具有挑战性的临床疾病,治疗选择有限。在这里,我们证明了米替福新在体外刺激巨核细胞(MK)分化。米替福新显著加速血小板恢复,增强血小板功能,并促进辐照小鼠的巨核细胞生成和分化。RNA测序揭示了CCR5、MAPK和JAK2/STAT3信号通路与米替福新介导的巨核细胞分化相关。分子对接、药物亲和反应靶点稳定性(DARTS)和表面等离子体共振(SPR)实验证实了米替福新与CCR5的直接结合。抑制CCR5破坏了米替福新对巨核细胞分化以及MAPK和JAK2/STAT3信号通路激活的作用,也破坏了关键转录因子GATA1、EGR1和TAL1的作用。同样,阻断MAPK或JAK2/STAT3信号通路阻碍了米替福新诱导的巨核细胞分化和转录因子激活。我们的发现将CCR5确立为血小板减少症的治疗靶点,并将米替福新确定为一种CCR5激动剂,通过MAPK和JAK2/STAT3信号促进巨核细胞分化和血小板生成。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
米替福新是否能促进巨核细胞分化和血小板生成,并用于治疗血小板减少症?其潜在机制是什么?
核心机制
米替福新直接结合CCR5,通过激活MAPK(MEK/ERK)和JAK2/STAT3信号通路,上调GATA1、EGR1和TAL1转录因子,促进巨核细胞分化和血小板生成。
主要证据
体外K562/HEL细胞分化实验显示米替福新促进巨核细胞分化;RIT小鼠模型中加速血小板恢复并增强功能;分子对接、DARTS和SPR实验证实米替福新直接结合CCR5;抑制剂实验证实CCR5、MAPK和JAK2/STAT3通路介导其作用。
研究意义
本研究确立了CCR5作为血小板减少症的治疗靶点,并表明米替福新作为CCR5激动剂可能成为TPO-RAs的替代或补充疗法,为开发新的治疗策略提供了机制基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外巨核细胞分化实验

评估米替福新对巨核细胞分化和成熟的直接影响。

使用K562和HEL细胞,不同浓度米替福新(10、20、40 μM)处理5天,观察细胞形态、多核化、β-tubulin重排、CD41/CD42b/CD61表达和DNA倍性变化。

2

体内RIT小鼠模型评估

评估米替福新对辐照诱导血小板减少症的治疗效果及安全性。

建立4 Gy X射线辐照的RIT小鼠模型,辐照后1天开始每日腹腔注射米替福新(10、20、40 mg/kg)或TPO(3000 U/kg)连续16天,检测血小板计数、MPV、血小板功能及器官毒性。

3

巨核细胞生成和分化检测

探究米替福新促进血小板恢复的机制,观察对骨髓和脾脏中巨核细胞生成和分化的影响。

在治疗第10天,收集骨髓和脾脏,通过H&E染色、CD41免疫组化、流式细胞术检测巨核祖细胞(c-Kit+CD41+)及分化标志(CD41+CD42d+、CD41+CD61+)和DNA倍性。

4

RNA测序及生物信息学分析

揭示米替福新促进巨核细胞分化的分子机制和信号通路。

K562细胞经米替福新(40 μM)处理3天后进行RNA测序,分析差异表达基因,并进行DO、GO、KEGG、Reactome富集分析和转录因子预测。

5

靶点验证实验

验证米替福新直接结合CCR5分子。

通过分子对接预测米替福新与CCR5结合,然后使用DARTS和SPR实验验证直接结合,并通过Western blot检测CCR5表达。

6

信号通路和转录因子检测

阐明米替福新激活的下游信号通路和转录因子。

Western blot检测MAPK(RAS/MEK/ERK)和JAK2/STAT3通路蛋白磷酸化水平及转录因子GATA1、TAL1、EGR1、c-Myb表达,并用抑制剂(maraviroc、SCH772984、ruxolitinib)验证其功能。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
米替福新APExBIOB1371
佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯Selleck--
马拉维罗----
SCH772984----
鲁索替尼----
RPMI-1640培养基Procell--
胎牛血清----
青霉素/链霉素Merck Millipore--
K562细胞系American Type Culture CollectionCRL-3344
HEL细胞系American Type Culture CollectionTIB-180
昆明小鼠Da Shuo BiotechnologyN/A
CCK-8试剂盒DojindoCK04
吉姆萨染色液BeyotimeC0133
TRITC标记的鬼笔环肽UElandy--
JC-1线粒体膜电位检测试剂盒BeyotimeC2006
Mito-Tracker Green探针BeyotimeC1048
FITC标记的抗人CD41抗体ElabscienceE-AB-F1088C
PE标记的抗人CD61抗体ElabscienceE-AB-F1166D
PE标记的CD42b抗体Thermo Fisher Scientific--
CD117(c-Kit)单克隆抗体Thermo Fisher Scientific12-1171-83
CD42d单克隆抗体Thermo Fisher Scientific14-0421-82
CD61(整合素β3)单克隆抗体Thermo Fisher Scientific12-0619-42
FITC标记的抗小鼠CD41抗体ElabscienceE-AB-F1183C
PE标记的抗小鼠CD62P抗体BioLegend148306
CCR5抗体AbmartTA6339
Ras(E8N8L)XP®兔单抗Cell Signaling67648S
磷酸化MEK1/2(Ser217/221)(41G9)兔单抗Cell Signaling9154T
MEK1/2(L38C12)小鼠单抗Cell Signaling4694S
磷酸化ERK1/2(Thr202/Tyr204)多克隆抗体Proteintech28733-1-AP
ERK1/2单克隆抗体Proteintech66192-1-Ig
磷酸化STAT3(Ser727)多克隆抗体Proteintech28945-1-AP
STAT3多克隆抗体Proteintech10253-2-AP
MYB/c-Myb多克隆抗体Proteintech17800-1-AP
TAL1抗体Cell Signaling12831S
磷酸化JAK2(Y1007 + Y1008)抗体Abmart56570
JAK2抗体AbmartTA6022
Egr1抗体AbmartT57177M
抗GAPDH抗体Abcamab8245
抗GATA1抗体Abcamab308028
β-tubulin抗体Abcamab6046
碘化丙啶Beyotime--
生物素化人CCR5蛋白KACTUSCR5-HM4N191B
CM5传感器芯片----
ECL化学发光试剂Thermo Fisher Scientific--
全自动生化分析仪(日立7600)Hitachi7600
Transonic TS420血流计Transonic SystemsTS420
比浊法血小板聚集检测仪Helena Laboratories--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
体外细胞分化实验
细胞系(K562/HEL)来源、培养条件(RPMI-1640+10%FBS+1%P/S)、米替福新浓度(10/20/40 μM)和处理时间(5天)、阳性对照PMA浓度(0.8 nM)、细胞密度和接种数量
阅读提示:STAR★Methods中的Cell culture和Method details中的Morphological analysis等小节
RIT小鼠模型
小鼠品系、周龄和性别(4周龄KM小鼠,雌雄各半)、辐照剂量(4 Gy X-ray)、给药方案(米替福新10/20/40 mg/kg,TPO 3000 U/kg,腹腔注射,每日一次,连续16天)、血小板计数检测时间点(day 0-16)
阅读提示:STAR★Methods中的Animals和RIT mouse model部分
靶点结合验证
DARTS实验中米替福新浓度(100/200/400 μM)和pronase E稀释比例(1:400、1:800、1:1600)及孵育条件;SPR实验中CCR5蛋白固定化水平(3700 RU)、米替福新浓度梯度(0.78-12.5 μM)、结合和解离时间(120s/200s)
阅读提示:STAR★Methods中的DARTS assay和SPR assay部分
信号通路抑制实验
抑制剂浓度和处理时间:maraviroc(1 μM)、SCH772984(1 μM)、ruxolitinib(0.5 μM),与米替福新(40 μM)共处理5天
阅读提示:STAR★Methods中的Measurement of MK differentiation and ploidy in vitro部分及Figure 8和9图注