MCT1介导的内皮细胞乳酸穿梭作为脊髓损伤后促进轴突再生的靶点

MCT1-mediated endothelial cell lactate shuttle as a target for promoting axon regeneration after spinal cord injury.

作者信息Chaoran Shi, Jiaqi Xu, Yinghe Ding, Xingyi Chen, Feifei Yuan, Fengzhang Zhu, Chunyue Duan, Jianzhong Hu, Hongbin Lu, Tianding Wu, Liyuan Jiang
PMID39310103
发布时间2024-09-03
DOI10.7150/thno.96374

实验完整度

包含体外细胞共培养、微流控轴突再生实验、代谢组学和单细胞转录组分析,以及小鼠SCI模型和AAV介导的MCT1过表达体内验证,证据层级完整。

主要模型

bEnd.3小鼠脑内皮细胞系 原代小鼠皮质神经元 C57BL/6小鼠脊髓损伤模型 CATH.a小鼠神经细胞系

重点核对

MCT1在ECs中的表达在SCI后降低(免疫荧光和单细胞数据) AAV-MCT1特异性过表达于脊髓ECs(TIE1p启动子) 乳酸穿梭依赖ECs与神经元的直接接触(FRET传感器和时间序列成像) MCT1抑制(α-CHCA)减少管形成、迁移和神经元乳酸摄取 AAV-MCT1促进SCI小鼠轴突再生和功能恢复(BMS、LSS、电生理、BDA示踪)

摘要

理由:脊髓损伤(SCI)引起的血管损伤导致损伤部位缺血和缺氧,进而引起严重的代谢紊乱。这些代谢改变对神经组织重塑和功能恢复的影响尚未阐明。本研究旨在探讨SCI损伤中心缺氧环境的后果。方法:本研究采用代谢组学评估SCI后能量代谢的变化。使用乳酸传感器鉴定内皮细胞(ECs)和神经元之间的乳酸穿梭。对单细胞RNA测序数据的重新分析显示,SCI后ECs中MCT1表达降低。此外,利用过表达MCT1的腺相关病毒(AAV)阐明其在内皮-神经元相互作用、组织修复和功能恢复中的作用。结果:研究结果显示,SCI后ECs中促进乳酸向神经元传递以支持其能量代谢的单羧酸转运蛋白1(MCT1)表达显著降低。MCT1表达的降低破坏了乳酸向神经元的转运,导致代谢失衡,从而阻碍轴突再生。引人注目的是,我们的结果表明,给予特异性靶向内皮细胞的AAV以恢复MCT1表达,可增强SCI小鼠的轴突再生并改善功能恢复。这些发现表明,SCI后内皮细胞向神经元的乳酸穿梭与随后的神经功能恢复之间存在新的联系。结论:总之,本研究强调了一种治疗SCI的新型代谢途径。此外,我们的研究结果表明,靶向乳酸转运机制在SCI恢复中具有潜在益处。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
脊髓损伤后,内皮细胞中的MCT1介导的乳酸穿梭对神经元能量代谢和轴突再生的作用及其机制。
核心机制
SCI后损伤中心ECs中MCT1表达降低,破坏了ECs向神经元的乳酸穿梭,导致神经元能量代谢失衡,从而阻碍轴突再生。
主要证据
代谢组学显示SCI后乳酸等糖酵解代谢物升高;单细胞测序和免疫荧光显示SCI后ECs中MCT1表达降低;共培养和FRET传感器证实ECs向神经元转运乳酸;AAV-MCT1恢复MCT1表达促进轴突再生和功能恢复。
研究意义
该研究揭示了ECs与神经元之间乳酸穿梭在SCI后的新联系,为SCI治疗提供了新的代谢靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

代谢组学分析

评估SCI后能量代谢(特别是糖酵解)的变化

对SCI后7天小鼠脊髓组织进行靶向代谢组学测序,比较糖酵解相关代谢物变化,并通过KEGG和火山图分析差异代谢物。

2

乳酸穿梭验证

验证ECs是否向神经元转运乳酸

使用FRET乳酸传感器Laconic感染神经元,与bEnd.3细胞共培养,通过共聚焦成像和时间序列成像检测神经元内乳酸水平变化。

3

MCT1表达分析

评估SCI后ECs中MCT1的表达变化

利用公共单细胞数据集(GSE162610和GSE190442)分析MCT1在ECs中的表达,并通过免疫荧光检测SCI小鼠不同时间点MCT1与CD31的共定位。

4

体外细胞功能实验

探讨MCT1对ECs血管生成和迁移的影响

通过管形成实验和细胞横向迁移实验,检测乳酸或α-CHCA处理下bEnd.3细胞的管形成能力和迁移能力,并通过Western blot检测糖酵解酶表达。

5

体外轴突再生实验

验证乳酸对神经元轴突再生的促进作用

使用微流控芯片(SND450)分离神经元胞体和轴突,进行轴突切断后培养,检测不同处理下轴突再生长度。

6

动物实验

验证恢复ECs中MCT1表达对SCI小鼠轴突再生和功能恢复的作用

在SCI前两周通过T9脊髓注射AAV-TIE1p-MCT1或对照AAV,建立SCI模型,通过免疫荧光、BDA示踪、电生理及行为学评估轴突再生和功能恢复。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基CORNING10-013-CVRV
胎牛血清NEWZERUMFBS-CP500
青霉素-链霉素溶液ProcellPB180120
CATH.a细胞专用培养基ProcellCM-0665
多聚-L-赖氨酸Sigma-AldrichP6407
Hank's平衡盐溶液BasalMediaB430KJ
70 μm细胞筛网Saining5021100
L-乳酸SigmaL6402
α-氰基-4-羟基肉桂酸SelleckS8612
2-脱氧-D-葡萄糖SelleckS4701
Ibidi 2孔插入式培养皿Ibidi81176
共聚焦培养皿NEST801001
Laconic乳酸传感器Addgene44238
聚凝胺增强剂----
AAV-TIE1p-MCT1Obio TechnologypAAV-TlE1p-mCherry-P2A-Slc16a1-3xFLAG-WPRE
对照AAVObio TechnologyH28906
F4/80抗体Abcamab6640
TUJ1抗体CST5568
神经丝蛋白LCST2837S
GAP43抗体CST8945S
GFAP抗体Invitrogen130300
MCT1抗体Proteintech20139-1-AP
CD31抗体R&Dfab3628G
IBA1抗体Wako011-27991
Alexa Fluor 594荧光二抗Abcam--
Alexa Fluor 488荧光二抗Abcam--
DAPI染色液Genetex--
BCA蛋白定量试剂盒----
化学发光试剂ShareBioSB-WB001
ChemiDoc XRS Plus化学发光成像系统Bio Rad--
SND450微流控芯片Xona MicrofluidicsSND450
生物素化葡聚糖胺Molecular Probes--
数字立体定位注射器Stoelting Co.51709
BL-420F生物功能实验系统----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源和培养基成分,bEnd.3使用DMEM+10%FBS+1%青霉素-链霉素,CATH.a使用专用培养基;原代神经元分离需poly-L-lysine包被,种植密度1×10^5 cells/ml。
阅读提示:Methods:Cell Lines;Mouse cortical neurons preparation and culture
乳酸穿梭共培养
共培养方式(Ibidi 2-well inserts)及乳酸添加浓度(10mM)和添加侧(bEnd.3侧),共培养时间(24小时)及移除insert后的观察时间(48小时)。
阅读提示:Methods:Cell treatment and co-culture;Figure 2C-D
体外轴突再生
微流控芯片型号(SND450),细胞接种密度,轴突切断时间,以及乳酸或α-CHCA的处理浓度和时间。
阅读提示:Methods:The axonal regenerative assay;Figure 5D-G
动物模型与AAV注射
小鼠品系、年龄、性别和体重(C57BL/6,8-10周,20-25g),SCI模型为T10严重挤压伤(5秒),AAV注射时间为SCI前两周,注射位点(T9,0.8mm和0.4mm深度),注射体积(0.5μl)和维持时间(5min)。
阅读提示:Methods:SCI models;Spinal injections for AAV
功能评估
BMS评分和LSS游泳测试的时间点(1、3、7、14、28 dpi)及评估人员数量(至少2名盲法观察者);电生理刺激参数(单脉冲,14V);BDA示踪的注射位点和剂量。
阅读提示:Methods:BMS score evaluation, LSS swimming test;Electrophysiology;Corticospinal tract tracing