基因工程细菌的体内可编程声学操控

In-vivo programmable acoustic manipulation of genetically engineered bacteria.

作者信息Ye Yang, Yaozhang Yang, Dingyuan Liu, Yuanyuan Wang, Minqiao Lu, Qi Zhang, Jiqing Huang, Yongchuan Li, Teng Ma, Fei Yan, Hairong Zheng
PMID37280199
发布时间2023-06-06
DOI10.1038/s41467-023-38814-w

实验完整度

文献包含体外模型、活体小鼠模型和肿瘤模型等多个独立证据层级,并明确包含功能验证(声学操控)和机制验证(声辐射力计算与实验验证)。

主要模型

GVs@E. coli(基因工程大肠杆菌BL21) GVs@YB1(基因工程鼠伤寒沙门氏菌YB1) 小鼠背部皮肤褶皱窗室模型 4T1乳腺癌皮下移植瘤模型

重点核对

基因工程细菌诱导条件:0.5% L-阿拉伯糖和0.4 mM IPTG在30°C下诱导22小时(E. coli);50 μg/mL DAP和3 nM AHL诱导(YB1) 超声参数:3 MHz、64阵元(8×8)平面阵列,输入电压15V(体外)或20V(体内),占空比10%,焦点深度6mm 细菌浓度与剂量:体外实验200×10^7 cells/mL,体内注射125 μL或5×10^7 CFU 小鼠模型:BALB/c小鼠,背部皮肤褶皱窗室模型用于活体成像,4T1肿瘤模型(皮下注射5×10^5细胞) 治疗分组:PBS、US、E. coli+US、GVs@YB1、GVs@YB1+US,超声照射20分钟

摘要

声学镊子可以通过声波与物体之间的动量相互作用来控制目标的运动。该技术由于具有高组织穿透性和强声辐射力,在体内细胞操控方面比光镊更具优势。然而,正常细胞因其尺寸小且声阻抗与介质相似而难以进行声学操控。在本研究中,我们利用基因簇的异源表达来产生基因工程细菌,这些细菌能在细菌细胞质中产生大量亚微米级的气泡。我们发现,气泡的存在显著增强了工程细菌的声学敏感性,使其能够被超声波操控。我们发现,通过采用基于相控阵的声学镊子,工程细菌可以被捕获成团块,并在体外和体内通过电子操控的声束进行操控,从而实现活鼠血管中细菌的逆流或按需流动。此外,我们证明了利用该技术可以提高工程细菌在肿瘤中的聚集效率。这项研究为活细胞的体内操控提供了一个平台,这将促进基于细胞的生物医学应用的发展。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何实现对体内细胞的声学操控?
核心机制
通过异源表达基因簇在细菌内产生气泡,显著降低细菌平均密度并增加可压缩性,使声学对比度从+0.07变为-1.1,幅度增加约15倍,从而增强声辐射力(最大约63倍),使细菌能被声学镊子捕获和操控。
主要证据
体外实验显示GVs@E. coli可在焦点处聚集形成团簇,而对照细菌不能;体内实验显示GVs@E. coli可在小鼠血管中被捕获和操控,并可逆流或按需流动;肿瘤模型显示声学操控可提高细菌在肿瘤中的聚集效率,且GVs@YB1+US组肿瘤体积显著缩小(第21天平均360 mm³)并延长生存期(>45天)。
研究意义
本研究提供了在体内操控活细胞的平台,有望促进基于细胞的生物医学应用,如靶向药物递送、微生物诊断和细胞治疗等。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

基因工程细菌的构建与表征

构建可产生气泡的基因工程细菌并验证气泡表达

将来自鱼腥藻的gvpA和gvpC基因与巨大芽孢杆菌的gvpR-gvpU辅助基因组成的基因簇转入E. coli BL21和沙门氏菌YB1,用诱导剂表达气泡,并通过相差显微镜和透射电镜验证。

2

声学镊子系统开发与声场表征

设计并构建用于操控细菌的相控阵超声换能器,并表征其声场

设计并制作3 MHz、64阵元(8×8)二维平面阵列,使用IB算法和HAEFM生成聚焦和涡旋声场,用水听器扫描验证声压分布。

3

体外声学捕获与操控验证

验证GVs@E. coli能否被声学镊子捕获并沿预设轨迹操控

在硅胶管、PDMS空腔和培养皿中,使用不同参数(电压、占空比、浓度)测试捕获效率,并通过电子操控声束实现细菌团簇的可编程移动和涡旋展示。

4

体内声学捕获与操控

验证在活体血管中能否捕获和操控GVs@E. coli

将DiI标记的细菌经尾静脉注射到小鼠体内,使用背部皮肤褶皱窗室模型观察超声捕获和操控过程,测试不同血管直径和分叉血管。

5

肿瘤内细菌聚集与生物安全性评估

评估声学操控能否提高细菌在肿瘤中的聚集,并评估其生物安全性

建立4T1乳腺癌皮下移植瘤模型,注射DiR标记的GVs@E. coli后对肿瘤进行超声照射,通过IVIS成像、菌落计数、组织学染色评估细菌聚集;通过血常规、肝功能和组织H&E染色评估生物安全性。

6

肿瘤治疗实验

评估GVs@YB1结合超声操控的抗肿瘤效果

将荷瘤小鼠随机分为五组,进行治疗并监测肿瘤体积、体重和生存期。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
pET28a_T7-ARG1质粒Addgene106473
pDT103质粒Addgene106475
卡那霉素AladdinK103026
葡萄糖AladdinG116303
L-阿拉伯糖SigmaV900920
异丙基-β-D-硫代半乳糖苷YEASEN10902ES08
二氨基庚二酸SigmaD1377
N-(β-酮己酰基)-L-高丝氨酸内酯SigmaK0037
相差显微镜Olympus Corporation--
透射电子显微镜Hitachi--
PZT-5H压电陶瓷----
Epo-Tek 301环氧树脂Epoxy Technologies--
聚酰亚胺柔性电路----
Verasonics Vantage 256系统Verasonics Inc.--
COMSOL Multiphysics----
针式水听器Precision Acoustics Ltd.--
1,1'-二十八烷基-3,3,3',3'-四甲基吲哚菁高氯酸盐Beyotime BiotechnologyC1991S
倒置显微镜Olympus Corporation--
硅胶管----
PDMS空腔----
培养皿----
异氟烷----
气体麻醉机RWD Life Science Co., Ltd.--
钛板----
盖玻片窗口Citotest Scientific Co., Ltd.80340-1630
超声耦合剂----
磷酸盐缓冲液Gibco10010023
4T1乳腺癌细胞ProcellCL-0007
DiR(1,1'-二十八烷基-3,3,3',3'-四甲基吲哚三碳菁碘化物)InvitrogenD12731
LB琼脂平板----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
基因工程细菌制备
菌株和质粒:E. coli BL21 (A1)和pET28a_T7-ARG1;诱导条件:0.5% L-阿拉伯糖和0.4 mM IPTG,30°C 22小时;YB1使用pDT103,添加DAP和AHL
阅读提示:Methods部分“Preparation of GVs@E. coli and GVs@YB1”
超声阵列与声场参数
阵列规格:3 MHz,64阵元(8×8),孔径6mm,间距0.75mm;焦点深度6mm;体外电压15V,体内20V,占空比10%
阅读提示:Methods部分“Development of 2D planar ultrasound array”和“Formation and characterisation of the acoustic field”
体外声学操控
细菌浓度:200×10^7 cells/mL;荧光标记:DiI;硅胶管内径500μm,PDMS腔宽500μm,培养皿直径10cm;操控速度约12 μm/s
阅读提示:Methods部分“System integration for in vitro experiments”和Results部分“In vitro programmable acoustic manipulation of GVs@E. coli”
体内声学操控
小鼠品系和年龄:雌性BALB/c,18-20g,6-8周;细菌剂量:125μL(200×10^7 CFU/mL);血管直径范围110-200μm;观察窗室模型构建
阅读提示:Methods部分“In vivo manipulation experiment setup”和Results部分“In vivo acoustic trapping of GVs@E. coli”
肿瘤模型与治疗
肿瘤细胞:4T1(5×10^5)皮下接种;治疗分组;超声照射时间20分钟;肿瘤体积测量频率;细菌剂量5×10^7 CFU
阅读提示:Methods部分“Establishment of tumour model and tumour treatment”和Results部分“Acoustic aggregation of GVs@YB1 for tumour therapy”