建立FA-AKI模型并评估肾损伤
评估叶酸诱导的急性肾损伤模型是否成功建立,并观察血小板活性变化。
对小鼠腹腔注射250 mg/kg叶酸(对照组注射等体积0.3 mol/L NaHCO3),24小时后收集血和肾组织;通过HE染色、血清肌酐和尿素氮水平、肾重/体重比评估肾损伤。
Platelet glycoprotein VI promotes folic acid-induced acute kidney injury through interaction with tubular epithelial cell-derived galectin-3.
包含体内FA-AKI模型(GPVI敲除、TD139处理)、体外血小板功能、细胞共培养、流式、Western blot、免疫荧光等多层级实验,并验证功能与机制。
小鼠FA-AKI模型(C57BL/6) 小鼠血小板 Raw264.7巨噬细胞系 TCMK-1肾小管上皮细胞系
FA-AKI诱导:腹腔注射250 mg/kg叶酸,24小时 GPVI敲除小鼠(Gp6−/−)和同窝对照 TD139处理:15 mg/kg,腹腔注射,叶酸前12小时 血小板与Raw264.7共培养:1×10^8血小板与1×10^6细胞,20 µg/L galectin-3刺激24小时 MPA检测:流式检测Ly6C+CD41+细胞群
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估叶酸诱导的急性肾损伤模型是否成功建立,并观察血小板活性变化。
对小鼠腹腔注射250 mg/kg叶酸(对照组注射等体积0.3 mol/L NaHCO3),24小时后收集血和肾组织;通过HE染色、血清肌酐和尿素氮水平、肾重/体重比评估肾损伤。
验证FA-AKI中血小板是否活化,以及GPVI及其下游信号是否上调。
用流式细胞术检测血小板表面P-selectin(CD62P)和GPVI表达;用Western blot检测血小板GPVI、Syk、PLCγ2及其磷酸化水平。
评估遗传性GPVI缺失是否减轻叶酸诱导的肾损伤。
使用Gp6−/−小鼠和同窝对照,通过HE、PAS、Sirius Red染色,血清CRE/BUN,Western blot和qPCR检测NGAL、BAX、Bcl2,TUNEL凋亡检测。
验证损伤肾小管上皮细胞释放的galectin-3是否通过GPVI激活血小板。
通过IHC和IF检测肾组织galectin-3表达;体外通过反复冻融TCMK-1细胞获得损伤细胞上清(DTEC),刺激血小板;检测CD62P表达和Syk/PLCγ2磷酸化,并使用乳糖和JAQ1/PP2抑制验证GPVI依赖。
验证galectin-3与GPVI相互作用是否促进循环中单核细胞-血小板聚集。
用流式检测FA-AKI小鼠血液中Ly6C+CD41+细胞群;在体外用重组galectin-3刺激全血(Gp6+/+或Gp6−/−);并使用JAQ1 F(ab')2阻断GPVI。
验证血小板与单核细胞相互作用是否促进M1型极化并影响巨噬细胞功能。
将Raw264.7与Gp6+/+或Gp6−/−血小板在galectin-3存在与否下共培养,然后去除血小板,用流式检测CD86和CD206表达,进行迁移实验(Transwell)和吞噬实验(FITC-dextran),并使用条件培养基进行内皮细胞划痕实验。
验证由galectin-3激活血小板形成的MPA是否诱导肾小管上皮细胞凋亡和DNA损伤。
制备条件培养基(CM):Raw264.7与血小板(有/无galectin-3)共培养后收集上清,用于处理TCMK-1细胞;用流式细胞术和TUNEL检测凋亡,Western blot检测BAX/Bcl2,免疫荧光和Western blot检测γ-H2AX。
验证阻断galectin-3-GPVI相互作用是否减轻肾损伤并改善生存。
在Gp6−/−和Gp6+/+小鼠中,于叶酸注射前12小时腹腔注射TD139(15 mg/kg),监测8天生存率;检测肾功能指标、肾组织染色(PAS、Sirius Red)、免疫荧光(CD41、CD68)和炎症因子mRNA。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 肾功能评估 | 肌酐检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | C011-2-1 |
| 血尿素氮检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | C013-1-1 | |
| 组织染色 | PAS染色试剂盒 | Servicebio | G1008 |
| 天狼星红染色试剂盒 | Servicebio | G1018 | |
| HE染色试剂盒 | Servicebio | G1005 | |
| 血小板制备 | 前列腺素E1 | Sigma | P5515 |
| 血小板功能 | Chrono-lume试剂 | -- | -- |
| 纤维蛋白原 | -- | -- | |
| 免疫组织化学 | 抗半乳糖凝集素-3抗体 | Abcam | ab76245 |
| 免疫荧光 | 抗细胞角蛋白18抗体 | Abcam | ab181597 |
| 抗层粘连蛋白抗体 | Boster | BA1761-1 | |
| 抗γ-H2AX抗体 | Proteintech | 29380-1-AP | |
| 抗CD41抗体 | Proteintech | 18308-1-AP | |
| 抗CD68抗体 | Cell Signaling Technology | 97778 | |
| 抗F4/80抗体 | Servicebio | G113373 | |
| 抗CD34抗体 | Servicebio | GB15013 | |
| 抗MPO抗体 | Servicebio | GB11224 | |
| 抗NPHS1抗体 | Servicebio | GB115714 | |
| 抗CD31抗体 | Servicebio | GB120015 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Servicebio | G2002 |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| 抗GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 5174 | |
| 抗PLCγ2抗体 | Cell Signaling Technology | 3872 | |
| 抗磷酸化PLCγ2抗体 | Cell Signaling Technology | 3871 | |
| 抗Syk抗体 | Cell Signaling Technology | 2712 | |
| 抗磷酸化Syk抗体 | Cell Signaling Technology | 2710 | |
| 抗GPVI抗体(JAQ1) | emfret | M011-0 | |
| 抗BAX抗体 | HUABIO | SZ3-07 | |
| 抗BCL2抗体 | HUABIO | JF104-8 | |
| 抗NGAL抗体 | Proteintech | 26991-1-AP | |
| ECL化学发光试剂 | Biosharp | BL520A | |
| RNA提取和qPCR | Trizol试剂 | Vazyme | -- |
| 细胞培养 | RAW264.7细胞系 | Pricella | CL-0190 |
| TCMK-1细胞系 | Servicebio | STCC20015P-1 | |
| bEnd.3细胞系 | QuiCell | B145 | |
| 细胞处理 | 乳糖 | MCE | HY-B2123 |
| 流式细胞术 | FITC标记抗小鼠CD62P抗体 | BD Biosciences | 555523 |
| FITC标记JAQ1抗体 | emfret | M011-1 | |
| PE标记抗小鼠CD41抗体 | Biolegend | 133906 | |
| PE/Cyanine7标记抗小鼠Ly-6C抗体 | Biolegend | 128017 | |
| PE/Cyanine7标记抗小鼠CD86抗体 | Biolegend | 105014 | |
| PE标记抗小鼠CD206抗体 | Biolegend | 141706 | |
| 吞噬实验 | FITC-葡聚糖 | Yeasen | 61220ES10 |
| Transwell迁移实验 | Transwell小室(8 µm孔径) | Corning | 3422 |
| 血小板功能 | 发光聚集仪(Model 700) | Chrono-Log | -- |
| 奥林巴斯光学荧光显微镜 | Olympus | -- | |
| 流式细胞术 | BD FACSAria™ III细胞分选仪 | BD | -- |
| qPCR | Step One Plus™实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| FA-AKI模型建立 | 叶酸剂量250 mg/kg,腹腔注射;对照组0.3 mol/L NaHCO3;处理时间24小时;小鼠品系、性别和年龄(C57BL/6,雄性,6-8周龄) 阅读提示:参见Methods 'Mouse models' |
| 血小板制备与功能检测 | 血小板浓度(300×10^9/L)、激动剂(胶原和凝血酶)浓度、ATP释放检测条件、血块回缩实验(fibrinogen 20 mg/mL,凝血酶2 U/mL)、血小板铺展实验(fibrinogen 50 µg/mL) 阅读提示:参见Methods 'Preparation of platelet' and 'Platelet functional studies' |
| GPVI敲除小鼠 | Gp6−/−小鼠来源(Cyagen)、同窝对照;验证敲除效率(Western blot,Fig S2A);血小板计数、出血时间等基础指标 阅读提示:参见Methods 'Mouse models' 和 Results 'GPVI knockout alleviates folic acid-induced AKI' 及补充图S2 |
| 体外损伤细胞上清制备与血小板激活 | TCMK-1反复冻融次数;DTEC上清与血小板比例;galectin-3浓度(20 µg/L);乳糖浓度(10 µM);血小板浓度(50×10^6/ml) 阅读提示:参见Methods 'Cell culture' 和 Results 'TECs derived galectin-3 induces platelet activation through GPVI pathway' 及图4I-J |
| MPA检测 | 全血采集方式(肝素化毛细管)、抗体(FITC-anti-CD62P,PE-anti-CD41,PE/Cy7-anti-Ly-6C等)、MPA定义(Ly6C+CD41+)、重组galectin-3刺激浓度未明确说明 阅读提示:参见Methods 'Flow cytometric analysis' 和 Results 'The interaction between GPVI and galectin-3 increases MPA in AKI' |
| 巨噬细胞极化与功能实验 | Raw264.7细胞数量与血小板比例(1×10^6细胞,1×10^8血小板)、galectin-3浓度(20 µg/L)、共培养时间(24小时)、流式检测CD86/CD206、FITC-dextran浓度(25 mg/mL母液,40 µL加至1 mL)、Transwell孔径(8 µm)、划痕实验ImageJ分析 阅读提示:参见Methods 'Platelets co-cultured with Raw264.7', 'Phagocytosis assay', 'Transwell migration and wound healing assay' 和 Results 'GPVI-galectin-3 interaction polarizes monocytes to M1 pro-inflammatory macrophages' |
| 体内TD139治疗 | TD139剂量(15 mg/kg)、给药时间(叶酸前12小时)、给药途径(腹腔注射)、生存期观察(8天)、样本量(每组20只) 阅读提示:参见Methods 'Mouse models' 和 Results 'Blocking galectin-3-GPVI interaction reduces platelet and macrophage infiltration and alleviates AKI' 及图8A-B |
| 组织学与免疫染色 | 组织固定(4%多聚甲醛)、切片厚度(5 μm)、染色试剂盒(PAS G1008, Sirius Red G1018, HE G1005)、免疫荧光抗体浓度(如galectin-3 1:100, CD41 1:100等) 阅读提示:参见Methods 'Periodic Acid-Schiff (PAS), haematoxylin&eosin (HE) staining and Sirius red staining' 和 'Immunofluorescence (IF) staining' |