验证Akh在肿瘤诱导的消耗中的作用
确定Akh是否为yki3SA肿瘤诱导的宿主消耗所必需
在yki3SA肿瘤果蝇中检测Akh产生(APC质量、细胞内和循环Akh水平、mRNA水平),并利用Akh缺失突变体评估对消耗表型的影响。
A tumor-secreted protein utilizes glucagon release to cause host wasting.
包含体外模型(αTC1细胞)、果蝇肿瘤模型、小鼠肿瘤模型及患者样本,并进行功能验证(基因敲除/敲低、药物抑制)和机制验证(信号通路、神经支配)。
yki3SA肠道肿瘤果蝇模型 ApcMin/+小鼠结肠癌模型 LLC肿瘤小鼠模型 αTC1细胞系 胰腺癌患者样本
果蝇yki3SA肠道肿瘤诱导条件:esg-GAL4, tub-GAL80TS, UAS-GFP与esg-LexA, tub-GAL80TS, LexAop-GFP在29°C诱导,4日龄处女蝇放置于29°C(day 0) Pvr在APC中的敲低或显性负性表达(UAS-Pvr-RNAi或UAS-PvrDN)对分泌Akh的影响 肿瘤来源Pvf1敲低(UAS-Pvf1-RNAi)对宿主消耗的缓解效果 小鼠模型中GCGR抑制剂GRA Ex-25的给药剂量和方案(10 mg/Kg/day,腹腔注射) PDGFR/VEGFR抑制剂(阿昔替尼30 mg/Kg/day,瑞戈非尼20 mg/Kg/day)的给药方案
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定Akh是否为yki3SA肿瘤诱导的宿主消耗所必需
在yki3SA肿瘤果蝇中检测Akh产生(APC质量、细胞内和循环Akh水平、mRNA水平),并利用Akh缺失突变体评估对消耗表型的影响。
筛选APC中调控Akh释放的跨膜受体
对APC中的跨膜蛋白进行体内RNAi筛选,测量血糖水平变化,发现Pvr为关键受体。
确认Pvr信号在APC中是否促进Akh产生和能量分解
在成体果蝇APC中过表达组成型活性Pvr(PvrAC)或显性负性Pvr(PvrDN),检测Akh产生、代谢变化和饥饿存活率。
确定肿瘤分泌的Pvf1是否通过APC中的Pvr促进Akh释放并导致消耗
在yki3SA肿瘤果蝇中通过APC特异敲低Pvr或表达PvrDN,以及肿瘤特异敲低Pvf1,评估对Akh产生和消耗表型的影响。
阐明Pvr调控Akh释放的分子机制
在APC中过表达PvrAC并敲低ERK或Mmp2,检测Akh释放和代谢表型;在肿瘤果蝇中敲低ERK或Mmp2验证其作用。
研究Mmp2介导的ECM重塑是否影响APC的神经支配
利用Vkg-GFP标记ECM、Denmark标记树突、Syt-GFP标记突触,观察APC周围ECM变化及神经接触数量。
确定哪些神经元支配APC并促进Akh释放
筛选多种神经递质神经元(胆碱能、多巴胺能等)与APC的接触,并验证胆碱能激活的作用。
确认yki3SA肿瘤是否通过增强胆碱能神经支配促进Akh释放和消耗
在肿瘤果蝇中破坏胆碱能神经传递(shiTS),检测Akh产生和消耗表型。
确定胰高血糖素是否为肿瘤诱导的宿主消耗所必需
检测肿瘤患者、ApcMin/+小鼠、LLC小鼠的血清胰高血糖素和α细胞形态;使用GCGR抑制剂或Gcg缺失小鼠评估对消耗的影响。
验证肿瘤是否通过PDGFR/VEGFR信号促进胆碱能-α细胞接触和胰高血糖素释放
在ApcMin/+小鼠中用抑制剂阻断PDGFR/VEGFR,检测α细胞ECM、神经接触、胰高血糖素水平和消耗表型。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 蛋白质定量 | Bradford试剂 | Sigma | B6916-500ML |
| 海藻糖测定 | 海藻糖酶 | Megazyme | E-TREH |
| 葡萄糖测定 | 葡萄糖测定试剂 | Megazyme | K-GLUC |
| 甘油三酯测定 | 血清甘油三酯测定试剂盒 | Sigma | TR0100 |
| 蛋白质免疫印迹 | 抗Akh抗体 | Abclonal | A22867 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | ProCell | PM150211 |
| 细胞因子处理 | 血小板衍生生长因子-BB | Cusabio | AP002631HU |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Thermo Fisher | 15596018 |
| cDNA合成 | HiScript II Q RT Supermix | Vazyme | R222-01 |
| qPCR | ChamQ SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q311-03 |
| CFX96实时荧光定量PCR仪 | Bio-Rad | -- | |
| 胰高血糖素测定 | 小鼠胰高血糖素ELISA试剂盒 | R&D Systems | DGCG0 |
| 人胰高血糖素ELISA试剂盒 | Sangon Biotech | D711361 | |
| 免疫荧光 | DAPI | Thermo Fisher | D1306 |
| 抗胰高血糖素抗体 | Servicebio | GB12097 | |
| 抗PGP9.5抗体 | Servicebio | GB11159-1 | |
| 抗Versican抗体 | Sigma | AB1033 | |
| 生物素化的透明质酸结合蛋白 | Sigma | 385911 | |
| HRP标记的链霉亲和素 | Beyotime | A0303 | |
| 小鼠药物处理 | 阿昔替尼 | Targetmol | T1452 |
| 瑞戈非尼 | Targetmol | T1792 | |
| GRA Ex-25 | Targetmol | T3422 | |
| LGD-6972 | Targetmol | T25711 | |
| 小鼠握力测量 | 握力计 | HANDPI | HP-10 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 果蝇肿瘤诱导 | 肿瘤诱导的果蝇品系、温度转换时间、肿瘤诱导天数(day 0/6/8)、食物条件 阅读提示:Methods: Fly strains; Results: Fig. 1 legend |
| APC中Pvr/Pvf1操作 | 使用的GAL4/LexA系统、UAS转基因(PvrDN, PvrAC, Pvr-RNAi等)、诱导时间、温度 阅读提示:Methods: Fly strains; Results: Fig. 2, Fig. 3 |
| Akh/Gcg缺失或干预 | Akh突变体(AkhSAP/AkhA)、Gcg敲除小鼠、GCGR抑制剂剂量和给药途径(IP)、给药时间 阅读提示:Methods: Mice strains; Results: Fig. 1, Fig. 6 |
| 代谢检测 | TAG/TRE测定方法、样品制备(5只雌蝇,0.5 mL PBS等)、试剂盒和使用条件 阅读提示:Methods: Lipid and carbohydrate measurements |
| 血清胰高血糖素检测 | 采血方法、ELISA试剂盒(mouse/human)、稀释倍数、离心条件 阅读提示:Methods: Measurements of serum glucagon; Results: Fig. 6a |
| 免疫染色 | 组织固定(4% PFA)、一抗稀释比(anti-Akh 1:10000, anti-Gcg 1:500等)、二抗、共聚焦成像 阅读提示:Methods: Immunostaining and electron microscopy |
| PDGFR/VEGFR抑制 | 抑制剂名称(Axitinib, Regorafenib)、剂量(30 mg/Kg/day, 20 mg/Kg/day)、给药方式(IP)、起始时间(week 16)和持续时间(2周) 阅读提示:Methods: Mice strains; Results: Fig. 7 |