负载磁性牙髓干细胞胞内囊泡的银耳多糖微针用于雄激素性脱发

Tremella polysaccharide microneedles loaded with magnetic dental pulp stem cell intracellular vesicles used for androgenic alopecia.

作者信息Yonghao Liu, Heng Zhou, Pengcheng Pang, Ye Liu, Jieying Situ, Junnan Wang, Yan He, Qingsong Ye
PMID40165226
发布时间2025-03-31
DOI10.1186/s13287-025-04219-3

实验完整度

高

包含体外细胞实验(血管生成、巨噬细胞极化、细胞保护)、体内动物模型(AGA小鼠)及功能验证和机制验证。

主要模型

人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 人毛乳头细胞(HHDPCs) RAW264.7巨噬细胞 AGA小鼠模型(C57BL/6)

重点核对

Mag-IVs的制备:DPSC经50 µg/mL IONPs和100mT静态磁场处理2天,收集细胞裂解物中的IVs DPSC细胞囊泡的处理浓度:体外实验为1E+9颗粒/mL,微针注射动物模型为1E+5颗粒/g DHT损伤HHDPCs模型的建立:DHT浓度为5 nmol/mL,处理48小时 AGA小鼠模型建立:8周龄小鼠背部剃毛后每日涂抹0.2%睾酮溶液,持续14天 微针治疗时间点:剃毛后第3、8、12天给予微针贴片

摘要

背景:间充质干细胞外泌体是研究最广泛的细胞外囊泡(EVs)类型,为毛发再生提供了新途径。然而,其在外泌体产量方面的不足限制了它们在毛发再生领域的应用。研究发现,细胞内囊泡(IVs)的产量高于外泌体,且具有类似的生物学功能。因此,我们开发了HTMI-MN,一种以银耳多糖(TPS)和透明质酸(HA)为基质材料的微针,其负载磁性细胞内囊泡(Mag-IVs),协同治疗雄激素性脱发(AGA)并促进毛发生长。方法:在对Mag-IVs进行表征后,我们通过划痕实验、血管生成实验、Western Blot和ELISA实验评估了其对血管生成的影响。此外,我们通过CCK-8法、Western Blot和流式细胞术检测了其对人类毛乳头细胞(HHDPCs)的保护作用。最后,通过荧光染色、Western Blot和流式细胞术检测了银耳多糖对巨噬细胞M1/M2极化的影响。在体内通过DHT建立AGA模型,并通过微针注射进行治疗。结果:我们的研究发现,与其他囊泡相比,Mag-IVs具有更强的促进血管生成和保护HHDPCs免于凋亡的能力。此外,银耳多糖可以促进巨噬细胞向抗炎表型转化。总之,体内实验表明,HTMI-MN处理的小鼠毛发再生更快。结论:这些结果表明,Mag-IVs和银耳多糖可以协同改善毛发微环境,为AGA的治疗提供了广阔前景。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何通过一种新型微针系统有效递送磁性细胞内囊泡和银耳多糖,以改善雄激素性脱发(AGA)中的毛发微环境并促进毛发再生?
核心机制
Mag-IVs促进血管生成、保护HHDPCs免于凋亡,而银耳多糖促进巨噬细胞向抗炎表型(M2)极化,协同改善毛发微环境,从而促进毛发再生。
主要证据
体外实验表明Mag-IVs增强HUVECs的迁移和血管生成,保护HHDPCs免受DHT诱导的凋亡;银耳多糖抑制M1极化并促进M2极化。体内实验显示HTMI-MN治疗的小鼠毛发再生速度更快,皮肤中血管和增殖标志物表达增加。
研究意义
该研究提供了一种基于微针的细胞囊泡递送系统,为AGA治疗提供了一种潜在的新方法,具有临床转化前景。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

DPSC的提取与鉴定

获取并鉴定具有间充质干细胞特性的DPSC,用于后续实验。

从健康个体第三磨牙分离牙髓组织,经胶原酶和蛋白酶消化获得DPSC,通过流式细胞术检测表面标志物,并评估成骨、成脂、成软骨分化能力。

2

Mag-IVs的制备与表征

制备磁性细胞内囊泡(Mag-IVs)并验证其产量和内化效率。

用IONPs和静态磁场刺激DPSC,通过超速离心提取EVs、IVs和Mag-IVs,使用NTA和TEM表征,并通过Western blot检测囊泡标志物,用荧光标记评估HHDPCs的摄取。

3

Mag-IVs对HUVECs血管生成的影响

评估Mag-IVs是否促进HUVECs的迁移和血管生成能力。

通过划痕实验和Matrigel血管生成实验检测HUVECs的迁移和成管能力,并用Western blot和ELISA检测VEGF表达。

4

TPS对巨噬细胞极化的调节

探究TPS对LPS诱导的RAW264.7细胞M1/M2极化的影响。

用LPS和不同浓度TPS(0, 20, 50 µg/mL)处理RAW264.7细胞,通过免疫荧光、流式细胞术、Western blot和ELISA检测M1/M2标志物和炎症因子。

5

Mag-IVs对DHT损伤HHDPCs的保护作用

评估Mag-IVs是否保护HHDPCs免受DHT诱导的凋亡和氧化应激损伤。

用DHT建立HHDPCs损伤模型,加入不同囊泡处理,通过CCK-8、结晶紫染色、ROS荧光检测和流式细胞术评估细胞活力和凋亡,Western blot检测凋亡相关蛋白。

6

微针制备与表征

制备可分离的微针并验证其机械性能和缓释能力。

使用PDMS模具制备HA-MN和HT-MN,添加不同囊泡制备HTE-MN、HTI-MN、HTMI-MN,通过SEM、荧光显微镜观察形态,测试机械强度,评估溶解和释放特性。

7

HTMI-MN对小鼠AGA模型的治疗效果

验证HTMI-MN在体内对AGA的治疗效果。

建立AGA小鼠模型,分组治疗,观察毛发再生,并通过H&E染色、免疫组化、免疫荧光和Western blot评估毛囊数量、血管生成、增殖和抗炎效果。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-MEM培养基Thermo Fisher Technologies--
DMEM培养基Thermo Fisher Technologies--
胎牛血清Thermo Fisher Technologies--
磷酸盐缓冲液Thermo Fisher Technologies--
胰蛋白酶-EDTAGibco--
氧化铁纳米颗粒----
睾酮Solarbio Science & Technology--
二氢睾酮----
脂多糖----
CCK-8试剂盒Biotay Biotechnology--
结晶紫Biotay Biotechnology--
钙黄绿素AMBiotay Biotechnology--
二氢乙啶Biotay Biotechnology--
PKH67绿色细胞膜染色试剂盒Solarbio Science & Technology--
溶酶体示踪剂----
Hoechst 33342----
DAPI----
罗丹明BSolarbio Science & Technology--
FITC标记抗人CD44抗体BD Pharmingen--
FITC标记抗人CD45抗体BD Pharmingen--
FITC标记抗人CD73抗体BD Pharmingen--
PE-Cy7标记大鼠抗小鼠CD86抗体BD Pharmingen560582
Alexa Fluor 647标记大鼠抗小鼠CD206抗体BD Pharmingen565250
抗CD206抗体Proteintech60143-1-Ig
抗SOX9抗体Proteintech67439-1-Ig
抗iNOS抗体Proteintech18985-1-AP
抗TSG101抗体Proteintech67381-1-Ig
抗HSP70抗体Proteintech66183-1-Ig
抗ALIX抗体Proteintech67715-1-Ig
抗CD63抗体Proteintech67605-1-Ig
抗Bcl-2抗体Proteintech68103-1-Ig
抗Bax抗体Proteintech60267-1-Ig
抗cleaved-caspase-3抗体abcamab2302
抗cleaved-caspase-9抗体CST9505
抗VEGF-A抗体abcamab46154
抗IL-1β抗体Proteintech66737-1-Ig
抗Arg-1抗体abcamab239731
抗IL-10抗体CST12163
抗CD86抗体Proteintech13395-1-AP
抗β-肌动蛋白抗体ServicebioGB15001
GAPDH抗体ServicebioGB15002-100
RIPA裂解液MedChemExpress--
BCA蛋白检测试剂盒Biotay Biotechnology--
SDS-PAGE凝胶Epizyme Biotech--
PVDF膜Thermo Fisher Technologies--
小鼠TNF-α ELISA试剂盒Elabscience--
小鼠IL-10 ELISA试剂盒Elabscience--
人VEGF-A ELISA试剂盒Elabscience--
透明质酸Aladdin--
银耳多糖----
聚二甲基硅氧烷微针模具Bentengshengwu--
抗细胞角蛋白19抗体abcamab133496
抗Ki67抗体abcamab279653
抗SOX9抗体abcamab185966
抗CD31抗体proteintech11265-1-AP
米诺地尔Solarbio Science & Technology--
内皮细胞培养基Sigma-Aldrich--
I型胶原酶Sigma-Aldrich--
中性蛋白酶Sigma-Aldrich--
hMSC成骨分化培养基Cyagen Biosciences--
hMSC成脂分化培养基Cyagen Biosciences--
hMSC成软骨分化培养基Cyagen Biosciences--
基质胶Corning--
细胞培养板Corning--
茜素红SBiotay Biotechnology--
油红OBiotay Biotechnology--
甲苯胺蓝Biotay Biotechnology--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞提取与培养
DPSC来源、分离方法、培养条件(α-MEM、10% FBS、37°C、5% CO2)、传代次数(第3至5代)
阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Extraction and identification of mesenchymal stem cells’
Mag-IVs制备
IONPs浓度(50 µg/mL)、静态磁场强度(100mT)、处理时间(2天)、囊泡提取方法(超速离心)
阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Preparation and quantitative analysis of EVs, IVs and Mag-IVs’
体外细胞实验浓度
DPSC细胞囊泡在体外实验中的浓度(1E+9颗粒/mL)
阅读提示:见‘Result’中的‘Acquisition, identification and uptake of Mag-IVs’
DHT损伤模型
DHT浓度(5 nmol/mL)、处理时间(48小时)
阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Synergistic protective effect of endosomes on DHT-damaged HHDPCs’和‘Result’中的‘DPSC cell vesicles’ synergistic protective action on HHDPCs with DHT damage’
AGA动物模型
小鼠品系(KM mice)、年龄(7周龄)、诱导药物(0.2%睾酮溶液)及持续时间(14天)
阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Surgery and treatment’
微针制备与给药
HA浓度(500 mg/mL)、TPS浓度(150 mg/mL)、囊泡浓度(1E+5颗粒/mL)、治疗时间点(第3、8、12天)
阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Preparation and characterization of MN’和‘Surgery and treatment’
统计分析
所有实验重复三次,数据以均值±标准差表示,采用单因素方差分析
阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Statistic analysis’