DPSC的提取与鉴定
获取并鉴定具有间充质干细胞特性的DPSC,用于后续实验。
从健康个体第三磨牙分离牙髓组织,经胶原酶和蛋白酶消化获得DPSC,通过流式细胞术检测表面标志物,并评估成骨、成脂、成软骨分化能力。
Tremella polysaccharide microneedles loaded with magnetic dental pulp stem cell intracellular vesicles used for androgenic alopecia.
包含体外细胞实验(血管生成、巨噬细胞极化、细胞保护)、体内动物模型(AGA小鼠)及功能验证和机制验证。
人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 人毛乳头细胞(HHDPCs) RAW264.7巨噬细胞 AGA小鼠模型(C57BL/6)
Mag-IVs的制备:DPSC经50 µg/mL IONPs和100mT静态磁场处理2天,收集细胞裂解物中的IVs DPSC细胞囊泡的处理浓度:体外实验为1E+9颗粒/mL,微针注射动物模型为1E+5颗粒/g DHT损伤HHDPCs模型的建立:DHT浓度为5 nmol/mL,处理48小时 AGA小鼠模型建立:8周龄小鼠背部剃毛后每日涂抹0.2%睾酮溶液,持续14天 微针治疗时间点:剃毛后第3、8、12天给予微针贴片
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并鉴定具有间充质干细胞特性的DPSC,用于后续实验。
从健康个体第三磨牙分离牙髓组织,经胶原酶和蛋白酶消化获得DPSC,通过流式细胞术检测表面标志物,并评估成骨、成脂、成软骨分化能力。
制备磁性细胞内囊泡(Mag-IVs)并验证其产量和内化效率。
用IONPs和静态磁场刺激DPSC,通过超速离心提取EVs、IVs和Mag-IVs,使用NTA和TEM表征,并通过Western blot检测囊泡标志物,用荧光标记评估HHDPCs的摄取。
评估Mag-IVs是否促进HUVECs的迁移和血管生成能力。
通过划痕实验和Matrigel血管生成实验检测HUVECs的迁移和成管能力,并用Western blot和ELISA检测VEGF表达。
探究TPS对LPS诱导的RAW264.7细胞M1/M2极化的影响。
用LPS和不同浓度TPS(0, 20, 50 µg/mL)处理RAW264.7细胞,通过免疫荧光、流式细胞术、Western blot和ELISA检测M1/M2标志物和炎症因子。
评估Mag-IVs是否保护HHDPCs免受DHT诱导的凋亡和氧化应激损伤。
用DHT建立HHDPCs损伤模型,加入不同囊泡处理,通过CCK-8、结晶紫染色、ROS荧光检测和流式细胞术评估细胞活力和凋亡,Western blot检测凋亡相关蛋白。
制备可分离的微针并验证其机械性能和缓释能力。
使用PDMS模具制备HA-MN和HT-MN,添加不同囊泡制备HTE-MN、HTI-MN、HTMI-MN,通过SEM、荧光显微镜观察形态,测试机械强度,评估溶解和释放特性。
验证HTMI-MN在体内对AGA的治疗效果。
建立AGA小鼠模型,分组治疗,观察毛发再生,并通过H&E染色、免疫组化、免疫荧光和Western blot评估毛囊数量、血管生成、增殖和抗炎效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-MEM培养基 | Thermo Fisher Technologies | -- |
| DMEM培养基 | Thermo Fisher Technologies | -- | |
| 胎牛血清 | Thermo Fisher Technologies | -- | |
| 磷酸盐缓冲液 | Thermo Fisher Technologies | -- | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Gibco | -- | |
| 细胞处理 | 氧化铁纳米颗粒 | -- | -- |
| 睾酮 | Solarbio Science & Technology | -- | |
| 二氢睾酮 | -- | -- | |
| 脂多糖 | -- | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Biotay Biotechnology | -- |
| 细胞染色 | 结晶紫 | Biotay Biotechnology | -- |
| 钙黄绿素AM | Biotay Biotechnology | -- | |
| 二氢乙啶 | Biotay Biotechnology | -- | |
| PKH67绿色细胞膜染色试剂盒 | Solarbio Science & Technology | -- | |
| 溶酶体示踪剂 | -- | -- | |
| Hoechst 33342 | -- | -- | |
| DAPI | -- | -- | |
| 罗丹明B | Solarbio Science & Technology | -- | |
| 免疫荧光 | FITC标记抗人CD44抗体 | BD Pharmingen | -- |
| FITC标记抗人CD45抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| FITC标记抗人CD73抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 流式细胞术 | PE-Cy7标记大鼠抗小鼠CD86抗体 | BD Pharmingen | 560582 |
| Alexa Fluor 647标记大鼠抗小鼠CD206抗体 | BD Pharmingen | 565250 | |
| 蛋白质印迹 | 抗CD206抗体 | Proteintech | 60143-1-Ig |
| 抗SOX9抗体 | Proteintech | 67439-1-Ig | |
| 抗iNOS抗体 | Proteintech | 18985-1-AP | |
| 抗TSG101抗体 | Proteintech | 67381-1-Ig | |
| 抗HSP70抗体 | Proteintech | 66183-1-Ig | |
| 抗ALIX抗体 | Proteintech | 67715-1-Ig | |
| 抗CD63抗体 | Proteintech | 67605-1-Ig | |
| 抗Bcl-2抗体 | Proteintech | 68103-1-Ig | |
| 抗Bax抗体 | Proteintech | 60267-1-Ig | |
| 抗cleaved-caspase-3抗体 | abcam | ab2302 | |
| 抗cleaved-caspase-9抗体 | CST | 9505 | |
| 抗VEGF-A抗体 | abcam | ab46154 | |
| 抗IL-1β抗体 | Proteintech | 66737-1-Ig | |
| 抗Arg-1抗体 | abcam | ab239731 | |
| 抗IL-10抗体 | CST | 12163 | |
| 抗CD86抗体 | Proteintech | 13395-1-AP | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Servicebio | GB15001 | |
| GAPDH抗体 | Servicebio | GB15002-100 | |
| RIPA裂解液 | MedChemExpress | -- | |
| BCA蛋白检测试剂盒 | Biotay Biotechnology | -- | |
| SDS-PAGE凝胶 | Epizyme Biotech | -- | |
| PVDF膜 | Thermo Fisher Technologies | -- | |
| ELISA | 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | Elabscience | -- |
| 小鼠IL-10 ELISA试剂盒 | Elabscience | -- | |
| 人VEGF-A ELISA试剂盒 | Elabscience | -- | |
| 微针制备 | 透明质酸 | Aladdin | -- |
| 银耳多糖 | -- | -- | |
| 聚二甲基硅氧烷微针模具 | Bentengshengwu | -- | |
| 组织学染色 | 抗细胞角蛋白19抗体 | abcam | ab133496 |
| 免疫荧光 | 抗Ki67抗体 | abcam | ab279653 |
| 抗SOX9抗体 | abcam | ab185966 | |
| 抗CD31抗体 | proteintech | 11265-1-AP | |
| 动物实验 | 米诺地尔 | Solarbio Science & Technology | -- |
| 细胞培养 | 内皮细胞培养基 | Sigma-Aldrich | -- |
| I型胶原酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 中性蛋白酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| hMSC成骨分化培养基 | Cyagen Biosciences | -- | |
| hMSC成脂分化培养基 | Cyagen Biosciences | -- | |
| hMSC成软骨分化培养基 | Cyagen Biosciences | -- | |
| 基质胶 | Corning | -- | |
| 细胞培养板 | Corning | -- | |
| 茜素红S | Biotay Biotechnology | -- | |
| 油红O | Biotay Biotechnology | -- | |
| 甲苯胺蓝 | Biotay Biotechnology | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞提取与培养 | DPSC来源、分离方法、培养条件(α-MEM、10% FBS、37°C、5% CO2)、传代次数(第3至5代) 阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Extraction and identification of mesenchymal stem cells’ |
| Mag-IVs制备 | IONPs浓度(50 µg/mL)、静态磁场强度(100mT)、处理时间(2天)、囊泡提取方法(超速离心) 阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Preparation and quantitative analysis of EVs, IVs and Mag-IVs’ |
| 体外细胞实验浓度 | DPSC细胞囊泡在体外实验中的浓度(1E+9颗粒/mL) 阅读提示:见‘Result’中的‘Acquisition, identification and uptake of Mag-IVs’ |
| DHT损伤模型 | DHT浓度(5 nmol/mL)、处理时间(48小时) 阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Synergistic protective effect of endosomes on DHT-damaged HHDPCs’和‘Result’中的‘DPSC cell vesicles’ synergistic protective action on HHDPCs with DHT damage’ |
| AGA动物模型 | 小鼠品系(KM mice)、年龄(7周龄)、诱导药物(0.2%睾酮溶液)及持续时间(14天) 阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Surgery and treatment’ |
| 微针制备与给药 | HA浓度(500 mg/mL)、TPS浓度(150 mg/mL)、囊泡浓度(1E+5颗粒/mL)、治疗时间点(第3、8、12天) 阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Preparation and characterization of MN’和‘Surgery and treatment’ |
| 统计分析 | 所有实验重复三次,数据以均值±标准差表示,采用单因素方差分析 阅读提示:见‘Materials and methods’中的‘Statistic analysis’ |