BMSCs来源的外泌体通过AMPK-mTOR信号通路增强Leydig细胞自噬,改善环磷酰胺诱导的睾酮缺乏

Exosomes derived from BMSCs ameliorate cyclophosphamide-induced testosterone deficiency by enhancing the autophagy of Leydig cells via the AMPK-mTOR signaling pathway.

作者信息Hao-Yu Liang, Fan Peng, Min-Jia Pan, Sen-Lin Liao, Cun Wei, Guan-Yang Wei, Xiao Xie, Kang-Yi Xue, Ming-Kun Chen, Jian-Kun Yang, Wen-Bin Guo, Cun-Dong Liu, Qi-Zhao Zhou
PMID36537377
发布时间2023
DOI10.4103/aja202286

实验完整度

包含体内小鼠模型和体外TM3细胞实验,通过免疫荧光、Western blot、qPCR和ELISA验证自噬和睾酮合成,并使用3-MA抑制剂进行功能验证,证据层级完整。

主要模型

C57BL/6小鼠CPTD模型 TM3小鼠Leydig细胞 BMSCs来源的外泌体

重点核对

CP剂量:50 mg/kg/天,腹腔注射7天 BMSCs-exos剂量:100 μg/ml,0.1 ml/天,静脉注射7天 3-MA剂量:15 mg/kg/天,腹腔注射7天 体外CP浓度:20 μg/ml处理TM3细胞24小时 体外BMSCs-exos浓度:100 μg/ml处理24小时

摘要

癌症和自身免疫性疾病治疗过程中环磷酰胺诱导的睾酮缺乏(CPTD)严重影响患者的生活质量。目前,一些指南推荐CPTD患者接受睾酮替代治疗(TRT)。然而,TRT有许多缺点,强调需要替代、无毒的治療策略。我们之前报道骨髓间充质干细胞来源的外泌体(BMSCs-exos)可以减轻环磷酰胺(CP)诱导的精子发生功能障碍,强调其在男性生殖疾病治疗中的作用。因此,我们进一步研究了BMSCs-exos是否影响Leydig细胞(LCs)的自噬和睾酮合成。在这里,我们通过检测与自噬和睾酮合成相关基因和蛋白的表达水平,在体内和体外研究了BMSCs-exos对CPTD的作用并探讨其分子机制。此外,还测量了血清和细胞条件培养基中的睾酮浓度,以及腺苷酸活化蛋白激酶(AMPK)和哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)的磷酸化蛋白水平。我们的结果表明,BMSCs-exos可以通过小鼠血睾屏障被LCs吸收,促进LCs自噬并改善CP诱导的低血清睾酮水平。BMSCs-exos抑制CP暴露的LCs细胞死亡,调节AMPK-mTOR信号通路促进LCs自噬,进而改善CP诱导的LCs低睾酮合成能力。此外,自噬抑制剂3-甲基腺嘌呤(3-MA)显著逆转了BMSCs-exos的治疗效果。这些发现表明,BMSCs-exos通过调节AMPK-mTOR信号通路促进LC自噬,从而改善CPTD。本研究为使用BMSCs-exos临床改善CPTD提供了新证据。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
BMSCs-exos是否能通过调节Leydig细胞自噬改善环磷酰胺诱导的睾酮缺乏及其分子机制。
核心机制
BMSCs-exos通过激活AMPK-mTOR信号通路(上调p-AMPK、下调p-mTOR)促进Leydig细胞自噬,从而改善环磷酰胺诱导的低睾酮合成。
主要证据
体内外实验表明,BMSCs-exos显著逆转CP引起的LC3、Beclin-1下降和p62升高,提高StAR和CYP11A1表达及睾酮水平,且自噬抑制剂3-MA可逆转这些效应。
研究意义
本研究为BMSCs-exos作为CPTD的临床治疗策略提供了新证据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

BMSCs和BMSCs-exos的分离与鉴定

确认BMSCs和BMSCs-exos的纯度与特性,为后续实验提供合格的研究材料。

分离小鼠骨髓间充质干细胞,通过成骨、成脂分化鉴定多向分化能力,流式细胞术检测表面标志物;通过超速离心提取BMSCs-exos,并用TEM观察形态、NTA分析粒径、Western blot检测标志蛋白CD63、TSG101和calnexin。

2

体内CPTD模型建立及BMSCs-exos效果验证

评估BMSCs-exos对CP诱导的睾酮缺乏的改善作用及其对Leydig细胞自噬的影响。

C57BL/6小鼠分为4组:对照组、CP组、CP+BMSCs-exos组、CP+BMSCs-exos+3-MA组。免疫荧光检测LC3和3β-HSD表达,ELISA检测血清睾酮水平。

3

体外CP损伤模型建立及BMSCs-exos细胞保护作用验证

确定最佳CP损伤浓度和BMSCs-exos保护浓度,验证BMSCs-exos对CP诱导的TM3细胞死亡的保护作用。

TM3细胞暴露于不同浓度CP(0-40 μg/ml)24小时,CCK-8检测细胞活力以确定最佳CP浓度;随后用不同浓度BMSCs-exos(0-200 μg/ml)处理,选择最佳保护浓度。流式细胞术检测细胞凋亡,Western blot检测Bcl-2和Bax蛋白表达。

4

BMSCs-exos对自噬的影响

验证BMSCs-exos是否通过增强Leydig细胞自噬来改善CP诱导的损伤。

在CP暴露的TM3细胞中,加入BMSCs-exos和/或3-MA,采用qPCR和Western blot检测LC3、Beclin-1、p62表达,免疫荧光检测LC3荧光强度。

5

BMSCs-exos对睾酮合成的影响

检验BMSCs-exos能否恢复CP抑制的睾酮合成能力。

检测TM3细胞中StAR和CYP11A1的mRNA和蛋白表达,并利用ELISA检测条件培养基中睾酮浓度。

6

BMSCs-exos对AMPK-mTOR信号通路的调节

探索BMSCs-exos增强自噬的分子机制。

Western blot检测p-AMPK、AMPK、p-mTOR、mTOR蛋白表达水平,验证BMSCs-exos对AMPK-mTOR通路的激活作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证细胞功能变化
验证分子表达变化
验证免疫效应
验证机制链路
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM完全培养基Procell--
胎牛血清Gibco--
青霉素-链霉素Gibco--
胰蛋白酶-EDTAGibco--
环磷酰胺GLPBIO--
3-甲基腺嘌呤----
外泌体提取试剂盒----
PKH-67(绿色荧光染料)Sigma--
鬼笔环肽Sigma--
DAPI(4',6-二脒基-2-苯基吲哚)Sigma--
CCK-8试剂盒Fude Biotechnology--
RIPA裂解液Biosharp--
蛋白酶抑制剂混合物APExBIO--
磷酸酶抑制剂混合物APExBIO--
BCA蛋白定量试剂盒Meilunbio--
PVDF膜Biosharp--
牛血清白蛋白Elabscience--
ECL检测试剂NCM Biotech--
抗LC3抗体Abcam--
抗3β-HSD抗体Santa Cruz Biotechnology--
FITC标记的二抗Bioss--
睾酮ELISA试剂盒Mlbio--
TRIzol试剂Invitrogen--
反转录试剂盒Vazyme--
SYBR qPCR预混液Vazyme--
酶标仪BioTek--
StepOnePlus实时荧光定量PCR仪ABI--
透射电子显微镜Philips-Tecnal--
ZetaView纳米颗粒分析仪Particle Metrix--
倒置显微镜Olympus--
SPSS 20.0SPSS Inc.--
GraphPad Prism 8GraphPad Software Inc.--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
C57BL/6小鼠周龄、性别、体重、饲养环境、CP给药途径、剂量、频率、时间、BMSCs-exos给药途径、剂量、频率、时间、3-MA给药途径、剂量、频率、时间、对照组设置、样本量、安乐死时间
阅读提示:MATERIALS AND METHODS: Animal and animal ethics
细胞培养与处理
TM3细胞来源、培养基、培养条件、CP处理浓度、时间、BMSCs-exos处理浓度、时间、3-MA处理浓度、时间、对照组设置
阅读提示:MATERIALS AND METHODS: TM3 mouse Leydig cells, Cell Culture and Drug Treatment
外泌体提取与鉴定
BMSCs培养条件、外泌体提取方法、粒径范围、表面标志物
阅读提示:MATERIALS AND METHODS: Isolation and identification of BMSCs-exos
自噬检测
LC3、Beclin-1、p62的mRNA和蛋白表达检测方法、抗体稀释度、曝光时间、内参选择
阅读提示:MATERIALS AND METHODS: Quantitative real-time PCR, Western blot, Immunofluorescence staining
睾酮检测
血清和细胞培养基睾酮检测方法、ELISA试剂盒、样本处理、标准曲线、重复数
阅读提示:MATERIALS AND METHODS: Testosterone measurement