骨髓间充质干细胞来源的凋亡小泡通过NAMPT/SIRT1/FOXO1轴促进后肢缺血模型中的血管生成

Apoptotic vesicles derived from bone marrow mesenchymal stem cells increase angiogenesis in a hind limb ischemia model via the NAMPT/SIRT1/FOXO1 axis.

作者信息Jinxing Chen, Zekun Shen, Bingyi Chen, Shuang Liu, Yifan Mei, Kai Li, Ziyang Peng, Chaoshuai Feng, Weiyi Wang, Shaoying Lu
PMID40025506
发布时间2025-03-01
DOI10.1186/s13287-025-04245-1

实验完整度

包括体内后肢缺血模型、基质胶栓实验、体外HUVECs功能实验、蛋白质组学及机制验证(shRNA/siRNA敲低)。

主要模型

小鼠后肢缺血模型(BALB/c小鼠) HUVECs BMSCs来源的ApoVs

重点核对

BMSCs移植后凋亡,释放ApoVs ApoVs通过dynamin、clathrin、caveolin介导的内吞被HUVECs摄取 ApoVs转移NAMPT激活NAMPT/SIRT1/FOXO1轴 FOXO1去乙酰化后转位至细胞质 ApoVs促进HUVECs增殖、迁移和血管生成

摘要

背景:慢性肢体威胁性缺血(CLTI)是外周动脉疾病(PAD)最严重的形式。间充质干细胞(MSC)移植有望成为CLTI的治疗方法;然而,严苛的局部环境对其有效性构成挑战。凋亡小泡(ApoVs)是细胞凋亡过程中产生的细胞外囊泡,能够携带来自亲代细胞的各种生物分子,包括蛋白质、RNA、DNA、脂质、离子和气体神经递质。ApoVs通过细胞间通讯在抗炎反应、抗肿瘤活性和组织再生中发挥重要作用,并已显示出作为药物载体的潜力。在本研究中,我们探讨了骨髓干细胞(BMSC)来源的ApoVs治疗CLTI的潜力。方法:在体内,我们通过激光多普勒、基质胶栓实验和组织学分析探讨了ApoVs对后肢缺血模型的治疗作用。在体外,我们分析了ApoVs对HUVECs增殖、迁移和血管生成的影响,并探讨了ApoVs的摄取过程。此外,使用蛋白质组学分析、蛋白质印迹、定量实时PCR、shRNA和siRNA来分析ApoVs诱导的HUVECs激活和下游信号通路。结果:BMSCs移植在后肢缺血模型中显示出改善作用,且BMSCs凋亡后这种效应仍然存在。随后,分离了BMSCs的ApoVs,并发现其在体内改善了小鼠后肢缺血。在体外,ApoVs可通过dynamin、网格蛋白和窖蛋白介导的内吞作用被HUVECs摄取,并促进其增殖、迁移和血管生成。机制上,ApoVs将NAMPT转移至HUVECs,从而激活NAMPT/SIRT1/FOXO1轴,影响FOXO1的转录活性,促进血管生成。结论:我们的结果表明,移植的BMSCs可通过凋亡过程中释放ApoVs来改善后肢缺血。这种效应的主要机制是通过NAMPT/SIRT1/FOXO1轴促进HUVECs的增殖、迁移和血管生成。本研究为BMSCs的治疗机制提供了不同见解,并为ApoVs移植提出了有前景的方向。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
移植的BMSCs在缺血环境下凋亡后,其治疗作用是否通过释放ApoVs介导,以及ApoVs促进血管生成的分子机制是什么?
核心机制
ApoVs通过转移NAMPT至HUVECs,激活NAMPT/SIRT1/FOXO1轴,SIRT1介导FOXO1去乙酰化,导致FOXO1从细胞核转位至细胞质,降低其转录活性,从而促进血管生成。
主要证据
体内后肢缺血模型和基质胶栓实验显示ApoVs促进血流恢复和血管生成;体外HUVECs实验显示ApoVs促进增殖、迁移和血管生成;蛋白质组学、Western blot和shRNA/siRNA敲低实验证实NAMPT/SIRT1/FOXO1轴的作用。
研究意义
本研究为BMSCs治疗CLTI的机制提供了新见解,并为基于ApoVs的治疗提供了有前景的方向。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证BMSCs移植后凋亡及治疗作用

确认BMSCs移植是否改善后肢缺血以及其体内存活情况

建立小鼠后肢缺血模型,肌肉注射BMSCs,通过激光多普勒、组织学染色(H&E、Masson、CD31)评估治疗效果,并通过BLI和cleaved caspase-3染色检测BMSCs凋亡。

2

分离和表征ApoVs

从凋亡BMSCs中分离ApoVs并验证其特性

用STS诱导BMSCs凋亡,通过差速离心分离ApoVs,通过TEM、NTA和Western blot(cleaved caspase-3)进行表征。

3

评估ApoVs在体内的治疗效果

验证ApoVs对后肢缺血的治疗作用及对血管生成的影响

通过肌肉注射ApoVs,使用激光多普勒、H&E、Masson、CD31染色评估血流恢复和组织修复;使用基质胶栓实验评估体内血管生成。

4

研究ApoVs对HUVECs功能的影响

验证ApoVs是否促进HUVECs的增殖、迁移和血管生成

用不同浓度ApoVs处理HUVECs,通过CCK-8、EdU、划痕实验、Transwell、管形成实验、qPCR检测功能变化。

5

阐明ApoVs的内吞机制

确定ApoVs如何被HUVECs摄取

用内吞抑制剂处理HUVECs,流式细胞术检测DiO标记的ApoVs摄取率,并评估温度效应。

6

蛋白质组学分析及机制验证

鉴定ApoVs处理HUVECs后的分子变化并验证NAMPT/SIRT1/FOXO1轴

用TMT蛋白质组学分析差异表达蛋白;用Western blot、qPCR、NAD+/NADH检测、shRNA和siRNA敲低实验验证机制。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
异氟烷----
DMEM/F12培养基ProcellCP-H166
胎牛血清Procell164210
青霉素-链霉素NCM BiotechC100C5
内皮细胞培养基ScienCell--
内皮细胞生长补充剂ScienCell--
星形孢菌素MCEHY-15141
CD29-FITC抗体eBioscience11-0299-41
CD44-PE抗体eBioscience12-0441-81
CD90-FITC抗体eBioscience11-0909-41
CD105-APC抗体eBioscience17-1057-41
CD45-PE抗体eBioscience12-0456-41
CCK-8试剂盒TargetMolC0005
Annexin V-PE/7-AAD凋亡检测试剂盒BD Biosciences559763
Dil染料BeyotimeC1036
DiO染料BeyotimeC1038
Dynasore抑制剂MCEHY-15304
氯丙嗪MCEHY-12708
Pitstop 2抑制剂MCEHY-115604
制霉菌素MCEHY-17409
乙基异丙基阿米洛利MCEHY-101840
甲基-β-环糊精MCEHY-101461
肝素MCEHY-17567
CD31抗体Abcamab76533
Cy3标记二抗BeyotimeA0516
DAPI染色液BeyotimeC1002
抗cleaved caspase 3抗体Abcamab32042
Masson三色染色Solarbio--
TRIzol试剂Invitrogen15596026CN
SweScript All-in-One RT SuperMix (qPCR)ServicebioG3337-50
RealStar Fast SYBR qPCR MixGenStarA301
NAD+/NADH检测试剂盒BeyotimeS0175
嘌呤霉素BeyotimeST551
Lipo8000转染试剂BeyotimeC0533
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0012
核质蛋白提取试剂盒BeyotimeP0027
PVDF膜Millipore--
caspase 3抗体Abcamab32351
NAMPT抗体Proteintech11776-1-AP
SIRT1抗体Proteintech13161-1-AP
乙酰化FOXO1 (Lys294)抗体InvitrogenPA5-104560
FOXO1抗体BeyotimeAF1600
β-actin抗体Proteintech81115-1-RR
Lamin B1抗体Proteintech12987-1-AP
D-荧光素Beyotime--
基质胶ABW082704

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
小鼠品系、年龄、性别、麻醉方法、手术方式
阅读提示:Materials and methods: Animal models
BMSCs移植
BMSCs数量、注射体积、注射部位、对照组
阅读提示:Materials and methods: Animal models
ApoVs分离
STS浓度、处理时间、离心参数
阅读提示:Materials and methods: Isolation and characterization of ApoVs
ApoVs移植
ApoVs剂量、注射体积、注射部位
阅读提示:Materials and methods: Animal models
巨噬细胞清除
clodronate脂质体剂量、给药方式、时间
阅读提示:Materials and methods: Animal models
HUVECs功能实验
ApoVs浓度、处理时间、细胞种子密度
阅读提示:Materials and methods: Cell culture; Proliferation and apoptosis analysis; Wound healing assay; Transwell migration assay; Tube formation assay
内吞机制
抑制剂浓度、预处理时间、ApoVs浓度
阅读提示:Materials and methods: ApoVs uptake by HUVECs in vitro
机制验证
shRNA靶序列、siRNA靶序列、转染试剂、敲低验证方法
阅读提示:Materials and methods: Generation of stable cell lines; siRNA-mediated knockdown