Met-EVs的制备与表征
验证二甲双胍处理ADSCs能否增加含线粒体囊泡的分泌
用75μM二甲双胍处理P3 ADSCs 48小时,通过差速离心提取EVs,通过NTA、TEM、毛细管免疫分析、流式细胞术表征EVs的形态、大小、标志物及线粒体含量。
Hydrogel Microneedle Patches Loaded with Stem Cell Mitochondria-Enriched Microvesicles Boost the Chronic Wound Healing.
包含体外细胞模型(THP-1巨噬细胞、HaCAT、HFF、HUVECs)、动物模型(C57BL/6J小鼠)及蛋白组学分析,并进行功能验证(ATP、ROS、MMP)和机制验证(巨噬细胞极化)。
THP-1巨噬细胞 C57BL/6J小鼠皮肤辐射合并伤口模型 人表皮角质形成细胞(HaCAT) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)
二甲双胍浓度75μM处理ADSCs 48小时 X射线照射剂量2 Gy诱导巨噬细胞线粒体功能障碍 Met-EVs浓度1.0×10^8和3.0×10^8颗粒/mL DAM/HAMA水凝胶比例(0.8% DAM和10% HAMA)及交联条件(405nm可见光30秒) 小鼠模型:雌性C57BL/6J,10 Gy X射线照射,3天后创建全层皮肤伤口
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证二甲双胍处理ADSCs能否增加含线粒体囊泡的分泌
用75μM二甲双胍处理P3 ADSCs 48小时,通过差速离心提取EVs,通过NTA、TEM、毛细管免疫分析、流式细胞术表征EVs的形态、大小、标志物及线粒体含量。
分析Met-EVs与Ctrl-EVs的差异蛋白,探索二甲双胍对EVs蛋白组成的影响
通过4D无标记蛋白质组学分析,鉴定差异蛋白,并进行KEGG和GO富集分析。
评估Met-EVs在细胞水平上是否通过转移线粒体改善线粒体功能障碍
将X射线(2 Gy)照射的THP-1巨噬细胞与不同浓度的Met-EVs或Ctrl-EVs共培养,检测ATP、ROS和MMP变化;同时用共聚焦显微镜观察线粒体转移。
构建一种能持续释放Met-EVs的水凝胶微针贴片,并评估其生物相容性和释放特性
将Met-EVs混合到DAM/HAMA预凝胶中,通过UV交联制备微针贴片。通过SEM、CLSM观察EVs的加载,通过体外降解和释放实验评估其缓释性能;并通过细胞活力和动物皮下植入评估生物相容性。
评估Met-EVs@DAM/HAMA-MNP在辐射合并皮肤伤口小鼠模型中的治疗效果
建立C57BL/6J小鼠背部皮肤辐射合并伤口模型,分别用PBS、DAM/HAMA-MNP、Met-EVs@DAM/HAMA-MNP处理,记录伤口愈合曲线,并通过组织学染色、免疫荧光、ATP/ROS检测评估治疗效果。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 人脂肪干细胞培养基 | Cyagen | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| RPMI-1640培养基 | -- | -- | |
| 药物处理 | 吡格列酮 | -- | -- |
| EVs提取 | I型胶原酶 | -- | -- |
| 胰蛋白酶 | Gibco | -- | |
| 核酸酶 | HaiGene | -- | |
| EVs纯化 | 磷酸盐缓冲液 | -- | -- |
| EVs表征 | MitoTracker深红FM | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 抗CD44-PE-Cy7抗体 | -- | -- | |
| Annexin V-BV421 | -- | -- | |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| 水凝胶制备 | 甲基丙烯酰化透明质酸 | EFL | -- |
| 脱细胞脂肪基质 | -- | -- | |
| 胃蛋白酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| α-MEM培养基 | Gibco | -- | |
| 透明质酸酶 | EFL | -- | |
| I型胶原酶 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞实验 | 佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯 | -- | -- |
| Dil染料 | Beyotime | -- | |
| DAPI | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| CellRox试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| JC-1染色试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| ATP检测试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 分子生物学 | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| ReverTra Ace qPCR反转录预混液 | TOYOBO | -- | |
| SYBR Green实时荧光定量PCR预混液 | TOYOBO | -- | |
| 仪器设备 | ZetaView纳米颗粒追踪分析仪 | Particle Metrix | -- |
| 透射电子显微镜 | Hitachi | HT7800 | |
| 扫描电子显微镜 | Hitachi | Regulus 8100 | |
| 共聚焦激光扫描显微镜 | ZEISS | LSM 980 | |
| 流式细胞仪 | Luminex | Guava easyCyte | |
| 多功能酶标仪 | Molecular Devices | Spectramax M2e | |
| 材料测试系统 | Dongguan Lixian Instrument | HZ-1004 | |
| X射线机 | Rad Source Technologies | RS2000 | |
| 蛋白质组学 | Orbitrap Exploris 480质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| Met-EVs制备 | ADSCs代次(P3)、二甲双胍浓度(75μM)和处理时间(48小时)、EV提取方法(差速离心) 阅读提示:Methods: Isolation and Characterization of EVs |
| 体外细胞实验 | X射线照射剂量(2 Gy)、细胞类型(THP-1巨噬细胞)、Met-EVs浓度和处理时间 阅读提示:Methods: ATP Content Assay, ROS Content Assay, Cellular MMP Assay |
| 水凝胶制备 | DAM和HAMA浓度(0.8%和10%)、光交联条件(405nm可见光30秒)、Met-EVs终浓度(3×10^8 particles/mL) 阅读提示:Methods: Preparation of Met-EVs@DAM/HAMA-MNP |
| 动物实验 | 小鼠性别(雌性)、周龄(6-8周)、X射线剂量(10Gy)、伤口创建时间(照射后3天)、治疗时间(POD0、3、6) 阅读提示:Methods: Met-EVs@DAM/HAMA-MNP-Treated Mice with Irradiated Combined Skin Wounds |