肿瘤细胞来源的EMP1对于三阴性乳腺癌肿瘤微环境中癌症相关成纤维细胞浸润至关重要

Tumor cell-derived EMP1 is essential for cancer-associated fibroblast infiltration in tumor microenvironment of triple-negative breast cancer.

作者信息Qi Wang, Dandan Li, Haixiu Ma, Zengyan Li, Juan Wu, Jinwan Qiao, Jun Liu, Jing Zhao, Ronghua Ma, Lin Tian, Lei Zhang, Jianye Yang, Jianing Wang, Shanshan Qin, Zhanhai Su
PMID40016223
发布时间2025-02-27
DOI10.1038/s41419-025-07464-9

实验完整度

包含体外细胞功能实验、体内异种移植模型、机制研究(RNA-seq、Western blot)、患者样本验证等至少两个独立证据层级。

主要模型

MDA-MB-231细胞系 MDA-MB-468细胞系 MDA-MB-453细胞系 BALB/c裸鼠异种移植模型 TNBC患者组织样本

重点核对

TNBC细胞系中EMP1的表达水平(MDA-MB-231和MDA-MB-468高表达,MDA-MB-453低表达) EMP1敲低效率(shRNA subclone #7和#8) 细胞共培养系统(transwell孔径0.8 μm) 体内异种移植模型(5×10^6 TNBC细胞与1×10^6 CAF混合比例5:1,BALB/c裸鼠) IL6和TNFα浓度(重组蛋白10 ng/mL)

摘要

上皮膜蛋白1(EMP1)在肿瘤微环境(TME)重塑中的作用尚未阐明。此外,EMP1在三阴性乳腺癌(TNBC)中的生物学功能在很大程度上尚不清楚。在本研究中,我们检查了乳腺癌TME中细胞类型的浸润情况,发现EMP1表达与基质和微环境评分呈正相关。浸润分析和连续切片的免疫组织化学(IHC)染色证实了EMP1在癌症相关成纤维细胞(CAF)浸润中的关键作用。进行细胞共培养实验、异种移植肿瘤实验、功能丧失、功能获得、RNA测序研究和拯救实验,以确认EMP1在体外和体内CAF浸润中的作用。这些发现表明,TNBC细胞中EMP1的耗竭在体内和体外均显著抑制CAF浸润。机制上,EMP1敲低通过NF-κB信号通路诱导TNBC分泌IL6显著减少,从而阻碍CAF增殖并随后抑制TNBC进展和转移。这些累积结果表明,EMP1通过介导TNBC和CAF的细胞通讯在TNBC中发挥致癌基因的作用。通过抑制CAF浸润靶向抑制EMP1是治疗TNBC的有前景的策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
EMP1在TNBC中的生物学功能及其在肿瘤微环境重塑中的作用,特别是对CAF浸润的影响。
核心机制
EMP1通过NF-κB信号通路增强IL6分泌,从而促进CAF增殖,进而促进TNBC进展和转移。
主要证据
通过细胞共培养、异种移植、RNA-seq、Western blot、ELISA和拯救实验证实EMP1敲低抑制CAF浸润,并降低IL6分泌,阻碍CAF增殖和肿瘤生长。
研究意义
EMP1可作为TNBC的治疗靶点,通过抑制CAF浸润来抑制转移。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

生信分析和临床样本验证

探究EMP1表达与肿瘤微环境细胞浸润的相关性及其预后价值。

基于TCGA_BRCA队列使用xCell算法进行浸润分析,分析EMP1表达与TME评分和细胞浸润的相关性;使用74例乳腺癌组织芯片进行IHC染色,分析EMP1与αSMA的表达相关性。

2

体外功能实验

验证EMP1对TNBC细胞增殖、迁移和侵袭的影响。

在MDA-MB-231和MDA-MB-468细胞中敲低EMP1,在MDA-MB-453中过表达,通过CCK-8、克隆形成、transwell迁移和侵袭实验检测细胞功能。

3

体内实验

验证EMP1对TNBC生长和转移的影响。

将对照和EMP1敲低的MDA-MB-231细胞皮下注射到裸鼠乳腺脂肪垫,同时尾静脉注射进行转移实验;检测肿瘤体积、重量和转移灶。

4

细胞共培养实验

验证EMP1对TNBC细胞与CAF通讯的影响。

分离TNBC患者CAF,与对照或EMP1敲低的TNBC细胞在transwell中共培养,通过CCK-8、EdU和细胞周期检测CAF增殖。

5

机制研究

阐明EMP1调控CAF浸润的分子机制。

对EMP1敲低的MDA-MB-231细胞进行RNA-seq,Western blot检测NF-κB通路蛋白,ELISA检测IL6和TNFα分泌,并利用重组蛋白进行拯救实验。

6

体内验证CAF浸润

验证EMP1敲低在体内抑制CAF浸润。

将TNBC细胞和CAF以5:1混合注入裸鼠,通过Western blot、IHC、Masson和Sirius Red染色评估CAF浸润水平。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基ServicebioG4515
DMEM/F12培养基PricellaPM150310
胎牛血清Pricella164210
青霉素-链霉素ServicebioG4003
磷酸盐缓冲液ServicebioG4202
II型和IV型胶原酶MCE9001-12-1
透明质酸酶Baomanbio37326-33-3
Transwell小室NEST--
EMP1抗体Abcamab230445
α-SMA抗体Proteintech27095-1-AP
磷酸化AKT (Ser473)抗体CST4060
AKT抗体CST4685
EMP1抗体Santa Cruzsc-13133
NFκB (P65)抗体Santa Cruzsc-7304
磷酸化IκBα和IκBα抗体Santa Cruzsc-8007
IL6抗体Santa Cruzsc-56196
FSP-1抗体AbmartT40044
β-actin抗体AffinityAF7018
山羊抗兔和小鼠二抗AbmartM21003
重组人IL6蛋白MCEHY-P7044
重组人TNFα蛋白MCEHY-P7058
TRIzol试剂Servicebio--
Illumina NovaSeq 6000测序仪Illumina--
人IL6 ELISA试剂盒AbbkineKTE6017
人TNF-α ELISA试剂盒AbbkineKTE6032
Olympus BX640显微镜Olympus--
Zeiss AxioScan玻片扫描仪Zeiss--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
TNBC细胞系(MDA-MB-231、MDA-MB-468、MDA-MB-453)的培养条件、培养基、血清浓度
阅读提示:Methods - Cell culture and isolation of CAFs
CAF分离
组织来源(TNBC患者)、消化酶浓度(胶原酶0.2%、透明质酸酶100 U/ml)、消化时间(2小时)、离心条件(1200 rpm, 10 min)
阅读提示:Methods - Cell culture and isolation of CAFs
共培养系统
transwell孔径(0.8 μm)、细胞密度(CAF 2×10^5/mL, TNBC 1×10^5/mL)、共培养时间(一周)
阅读提示:Methods - CAF-cancer cell co-culture system
体外功能实验
shRNA克隆选择(MDA-MB-231 #7,MDA-MB-468 #8)、CCK-8、克隆形成、transwell实验的具体参数
阅读提示:Results - EMP1 positively regulates TNBC cell proliferation, migration, and invasion; Figure 3 legends
体内实验
动物品系(BALB/c裸鼠)、细胞数量(5×10^6)、注射部位(乳腺脂肪垫)、混合比例(5:1)、每组动物数(6)
阅读提示:Methods - In vivo experiments
机制研究
RNA-seq细胞系(MDA-MB-231)、重组蛋白浓度(10 ng/mL)、检测指标(IκBα, p65, IL6)
阅读提示:Results - EMP1 knockdown impaired NF-κB signaling pathways in TNBC cell lines; Methods - Antibodies and reagents
ELISA检测
样品处理(无血清培养24h)、离心条件(1000g, 10 min)、ELISA试剂盒(KTE6017, KTE6032)
阅读提示:Methods - Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA)