验证BMSCs移植后凋亡及治疗作用
确认BMSCs移植是否改善后肢缺血以及其体内存活情况
建立小鼠后肢缺血模型,肌肉注射BMSCs,通过激光多普勒、组织学染色(H&E、Masson、CD31)评估治疗效果,并通过BLI和cleaved caspase-3染色检测BMSCs凋亡。
Apoptotic vesicles derived from bone marrow mesenchymal stem cells increase angiogenesis in a hind limb ischemia model via the NAMPT/SIRT1/FOXO1 axis.
包括体内后肢缺血模型、基质胶栓实验、体外HUVECs功能实验、蛋白质组学及机制验证(shRNA/siRNA敲低)。
小鼠后肢缺血模型(BALB/c小鼠) HUVECs BMSCs来源的ApoVs
BMSCs移植后凋亡,释放ApoVs ApoVs通过dynamin、clathrin、caveolin介导的内吞被HUVECs摄取 ApoVs转移NAMPT激活NAMPT/SIRT1/FOXO1轴 FOXO1去乙酰化后转位至细胞质 ApoVs促进HUVECs增殖、迁移和血管生成
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认BMSCs移植是否改善后肢缺血以及其体内存活情况
建立小鼠后肢缺血模型,肌肉注射BMSCs,通过激光多普勒、组织学染色(H&E、Masson、CD31)评估治疗效果,并通过BLI和cleaved caspase-3染色检测BMSCs凋亡。
从凋亡BMSCs中分离ApoVs并验证其特性
用STS诱导BMSCs凋亡,通过差速离心分离ApoVs,通过TEM、NTA和Western blot(cleaved caspase-3)进行表征。
验证ApoVs对后肢缺血的治疗作用及对血管生成的影响
通过肌肉注射ApoVs,使用激光多普勒、H&E、Masson、CD31染色评估血流恢复和组织修复;使用基质胶栓实验评估体内血管生成。
验证ApoVs是否促进HUVECs的增殖、迁移和血管生成
用不同浓度ApoVs处理HUVECs,通过CCK-8、EdU、划痕实验、Transwell、管形成实验、qPCR检测功能变化。
确定ApoVs如何被HUVECs摄取
用内吞抑制剂处理HUVECs,流式细胞术检测DiO标记的ApoVs摄取率,并评估温度效应。
鉴定ApoVs处理HUVECs后的分子变化并验证NAMPT/SIRT1/FOXO1轴
用TMT蛋白质组学分析差异表达蛋白;用Western blot、qPCR、NAD+/NADH检测、shRNA和siRNA敲低实验验证机制。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | 异氟烷 | -- | -- |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | Procell | CP-H166 |
| 胎牛血清 | Procell | 164210 | |
| 青霉素-链霉素 | NCM Biotech | C100C5 | |
| 内皮细胞培养基 | ScienCell | -- | |
| 内皮细胞生长补充剂 | ScienCell | -- | |
| ApoVs分离 | 星形孢菌素 | MCE | HY-15141 |
| 流式分析 | CD29-FITC抗体 | eBioscience | 11-0299-41 |
| CD44-PE抗体 | eBioscience | 12-0441-81 | |
| CD90-FITC抗体 | eBioscience | 11-0909-41 | |
| CD105-APC抗体 | eBioscience | 17-1057-41 | |
| CD45-PE抗体 | eBioscience | 12-0456-41 | |
| 细胞功能实验 | CCK-8试剂盒 | TargetMol | C0005 |
| 细胞凋亡检测 | Annexin V-PE/7-AAD凋亡检测试剂盒 | BD Biosciences | 559763 |
| ApoVs标记 | Dil染料 | Beyotime | C1036 |
| DiO染料 | Beyotime | C1038 | |
| 内吞抑制实验 | Dynasore抑制剂 | MCE | HY-15304 |
| 氯丙嗪 | MCE | HY-12708 | |
| Pitstop 2抑制剂 | MCE | HY-115604 | |
| 制霉菌素 | MCE | HY-17409 | |
| 乙基异丙基阿米洛利 | MCE | HY-101840 | |
| 甲基-β-环糊精 | MCE | HY-101461 | |
| 肝素 | MCE | HY-17567 | |
| 免疫荧光染色 | CD31抗体 | Abcam | ab76533 |
| Cy3标记二抗 | Beyotime | A0516 | |
| DAPI染色液 | Beyotime | C1002 | |
| 抗cleaved caspase 3抗体 | Abcam | ab32042 | |
| 组织学染色 | Masson三色染色 | Solarbio | -- |
| 定量PCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596026CN |
| SweScript All-in-One RT SuperMix (qPCR) | Servicebio | G3337-50 | |
| RealStar Fast SYBR qPCR Mix | GenStar | A301 | |
| NAD+/NADH检测 | NAD+/NADH检测试剂盒 | Beyotime | S0175 |
| 慢病毒感染 | 嘌呤霉素 | Beyotime | ST551 |
| siRNA转染 | Lipo8000转染试剂 | Beyotime | C0533 |
| 蛋白质提取 | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013B |
| 蛋白质定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0012 |
| 核质分离 | 核质蛋白提取试剂盒 | Beyotime | P0027 |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | -- |
| caspase 3抗体 | Abcam | ab32351 | |
| NAMPT抗体 | Proteintech | 11776-1-AP | |
| SIRT1抗体 | Proteintech | 13161-1-AP | |
| 乙酰化FOXO1 (Lys294)抗体 | Invitrogen | PA5-104560 | |
| FOXO1抗体 | Beyotime | AF1600 | |
| β-actin抗体 | Proteintech | 81115-1-RR | |
| Lamin B1抗体 | Proteintech | 12987-1-AP | |
| 生物发光成像 | D-荧光素 | Beyotime | -- |
| 基质胶栓实验 | 基质胶 | ABW | 082704 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、年龄、性别、麻醉方法、手术方式 阅读提示:Materials and methods: Animal models |
| BMSCs移植 | BMSCs数量、注射体积、注射部位、对照组 阅读提示:Materials and methods: Animal models |
| ApoVs分离 | STS浓度、处理时间、离心参数 阅读提示:Materials and methods: Isolation and characterization of ApoVs |
| ApoVs移植 | ApoVs剂量、注射体积、注射部位 阅读提示:Materials and methods: Animal models |
| 巨噬细胞清除 | clodronate脂质体剂量、给药方式、时间 阅读提示:Materials and methods: Animal models |
| HUVECs功能实验 | ApoVs浓度、处理时间、细胞种子密度 阅读提示:Materials and methods: Cell culture; Proliferation and apoptosis analysis; Wound healing assay; Transwell migration assay; Tube formation assay |
| 内吞机制 | 抑制剂浓度、预处理时间、ApoVs浓度 阅读提示:Materials and methods: ApoVs uptake by HUVECs in vitro |
| 机制验证 | shRNA靶序列、siRNA靶序列、转染试剂、敲低验证方法 阅读提示:Materials and methods: Generation of stable cell lines; siRNA-mediated knockdown |