生信分析鉴定关键基因
从多数据集筛选与HBV相关HCC进展相关的核心基因
整合GSE19665、GSE121248、GSE55092和GSE94660数据集,进行DEG分析、WGCNA、PPI网络分析、Lasso-Cox回归和randomForestSRC算法,最终确定RAD51AP1为核心基因。
Identification of RAD51AP1 as a key gene in hepatitis B virus-associated hepatocellular carcinoma.
包含多数据集生物信息学分析、细胞系功能实验(CCK-8、划痕、Transwell)、双荧光素酶报告实验及Western blot等验证,涵盖生信、体外功能及机制研究。
HBV相关HCC细胞系(HepG2.2.15、HepAD38、HepG2-NTCP) 非HBV相关HCC细胞系(HepG2) 临床队列(TCGA-LIHC、GSE14520、LIRI-JP)
HBV感染状态:HepG2.2.15 vs HepG2, HepAD38 Tet(-) vs Tet(+), HepG2-NTCP-HBV vs HepG2-NTCP LINC01419/miR-8070/RAD51AP1轴的调控关系:敲低或过表达后检测基因和蛋白表达 Wnt/β-catenin信号通路活性:检测β-catenin、p-β-catenin、p-GSK3β、CCND1、c-Myc 细胞增殖和转移:CCK-8、划痕、Transwell及EdU实验 HBV复制指标:HBx、pgRNA、cccDNA水平
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从多数据集筛选与HBV相关HCC进展相关的核心基因
整合GSE19665、GSE121248、GSE55092和GSE94660数据集,进行DEG分析、WGCNA、PPI网络分析、Lasso-Cox回归和randomForestSRC算法,最终确定RAD51AP1为核心基因。
验证RAD51AP1表达与HBV相关HCC患者预后的关系
基于TCGA-LIHC队列及验证队列(GSE14520、LIRI-JP),进行Cox回归、Kaplan-Meier生存分析和亚组分析。
验证LINC01419/miR-8070/RAD51AP1的ceRNA调控关系
在HepG2.2.15细胞中进行敲低、过表达和双荧光素酶报告实验,检测基因表达及miRNA靶向结合。
探究HBV感染是否增强LINC01419/miR-8070/RAD51AP1轴
三对细胞模型比较以及HBx过表达实验,检测轴分子表达变化;LINC01419过表达或敲低后检测HBV复制指标。
评估LINC01419/miR-8070/RAD51AP1轴与HBV协同对细胞增殖和转移的影响
在HepG2、HepG2.2.15和HepAD38细胞中进行LINC01419过表达或敲低,结合HBV复制状态,进行CCK-8、细胞周期、EdU、划痕和Transwell实验。
验证Wnt/β-catenin信号通路的参与
通过GSEA分析富集通路,并在HepG2.2.15细胞中敲低或过表达相关分子后检测β-catenin、p-β-catenin、GSK3β、p-GSK3β及下游靶基因的表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| MEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine™ 3000转染试剂 | Invitrogen | L3000015 |
| RNA提取与qPCR | Trizol试剂 | G-CLONE | EX1880 |
| RNA逆转录试剂盒 | Servicebio | -- | |
| qRT-PCR反应试剂盒 | Servicebio | -- | |
| Western blot | 蛋白提取试剂盒 | Keygen | KGP150 |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| ECL化学发光底物 | Biosharp | BL520A | |
| 双荧光素酶报告实验 | 双荧光素酶报告实验试剂盒 | Keygen | KGE3302 |
| CCK-8实验 | CCK-8试剂 | Glpbio | GK10001 |
| Transwell实验 | Matrigel基质胶 | -- | -- |
| 结晶紫 | -- | -- | |
| 细胞周期实验 | 碘化丙啶溶液 | -- | -- |
| EdU实验 | EdU细胞增殖检测试剂盒 | Sangon Biotech | E607204 |
| 细胞周期分析 | RNase A | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 生信分析 | 数据集来源及合并方式:GSE19665、GSE121248、GSE55092合并为GPL570_data,GSE94660单独分析;DEG筛选标准:|log2FC|>1且调整p<0.05;WGCNA参数及模块筛选;后续PPI、Lasso-Cox和randomForestSRC的具体参数 阅读提示:Methods 2.1-2.3 和 Results 4.1 |
| 细胞培养与转染 | 细胞系(HepG2、HepG2.2.15、HepAD38、HepG2-NTCP)来源及培养条件(培养基、FBS浓度、抗生素);转染试剂及操作 阅读提示:Methods 2.4 |
| 基因表达检测 | RNA提取方法、逆转录及qPCR试剂、引物序列、内参基因、相对定量方法(-ΔΔCt) 阅读提示:Methods 2.5 和 Supplementary Table S4 |
| 蛋白表达检测 | 蛋白提取试剂盒、SDS-PAGE、转膜条件、抗体信息(一抗及二抗)、ECL底物及成像系统 阅读提示:Methods 2.6 和 Supplementary Table S5 |
| ceRNA验证 | 双荧光素酶报告载体(pmiR-RB-Reporter)及野生型/突变型构建;miR-8070 mimics及NC对照;共转染浓度及时间;荧光素酶检测试剂盒 阅读提示:Methods 2.7 和 Results 4.3 |
| 细胞功能实验 | CCK-8实验:细胞接种密度(3×10^3/孔)、检测时间点(0,24,48,72,96h);划痕实验:接种密度(2×10^5/孔)、划痕后时间(0,48h);Transwell实验:接种密度(5×10^4/孔)、基质胶浓度(3mg/ml)、固定和染色时间;EdU实验:标记时间(6h或1h) 阅读提示:Methods 2.8-2.12 和 Results 4.5-4.6 |
| 细胞周期分析 | 细胞固定方法、PI染色浓度、RNase浓度、流式细胞仪型号及分析软件 阅读提示:Methods 2.11 |
| 机制通路研究 | GSEA分析所用软件及参数;Western blot检测β-catenin、p-β-catenin、GSK3β、p-GSK3β、CCND1、c-Myc所用抗体及稀释度 阅读提示:Results 4.7 和 Supplementary Table S5 |