体外细胞模型验证LIGc的抗炎作用
评估LIGc对LPS诱导的RAW264.7细胞和原代小胶质细胞炎症反应的影响
CCK-8检测细胞活力;Griess和ELISA检测NO及细胞因子;Western blot和qRT-PCR检测炎症标志物。
A Novel Compound Ligusticum Cycloprolactam Alleviates Neuroinflammation After Ischemic Stroke via the FPR1/NLRP3 Signaling Axis.
包含体外细胞模型(RAW264.7、原代小胶质细胞)、体内LPS神经炎症模型和tMCAO模型,结合RNA-seq、分子对接及FPR1过表达和NLRP3激动剂反向验证,功能与机制验证完整。
RAW264.7小鼠巨噬细胞系 原代小鼠小胶质细胞 LPS诱导的神经炎症小鼠模型 tMCAO小鼠模型
LIGc浓度:2.5、5、10 μM,预处理2小时 LPS浓度:100 ng/mL,刺激6或12小时 LIGc给药剂量:20和60 mg/kg,口服 tMCAO模型:线栓阻塞60分钟后复灌 细胞模型:RAW264.7和原代小胶质细胞
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估LIGc对LPS诱导的RAW264.7细胞和原代小胶质细胞炎症反应的影响
CCK-8检测细胞活力;Griess和ELISA检测NO及细胞因子;Western blot和qRT-PCR检测炎症标志物。
验证LIGc对LPS诱导的神经炎症小鼠的行为和脑部炎症的影响
小鼠口服LIGc后腹腔注射LPS,进行旷场实验,取脑组织检测炎症标志物。
评估LIGc对脑缺血再灌注损伤后的神经功能、梗死体积和炎症的影响
线栓法建立tMCAO模型,再灌注后口服LIGc,进行神经功能评分和行为学测试,TTC染色测梗死体积,免疫荧光和ELISA/Western blot检测炎症。
揭示LIGc抗炎作用的分子靶点及其与FPR1的相互作用
对RAW264.7细胞进行RNA-seq,筛选差异表达基因并验证,通过分子对接预测LIGc与FPR1的结合。
确定FPR1/NLRP3信号轴在LIGc抗炎作用中的因果角色
使用腺病毒过表达FPR1或NLRP3激动剂NSC292567处理细胞,检测炎症表型变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 多聚-L-赖氨酸 | Solarbio | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Boster | -- |
| NO检测 | NO检测试剂盒 | Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| 细胞因子检测 | ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-M3063 |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Mei5bio | MF736-01 |
| 逆转录 | SweScript All-in-One Blue RT SuperMix | Servicebio | G3329 |
| qPCR | SYBR Green qPCR预混液 | Servicebio | G3326 |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013B |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0012S | |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 抗CD86抗体 | Santa Cruz | sc-28347 | |
| 抗iNOS抗体 | Proteintech | 22226-1-AP | |
| 抗COX-2抗体 | Proteintech | 66351-1-Ig | |
| 抗CD206抗体 | Proteintech | 18704-1-AP | |
| 抗FPR1抗体 | Invitrogen | PA1-41398 | |
| 抗NLRP3抗体 | Invitrogen | PA5-79740 | |
| 免疫荧光 | 抗Iba1抗体 | Abcam | Ab178846 |
| 细胞转染 | 腺病毒载体ADV4-Fpr1 | GenePharma | -- |
| 动物实验 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | L2630 |
| 羧甲基纤维素钠 | Sigma-Aldrich | -- | |
| TTC染色 | 2,3,5-三苯基氯化四氮唑 | Solarbio | T8170 |
| 脑组织切片 | OCT包埋剂 | SAKURA | -- |
| 动物实验 | 单丝尼龙线栓 | Beijing Cinontech Co. Ltd. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | RAW264.7细胞培养基:高糖DMEM+10%胎牛血清+100 μg/mL链霉素+100 U/mL青霉素;原代小胶质细胞分离自新生昆明小鼠(3天内),纯度经Iba1免疫荧光确认>95%。 阅读提示:Methods 2.2 Cell Culture |
| 细胞处理 | LIGc浓度(2.5、5、10 μM)预处理2小时,LPS(100 ng/mL)刺激6或12小时;CCK-8检测细胞活力(LIGc浓度0-10 μM,24小时)。 阅读提示:Methods 2.3 Cell Model Construction, 2.4 Cell Viability Assay |
| 炎症因子检测 | NO检测使用NO检测试剂盒,ELISA检测TNF-α、IL-1β、IL-4、IL-10浓度;细胞或脑组织样本处理方式。 阅读提示:Methods 2.5 NO Determination, 2.6 ELISA |
| Western blot | 蛋白提取使用RIPA,定量使用BCA;抗体:CD86 (1:800), iNOS (1:1000), COX-2 (1:1000), CD206 (1:1000), FPR1 (1:1000), NLRP3 (1:1000), β-actin (1:5000), GAPDH (1:5000);条带定量归一化。 阅读提示:Methods 2.8 Western Blot |
| 免疫荧光 | 细胞固定4% PFA,通透0.1% Triton X-100;脑组织切片8 μm;抗体:CD86 (1:300), Iba1 (1:500);DAPI核染。 阅读提示:Methods 2.9 Immunofluorescence |
| 细胞转染 | 腺病毒载体ADV4-Fpr1(NM_013521.2)或对照感染RAW264.7或原代小胶质细胞24小时,换液培养48小时,感染后72小时分析。 阅读提示:Methods 2.10 Cell Transfection |
| RNA-seq | 细胞处理:LIGc 10 μM 2小时,LPS 100 ng/mL 6小时;差异表达基因标准:|fold change|≥1.5,p adj<0.05;数据已存于PRJNA1132545。 阅读提示:Methods 2.11 RNA-Seq |
| 动物模型-LPS | 昆明小鼠24只,分4组(每组6只);LIGc口服20或60 mg/kg每日一次共4天,第4天腹腔注射LPS 1 mg/kg后2小时进行旷场实验,24小时后取脑。 阅读提示:Methods 2.14 LPS-Induced Neuroinflammatory Model |
| 动物模型-tMCAO | 线栓法阻塞右侧大脑中动脉60分钟;LIGc口服20或60 mg/kg于再灌注后1、24、48小时;排除标准:6.67%小鼠因模型失败或死亡被排除。 阅读提示:Methods 2.16 tMCAO Model |
| 行为学评估 | 旷场实验(5分钟)参数;Longa评分0-4;角落测试10次记录右转次数;圆柱体测试计算前肢损伤评分。 阅读提示:Methods 2.15, 2.17, 2.19 |
| 梗死体积测量 | TTC染色2%浓度,37°C孵育15分钟;梗死面积公式:% = (对侧面积 - 同侧非梗死面积)/对侧面积 × 100。 阅读提示:Methods 2.18 |
| 统计分析 | 数据表示mean±SD;正态性Shapiro-Wilk检验,方差齐性Brown-Forsythe检验;两组比较t检验,多组比较单/双因素ANOVA或Kruskal-Wallis。 阅读提示:Methods 2.20 Statistical Analysis |