负载干细胞线粒体富集微囊泡的水凝胶微针贴片促进慢性伤口愈合

Hydrogel Microneedle Patches Loaded with Stem Cell Mitochondria-Enriched Microvesicles Boost the Chronic Wound Healing.

作者信息Wen-De Yao, Jun-Nian Zhou, Chao Tang, Ju-Lei Zhang, Zhao-Yang Chen, Yan Li, Xiao-Jing Gong, Ming-Yi Qu, Quan Zeng, Ya-Li Jia, Hai-Yang Wang, Tao Fan, Jing Ren, Ling-Li Guo, Jia-Fei Xi, Xue-Tao Pei, Yan Han, Wen Yue
PMID39238258
期刊ACS Nano
发布时间2024-10-01
DOI10.1021/acsnano.4c06921

实验完整度

包含体外细胞模型(THP-1巨噬细胞、HaCAT、HFF、HUVECs)、动物模型(C57BL/6J小鼠)及蛋白组学分析,并进行功能验证(ATP、ROS、MMP)和机制验证(巨噬细胞极化)。

主要模型

THP-1巨噬细胞 C57BL/6J小鼠皮肤辐射合并伤口模型 人表皮角质形成细胞(HaCAT) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)

重点核对

二甲双胍浓度75μM处理ADSCs 48小时 X射线照射剂量2 Gy诱导巨噬细胞线粒体功能障碍 Met-EVs浓度1.0×10^8和3.0×10^8颗粒/mL DAM/HAMA水凝胶比例(0.8% DAM和10% HAMA)及交联条件(405nm可见光30秒) 小鼠模型:雌性C57BL/6J,10 Gy X射线照射,3天后创建全层皮肤伤口

摘要

摘要:挽救或补偿线粒体功能代表了一种有前景的辐射诱导慢性伤口治疗途径。成体干细胞的功能主要依赖于含线粒体的细胞外囊泡(EVs)的旁分泌。然而,针对线粒体数量和线粒体递送系统的有效治疗策略仍然缺乏。因此,在本研究中,我们旨在设计一种负载干细胞来源的富线粒体 EVs 的有效水凝胶微针贴片(MNP),以逐渐释放并将线粒体递送到伤口组织中,促进伤口愈合。我们首先使用二甲双胍增强线粒体生物发生,从而增加脂肪来源干细胞中含线粒体 EVs(称为“Met-EVs”)的分泌。为了验证 Met-EVs 的治疗效果,我们建立了 X 射线诱导的线粒体功能障碍的体外和体内模型。Met-EVs 通过转移活性线粒体,挽救线粒体膜电位,增加三磷酸腺苷水平,减少活性氧的产生,从而改善线粒体功能障碍。为了将 EVs 持续释放到受损组织中,我们构建了 Met-EVs@脱细胞脂肪基质(DAM)/甲基丙烯酰化透明质酸(HAMA)-MNP。Met-EVs@DAM/HAMA-MNP 可以负载并逐渐释放 Met-EVs 及其所含的线粒体到伤口组织中,以减轻线粒体功能障碍。此外,我们发现 Met-EVs@DAM/HAMA-MNP 可以显著促进巨噬细胞向具有抗炎和再生功能的 M2 亚型极化,从而促进皮肤伤口合并放射损伤的小鼠愈合过程。总之,我们成功构建了 EVs 递送系统 Met-EVs@DAM/HAMA-MNP,以有效递送干细胞来源的富线粒体 EVs。该系统的有效性已得到证实,在临床慢性伤口治疗中具有巨大潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何有效递送干细胞来源的富线粒体细胞外囊泡以治疗辐射诱导的慢性伤口?
核心机制
二甲双胍处理脂肪干细胞增强线粒体生物发生,增加含线粒体囊泡分泌;Met-EVs通过转移活性线粒体,改善受体细胞线粒体功能障碍,并促进巨噬细胞向M2表型极化。
主要证据
使用THP-1巨噬细胞和C57BL/6J小鼠模型,通过ATP、ROS、MMP检测及免疫荧光染色证实Met-EVs改善线粒体功能障碍并促进M2极化;蛋白组学分析显示线粒体代谢蛋白上调。
研究意义
该递送系统为慢性伤口治疗提供了新策略,具有临床转化潜力。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

Met-EVs的制备与表征

验证二甲双胍处理ADSCs能否增加含线粒体囊泡的分泌

用75μM二甲双胍处理P3 ADSCs 48小时,通过差速离心提取EVs,通过NTA、TEM、毛细管免疫分析、流式细胞术表征EVs的形态、大小、标志物及线粒体含量。

2

Met-EVs的蛋白质组学分析

分析Met-EVs与Ctrl-EVs的差异蛋白,探索二甲双胍对EVs蛋白组成的影响

通过4D无标记蛋白质组学分析,鉴定差异蛋白,并进行KEGG和GO富集分析。

3

体外验证Met-EVs改善X射线诱导的线粒体功能障碍

评估Met-EVs在细胞水平上是否通过转移线粒体改善线粒体功能障碍

将X射线(2 Gy)照射的THP-1巨噬细胞与不同浓度的Met-EVs或Ctrl-EVs共培养,检测ATP、ROS和MMP变化;同时用共聚焦显微镜观察线粒体转移。

4

制备并表征Met-EVs@DAM/HAMA-MNP

构建一种能持续释放Met-EVs的水凝胶微针贴片,并评估其生物相容性和释放特性

将Met-EVs混合到DAM/HAMA预凝胶中,通过UV交联制备微针贴片。通过SEM、CLSM观察EVs的加载,通过体外降解和释放实验评估其缓释性能;并通过细胞活力和动物皮下植入评估生物相容性。

5

体内验证Met-EVs@DAM/HAMA-MNP促进伤口愈合

评估Met-EVs@DAM/HAMA-MNP在辐射合并皮肤伤口小鼠模型中的治疗效果

建立C57BL/6J小鼠背部皮肤辐射合并伤口模型,分别用PBS、DAM/HAMA-MNP、Met-EVs@DAM/HAMA-MNP处理,记录伤口愈合曲线,并通过组织学染色、免疫荧光、ATP/ROS检测评估治疗效果。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
人脂肪干细胞培养基Cyagen--
胎牛血清----
DMEM培养基----
RPMI-1640培养基----
吡格列酮----
I型胶原酶----
胰蛋白酶Gibco--
核酸酶HaiGene--
磷酸盐缓冲液----
MitoTracker深红FMThermo Fisher Scientific--
抗CD44-PE-Cy7抗体----
Annexin V-BV421----
碘化丙啶----
甲基丙烯酰化透明质酸EFL--
脱细胞脂肪基质----
胃蛋白酶Sigma-Aldrich--
α-MEM培养基Gibco--
透明质酸酶EFL--
I型胶原酶Sigma-Aldrich--
佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯----
Dil染料Beyotime--
DAPIThermo Fisher Scientific--
CellRox试剂Thermo Fisher Scientific--
JC-1染色试剂盒Beyotime Biotechnology--
ATP检测试剂盒Beyotime Biotechnology--
Trizol试剂Invitrogen--
ReverTra Ace qPCR反转录预混液TOYOBO--
SYBR Green实时荧光定量PCR预混液TOYOBO--
ZetaView纳米颗粒追踪分析仪Particle Metrix--
透射电子显微镜HitachiHT7800
扫描电子显微镜HitachiRegulus 8100
共聚焦激光扫描显微镜ZEISSLSM 980
流式细胞仪LuminexGuava easyCyte
多功能酶标仪Molecular DevicesSpectramax M2e
材料测试系统Dongguan Lixian InstrumentHZ-1004
X射线机Rad Source TechnologiesRS2000
Orbitrap Exploris 480质谱仪Thermo Fisher Scientific--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
Met-EVs制备
ADSCs代次(P3)、二甲双胍浓度(75μM)和处理时间(48小时)、EV提取方法(差速离心)
阅读提示:Methods: Isolation and Characterization of EVs
体外细胞实验
X射线照射剂量(2 Gy)、细胞类型(THP-1巨噬细胞)、Met-EVs浓度和处理时间
阅读提示:Methods: ATP Content Assay, ROS Content Assay, Cellular MMP Assay
水凝胶制备
DAM和HAMA浓度(0.8%和10%)、光交联条件(405nm可见光30秒)、Met-EVs终浓度(3×10^8 particles/mL)
阅读提示:Methods: Preparation of Met-EVs@DAM/HAMA-MNP
动物实验
小鼠性别(雌性)、周龄(6-8周)、X射线剂量(10Gy)、伤口创建时间(照射后3天)、治疗时间(POD0、3、6)
阅读提示:Methods: Met-EVs@DAM/HAMA-MNP-Treated Mice with Irradiated Combined Skin Wounds