基于CRISPR/CasRx的RNA敲降靶向β-catenin和Ihh信号可减轻骨关节炎

CRISPR/CasRx-mediated RNA knockdown targeting β-catenin and Ihh signaling alleviates osteoarthritis.

作者信息Xingyun Huang, Jiamin Yu, Shixue Gou, Hongyu Qin, William W Lu, Zhen Li, Liping Tong, Di Chen
PMID40290123
期刊Genes Dis
发布时间2024-11-16
DOI10.1016/j.gendis.2024.101468

实验完整度

包含体外细胞实验、RNA测序脱靶分析、DMM小鼠模型、显微CT和组织学分析等多个独立证据层级,并有明确的功能和机制验证。

主要模型

NIH 3T3细胞系 DMM手术诱导的OA小鼠模型 C57BL/6J小鼠

重点核对

靶基因Ctnnb1和Smo的敲降效率(文中明确为C3C7、S9S10或S9C7组合,效率数据如图1、图3所示) crRNA序列及其组合方式(C3+C7、S9+S10、S9+C7) AAV5注射剂量和时间(8 μL,DMM术后10天注射,治疗3个月) DMM手术及假手术分组 检测指标和统计方法(OARSI评分、骨赘大小/体积、Col2a1等,统计详见各图注)

摘要

骨关节炎是一种慢性退行性关节疾病。目前,骨关节炎无法治愈。经典Wnt/β-catenin或印度刺猬信号通路的异常激活可导致OA的发生和发展。本研究旨在确定靶向β-catenin和Ihh信号是否能为OA疾病提供有效的治疗干预。CRISPR/CasRx是一种新的RNA干扰工具,可以精确高效地切割单链RNA。在本研究中,我们在体外筛选了靶向Ctnnb1和Smo的CRISPR衍生RNA,并针对每个基因选择了两个最佳crRNA。CasRx介导的Ctnnb1和Smo敲降在体外表现出高效率和特异性,无明显脱靶效应。然后,我们将携带所选crRNA的腺相关病毒通过关节内注射注入OA小鼠模型。通过Micro-CT、组织学和骨组织形态计量学分析来评估CasRx方法治疗OA的效果。我们发现Ctnnb1和Smo的敲降减缓了实验性OA小鼠模型膝关节的病理损伤。我们的研究结果表明,CasRx介导的Ctnnb1和Smo敲降可能是治疗OA的潜在策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
同时靶向Wnt/β-catenin和Ihh信号通路是否能通过CRISPR/CasRx介导的RNA敲降治疗骨关节炎?
核心机制
通过CasRx敲降Ctnnb1和Smo抑制Wnt/β-catenin和Ihh信号通路,从而减缓OA进展。
主要证据
在NIH 3T3细胞中验证了敲降效率和无明显脱靶效应;在DMM诱导的OA小鼠模型中,关节内注射AAV5-CasRx-S9C7显著降低了OARSI评分、骨赘大小和体积,并上调Col2a1表达。
研究意义
本研究提示CRISPR/CasRx介导的RNA编辑可能成为治疗骨关节炎的潜在策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

crRNA筛选与体外敲降效率验证

筛选能够高效敲降Ctnnb1和Smo的crRNA。

设计了20个靶向Ctnnb1或Smo的crRNA并与CasRx-GFP共转染NIH 3T3细胞,48小时后分选GFP阳性细胞,通过定量PCR检测靶基因mRNA水平。

2

脱靶效应评估

评估CasRx介导的敲降是否具有明显的crRNA依赖性脱靶效应。

对转染CasRx-C3C7、CasRx-S9S10或CasRx-S9C7的GFP阳性NIH 3T3细胞进行RNA测序,分析潜在脱靶基因的表达变化。

3

AAV5载体构建与生产

构建用于体内递送CasRx和crRNA的AAV5载体。

构建含有U6启动子驱动的crRNA和EFS启动子驱动的CasRx的AAV5质粒,由PackGene Biotech生产AAV5病毒。

4

DMM手术与AAV5关节内注射

建立OA小鼠模型并进行基因治疗干预。

对12周龄雄性C57BL/6J小鼠进行DMM手术,术后10天关节内注射AAV5病毒,治疗3个月后取材分析。

5

关节损伤评估

评估CasRx介导的基因敲降对OA小鼠关节损伤的影响。

通过Micro-CT、组织学染色(番红O/快绿)、免疫组化(Col2a1、MMP13、Adamts5、Ctnnb1、Smo)和免疫荧光(CGRP)等方法评估关节损伤和相关分子表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
BbsI限制性内切酶Thermo Fisher Scientific--
HindIII限制性内切酶Thermo Fisher Scientific--
Solution ITakara--
ClonExpress MultiS一步克隆试剂盒Vazyme--
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Procell--
青霉素/链霉素Gibco--
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
BD FACSAria III流式细胞分选仪BD--
RNAiso Plus试剂TaKaRa--
ReverTra Ace qPCR RT Master Mix(含gDNA去除剂)TOYOBO--
AceQ qPCR SYBR Green Master MixVazyme--
QuantStudio 3实时荧光定量PCR系统Thermo Fisher Scientific--
OCT包埋剂Sakura--
Leica CM1950冷冻切片机Leica--
牛血清白蛋白Beyotime--
Triton X-100Beyotime--
VECTASHIELD含DAPI封片剂Vector Laboratories--
Olympus VS120显微镜Olympus--
VECTASTAIN Elite ABC试剂盒Vector Laboratories--
ImmPACT DAB过氧化物酶底物Vector Laboratories--
Zeiss Axioscan显微镜Zeiss--
NEMO Micro-CT扫描仪Pingsheng Healthcare Shanghai Inc--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞实验
细胞系(NIH 3T3)、转染质粒量(1 μg crRNA + 2 μg CasRx-GFP或4 μg pre-crRNA-CasRx-GFP)、转染试剂、培养条件、转染后检测时间(48小时)
阅读提示:Materials and methods – Cell culture and transfection;Results 1.1
脱靶分析
RNA测序流程、比对参数(mm10)、潜在脱靶预测方法(最多5个错配)
阅读提示:Materials and methods – RNA sequencing analysis;Results 1.2
动物实验
小鼠品系、性别、年龄、DMM手术方法、AAV5注射剂量(8 μL)、注射时间(DMM后10天)、治疗周期(3个月)
阅读提示:Materials and methods – Animals;Results 1.3
关节损伤评估
样本固定、脱钙、切片厚度、染色方法、OARSI评分、骨赘大小/体积测量方法、样本量
阅读提示:Materials and methods – Histological analysis;Results 1.4
统计方法
统计检验方法(t检验、单/双因素方差分析及事后检验)、显著性水平(P < 0.05)
阅读提示:Materials and methods – Statistical analysis