M2巨噬细胞极化与鉴定
诱导并验证M2巨噬细胞极化。
从大鼠骨髓提取巨噬细胞,用IL-4刺激48小时,通过流式细胞术检测M2标志物CD206。
Exosomal miR-122 derived from M2 macrophages induces osteogenic differentiation of bone marrow mesenchymal stem cells in the treatment of alcoholic osteonecrosis of the femoral head.
包含细胞实验(M2极化、外泌体鉴定、BMSCs成骨分化)和动物模型(AIONFH大鼠)两个独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
大鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs) AIONFH大鼠模型 M2巨噬细胞及其外泌体(M2-Exo)
M2巨噬细胞极化:使用IL-4(20 ng/mL)诱导,流式检测CD206阳性率85.3% 外泌体提取:超速离心法,粒径156.4 nm,浓度3.2E+12 particles/mL BMSCs处理:M2-Exo浓度5 ug/mL,miR-122 mimic浓度100 nM 动物模型:56%白酒8mL/kg.d灌胃12周,尾静脉注射200 μL含100 μg外泌体,每周一次 统计分析:组间比较采用One-way ANOVA,两组比较采用t检验
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
诱导并验证M2巨噬细胞极化。
从大鼠骨髓提取巨噬细胞,用IL-4刺激48小时,通过流式细胞术检测M2标志物CD206。
提取并验证M2巨噬细胞分泌的外泌体。
收集M2巨噬细胞培养上清,通过超速离心提取外泌体,用TEM和NTA表征粒径和浓度,Western blot检测CD81和TSG101。
验证miR-122 mimic可增加M2巨噬细胞及其外泌体中miR-122的表达。
将miR-122 mimic或NC mimic转染M2巨噬细胞,用RT-qPCR检测细胞内和外泌体中miR-122表达。
验证M2-Exo及其miR-122对BMSCs成骨分化的影响。
将BMSCs在成骨诱导培养基中培养,并分别用M2-Exo或miR-122 mimic M2-Exo处理,检测细胞活力、成骨基因表达、ALP活性和钙结节形成。
评估M2-Exo和miR-122 mimic M2-Exo对AIONFH的治疗效果。
对大鼠进行酒精灌胃建立AIONFH模型,从第6周开始尾静脉注射外泌体,12周后处死,收集股骨组织进行Micro-CT、HE、Masson和免疫组化检测。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| M2巨噬细胞极化 | 巨噬细胞集落刺激因子 | Peprotech | 315-02-10 |
| 白细胞介素-4 | -- | -- | |
| M2巨噬细胞鉴定 | CD14抗体 | santacruz | sc-515785 |
| CD86抗体 | Biolegend | 200305 | |
| CD206抗体 | santacruz | sc-70585 | |
| 外泌体分离 | 去外泌体胎牛血清 | Vivacell | C04001-500 |
| 外泌体鉴定 | CD81抗体 | abclonal | A22528 |
| TSG101抗体 | abclonal | A1692 | |
| 透射电子显微镜 | Hitachi | HT-7700 | |
| 纳米颗粒跟踪分析仪 | PARTICLE METRIX | PMX120 | |
| BMSCs培养 | 骨髓间充质干细胞培养基 | Procell | CM-R131 |
| 胎牛血清 | Vivacell | C04001-500 | |
| miR-122过表达 | miR-122模拟物 | RIBOBIO | miR10000827-1-5 |
| 阴性对照模拟物 | RIBOBIO | miR10000827-1-5 | |
| BMSCs成骨分化检测 | CCK-8试剂盒 | Beyontime | C0038 |
| ALP染色试剂盒 | Yeasen | 40749ES60 | |
| 茜素红染色液 | Beyontime | C0138-100 | |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | YEASEN | 19221ES50 |
| 逆转录试剂盒 | Takara | RR047A | |
| SYBR Green实时PCR试剂 | Takara | RR820A | |
| Bulge-Loop™ miRNA qRT-PCR试剂盒 | RIBOBIO | R10211-1 | |
| Masson染色 | Masson染色试剂盒 | Servicebio | G1006 |
| 免疫组化 | 牛血清白蛋白 | Servicebio | GC305010 |
| COL I一抗 | Servicebio | GB11022-3 | |
| 生物素化二抗 | Servicebio | GB22303 | |
| 数据分析 | GraphPad Prism 8 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| M2巨噬细胞极化 | IL-4浓度(20 ng/mL)、刺激时间(48小时)、M-CSF浓度(10 ng/mL)及鉴定标志物(CD206) 阅读提示:见Materials and methods中“Polarization and identification of M2 macrophages”及图1 |
| 外泌体分离 | 超速离心转速和时间(500×g 5min,2000×g 20min,0.22μm过滤,10000×g 30min,100000×g 2h,100000×g 70min) 阅读提示:见Materials and methods中“Isolation and observation of M2-Exo” |
| miR-122过表达 | miR-122 mimic浓度(100 nM)及转染时间 阅读提示:见Materials and methods中“Osteogenic induction of rat BMSCs”及图2 |
| 体外BMSCs成骨分化 | M2-Exo浓度(5 μg/mL)、miR-122 mimic浓度(100 nM)、成骨诱导时间(7天、21天) 阅读提示:见Materials and methods中“Osteogenic induction of rat BMSCs”及图3、图4 |
| AIONFH大鼠模型 | 酒精灌胃剂量(8mL/kg.d 56%白酒)、建模时间(12周)、尾静脉注射剂量(200 μL含100 μg外泌体,每周一次) 阅读提示:见Materials and methods中“Animals and grouping”及图5、图6 |