氟化羟基磷灰石通过触发从糖酵解到氧化磷酸化的代谢转换,塑造有利的骨免疫微环境

Fluorinated hydroxyapatite conditions a favorable osteo-immune microenvironment via triggering metabolic shift from glycolysis to oxidative phosphorylation.

作者信息Kaidi Chen, Seongmin Ha, Leyao Xu, Chengwu Liu, Yuanxiang Liu, Xiayi Wu, Zhipeng Li, Shiyu Wu, Bo Yang, Zhuofan Chen
PMID38720345
发布时间2024-05-08
DOI10.1186/s12967-024-05261-0

实验完整度

高

包含体外细胞实验(RAW264.7巨噬细胞极化、rBMSCs成骨分化)、RNA-seq转录组分析、Seahorse代谢分析以及SD大鼠颅骨缺损体内验证,涵盖功能与代谢机制验证。

主要模型

RAW264.7巨噬细胞 SD大鼠临界尺寸颅骨缺损模型 rBMSCs细胞

重点核对

FPHA提取液中氟离子浓度为0.19±0.01 mg/L LPS激活RAW264.7巨噬细胞(1000 ng/mL,6小时) 巨噬细胞与提取液共培养时间点:6小时和1天用于基因/代谢检测,48小时用于分泌蛋白检测 SD大鼠(雄性,6-8周龄)颅骨缺损直径5 mm,植入后第7天取材

摘要

背景:生物源性羟基磷灰石广泛用作骨缺损的骨替代材料,但其有限的骨传导性需要进一步改进。骨免疫调节特性在维持骨稳态方面具有重要前景,而精确调控巨噬细胞极化在此过程中至关重要。代谢是免疫的引导力量,氟化物修饰可能是通过调节免疫代谢来调控骨免疫环境的一种有前景的策略。在此背景下,我们合成了氟化猪羟基磷灰石(FPHA),并已证明其具有增强的生物学特性和成骨能力。然而,FPHA 是否以及如何影响骨缺损的免疫微环境仍不清楚。方法:合成了 FPHA,并确认了其组成和结构特性。将巨噬细胞与 FPHA 提取液共培养,以研究 FPHA 对巨噬细胞极化及相关骨免疫微环境的影响。此外,提取了这些巨噬细胞的总 RNA,并进行 RNA-seq 分析以探索与观察到的巨噬细胞变化相关的潜在机制。使用 Seahorse 分析仪评估代谢状态。此外,在 SD 大鼠临界尺寸颅骨缺损中植入新型骨替代材料后,进行免疫组织化学染色以评估巨噬细胞反应。结果:验证了 FPHA 中氟离子的掺入。FPHA 促进巨噬细胞增殖,增强 M2 标志物表达,同时抑制 M1 标志物表达。此外,FPHA 抑制炎症因子的表达,上调成骨因子的表达,从而增强 rBMSCs 的成骨分化能力。RNA-seq 分析表明,FPHA 的极化调节功能可能与细胞代谢的变化有关。进一步的实验证实,FPHA 增强线粒体功能,并促进巨噬细胞从糖酵解向氧化磷酸化的代谢转换。此外,体内实验在 SD 大鼠颅骨缺损模型中验证了上述结果。结论:总之,我们的研究表明,FPHA 诱导巨噬细胞从糖酵解向氧化磷酸化的代谢转换。这种转换导致巨噬细胞倾向于 M2 极化,从而创造有利的骨免疫微环境。这些发现为掺入适当浓度氟化物对免疫代谢和巨噬细胞线粒体功能的影响提供了有价值的见解,这对开发基于免疫代谢的氟化物改性骨再生生物材料以及 FPHA 或其他含氟材料的临床应用具有重要意义。图形摘要:通过化学和热过程成功制备了 FPHA。通过体外和体内研究探讨了 FPHA 的免疫调节作用,揭示其能够诱导巨噬细胞从糖酵解向线粒体氧化磷酸化(OxPhos)的代谢转换。这种代谢重塑导致 M1 巨噬细胞极化的显著抑制和 M2 巨噬细胞极化的促进。此外,FPHA 被发现能增强成骨分化并促进骨修复。这些发现强调了 FPHA 作为骨再生应用生物材料的巨大潜力,为开发具有代谢免疫调节特性的生物活性材料提供了宝贵的见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
FPHA是否以及如何影响骨缺损中的免疫微环境,特别是巨噬细胞极化及其潜在机制。
核心机制
FPHA诱导巨噬细胞从糖酵解向氧化磷酸化的代谢转换,增强线粒体功能,抑制ROS,通过上调SDHB表达促进OxPhos,从而抑制M1极化、促进M2极化,创造抗炎和成骨的微环境。
主要证据
体外实验显示FPHA促进M2标志物(Arg, IL10)并抑制M1标志物(iNOS, CD86),且成骨分化增强;代谢分析显示FPHA增强OCR、抑制ECAR;体内免疫组化显示CD163增加、iNOS减少,SDHB上调。
研究意义
揭示氟化物修饰通过免疫代谢调控骨免疫微环境的机制,为开发基于免疫代谢的氟改性骨再生生物材料及FPHA的临床应用提供理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

FPHA的制备与表征

合成FPHA并确认其理化性质及氟离子掺入。

通过化学和热方法合成PHA和FPHA,使用SEM、EDS、FTIR、XRD进行表征。

2

巨噬细胞对FPHA的体外反应

评估FPHA对巨噬细胞增殖、极化和炎症因子表达的影响。

RAW264.7细胞与DMEM、PHA或FPHA提取液共培养,检测增殖、极化标志物和细胞因子。

3

巨噬细胞条件培养基对rBMSCs成骨分化的影响

验证FPHA通过调节巨噬细胞分泌组对成骨分化的间接作用。

收集不同处理巨噬细胞的条件培养基,与成骨诱导培养基1:1混合培养rBMSCs,进行ALP和ARS染色。

4

RNA-seq分析

识别FPHA影响巨噬细胞极化的潜在分子通路。

提取共培养6小时后巨噬细胞总RNA,进行转录组测序及GO、KEGG、GSEA等分析。

5

代谢状态评估

验证FPHA对巨噬细胞氧化磷酸化和糖酵解的影响。

使用Seahorse XF96分析仪测量OCR和ECAR,并用JC-1和DCFH-DA评估线粒体膜电位和ROS水平。

6

体内免疫调节验证

在体内验证FPHA对巨噬细胞极化和骨免疫微环境的影响。

在SD大鼠颅骨缺损模型中植入PHA或FPHA,7天后通过免疫组化检测巨噬细胞标志物和相关因子。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
扫描电子显微镜TescanMIRA
傅里叶变换红外光谱Thermo-FisherNicolet
X射线衍射Malvern PanalyticalEmpyrean
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清NobimpexA115-500
青霉素/链霉素Gibco--
滤膜Merck Millipore0.22
氟离子选择电极LeiciPF-202-C
离子分析仪Thermo ScientificOrigin
CCK-8试剂盒Dojindo Laboratories--
Calcein-AM/PI活死细胞染色试剂盒Solarbio--
脂多糖Merck MilliporeL2630
RNA纯化试剂盒Esunbio--
分光光度计Thermo Fisher ScientificNanodrop
Hifair® III 第一链cDNA合成预混液Yeasen--
Hieff® qPCR SYBR Green预混液(无ROX)Yeasen--
LightCycler® 96实时荧光定量PCR仪Roche--
RIPA裂解液----
BCA蛋白定量试剂盒CwbioCW0014
SDS-PAGE凝胶GenScriptSurePAGE™
PVDF膜Merck Millipore--
脱脂奶粉Biofroxx1172
抗iNOS抗体Abcamab178945
抗Arg抗体CST93668T
抗IL10抗体Affinity--
抗MMP9抗体Proteintech--
抗β-微管蛋白抗体CST2128S
山羊抗兔二抗CST7074s
Immobilon Western HRP底物Merck MilliporeWBKLS0100
ChemiDoc XRS凝胶成像系统BioRad--
TNFα ELISA试剂盒Cusabio--
TGFβ1 ELISA试剂盒Mlbio--
总一氧化氮检测试剂盒Beyotime BiotechnologyS0023
α-MEM培养基Gibco--
TrypLE™ Express消化液Gibco--
碱性磷酸酶显色试剂盒BeyotimeC3206
茜素红SPricella--
JC-1检测试剂盒Beyotime BiotechnologyC2003S
荧光倒置显微镜ZeissAxio
流式细胞仪BDLSRFortessa
活性氧检测试剂盒SolelybioC1300-1
XF96 Seahorse分析仪Agilent Technologies--
抗CD68抗体Invitrogen1:100
抗iNOS抗体Abcam1:100
抗CD163抗体Proteintech1:1000
抗TNFα抗体ZenBio1:100
抗IL1β抗体Proteintech1:100
抗IL10抗体Proteintech1:100
抗TGFβ1抗体Proteintech1:100
抗MMP9抗体Proteintech1:100
抗OCN抗体Affinity1:100
抗HIF1α抗体Proteintech1:100
抗SDHB抗体Proteintech1:100
山羊抗兔IgGServicebio1:100
DAPI染料Servicebio--
Aperio AT2玻片扫描仪Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
材料制备与表征
FPHA制备方法(化学和热方法,0.25 M NaF)、材料表征(SEM、EDS、FTIR、XRD)
阅读提示:Methods: FPHA preparation, characterization and extract preparation; Results: Characterization and biocompatibility of PHA and FPHA
巨噬细胞培养与激活
RAW264.7细胞来源(TCM-13)、培养条件(DMEM+10% FBS+1% P/S,37°C,5% CO2)、LPS激活浓度(1000 ng/mL)和时间(6小时)
阅读提示:Methods: Cell culture and macrophage activation
提取液制备
材料与DMEM比例(100 mg/mL)、孵育条件(37°C,24小时)、过滤(0.22 μm)、氟离子浓度(0.19±0.01 mg/L)
阅读提示:Methods: FPHA preparation, characterization and extract preparation
基因表达分析
共培养时间(6小时和1天)、RNA提取试剂盒、cDNA合成起始量(500 ng)、qRT-PCR反应体积(10 μl)
阅读提示:Methods: qRT-PCR; Results: FPHA extract suppressed M1 polarization and induced macrophages M2 polarization
蛋白表达分析
共培养时间(1天用于细胞内蛋白,48小时用于分泌蛋白)、抗体稀释比例、样本量
阅读提示:Methods: Western blot, ELISA
代谢分析
细胞密度(3.0×10^4细胞/孔)、共培养时间(6小时和1天)、OCR/ECAR测量条件(药物浓度:oligomycin 1.5 μM, FCCP 1.0 μM, rotenone/antimycin A 0.5 μM, 2-DG 50 mM)
阅读提示:Methods: Macrophage metabolism states; Results: FPHA extract strengthened macrophage mitochondrial function, FPHA extract enhanced OxPhos and suppressed glycolysis
动物实验
动物品系(雄性SD大鼠,6-8周龄)、缺损直径(5 mm)、植入材料、取材时间(第7天)
阅读提示:Methods: Animal surgery; Results: FPHA fostered a favorable osteo-immune microenvironment in rat critical size calvarial defects
统计分析
重复次数(至少三次)、正态性检验(Shapiro-Wilk)、组间比较方法(ANOVA + Bonferroni post hoc)、显著性水平(p<0.05)
阅读提示:Methods: Statistical analysis