建立糖尿病血管钙化小鼠模型
评估EX4对糖尿病小鼠血管钙化的影响
C57BL/6小鼠经HFD喂养3周后腹腔注射STZ建立T2DM模型,随后注射VD2诱导血管钙化,并给予EX4或PBS处理,于第9周处死取材。
Glucagon-like peptide-1 receptor agonist exendin 4 ameliorates diabetes-associated vascular calcification by regulating mitophagy through the AMPK signaling pathway.
包含体外细胞模型(HASMC)、体内小鼠模型(T2DM+VC),并进行了功能验证(EX4抑制成骨分化)和机制验证(AMPK通路、线粒体自噬)。
人主动脉平滑肌细胞(HASMC) T2DM血管钙化小鼠模型(HFD+STZ+VD2) AAV9介导AMPKα1敲低的糖尿病小鼠
HASMC用10 mM β-GP和30 mM HG处理14天 EX4浓度100 nM处理14天 小鼠模型:HFD喂养3周后STZ注射(40 mg/kg/天×5天),随后VD2皮下注射(5 µL/g×2天),EX4腹腔注射(24 nmol/kg/天×26天) AMPKα1敲低使用siRNA(体外)和AAV9(体内)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估EX4对糖尿病小鼠血管钙化的影响
C57BL/6小鼠经HFD喂养3周后腹腔注射STZ建立T2DM模型,随后注射VD2诱导血管钙化,并给予EX4或PBS处理,于第9周处死取材。
验证EX4对血管钙化的治疗效果
通过ALP活性测定、Von Kossa和ARS染色检测主动脉组织钙化程度。
验证EX4对成骨分化的影响
HASMC用β-GP和高糖处理诱导成骨分化,并给予EX4处理,检测钙沉积和成骨标志物。
评估EX4对线粒体自噬的影响
通过TMRM和MitoSOX检测线粒体功能,TEM观察线粒体自噬体形成和融合,Western blot检测LC3B和p62水平。
验证EX4是否通过AMPK通路促进线粒体自噬
敲低AMPKα1后,检测ULK1磷酸化、LC3B/p62水平以及线粒体-溶酶体共定位,并评估对成骨分化和体内钙化的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型建立 | 链脲佐菌素 | MedChemExpress | HY-13,753 |
| 维生素D2 | -- | -- | |
| 艾塞那肽4 | MedChemExpress | HY-13,443 | |
| 细胞培养 | 人主动脉平滑肌细胞完全培养基 | Procell Technology | CM-H081 |
| β-甘油磷酸 | -- | -- | |
| 高糖 | -- | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine RNAiMAX | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Opti-MEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| 山羊抗兔IgG H&L HRP | Abcam | ab6721 | |
| 化学发光HRP底物 | Bio-Rad | -- | |
| Tanon5200成像系统 | Biotanon | -- | |
| 抗RUNX2抗体 | Proteintech | 20700-1-AP | |
| 抗BMP2抗体 | Proteintech | 15544-1-AP | |
| 抗LC3B抗体 | Proteintech | 14600-1-AP | |
| 抗p62抗体 | Abcam | ab109012 | |
| 抗PINK1抗体 | Proteintech | 23274-1-AP | |
| 抗Parkin抗体 | Proteintech | 14060-1-AP | |
| 抗pAMPKα (T172)抗体 | Abcam | ab133448 | |
| 抗AMPKα抗体 | Abcam | ab32047 | |
| 抗pULK1 (S555)抗体 | Cell Signaling Technology | 5869 | |
| 抗ULK1抗体 | Abcam | ab167139 | |
| 线粒体功能检测 | 四甲基罗丹明甲酯 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| MitoSOX Red | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 组织染色 | 钙染色试剂盒(Von Kossa法) | Solarbio Life Sciences | G3282 |
| 茜素红S溶液 | Solarbio Life Sciences | G1450 | |
| 免疫荧光 | 抗GLP-1R抗体 | Abcam | ab218532 |
| AlexaFluor488山羊抗兔二抗 | Abcam | ab150077 | |
| 抗α-SMA抗体 | Proteintech | 67735-1-Ig | |
| AlexaFluor647山羊抗小鼠二抗 | Abcam | ab150115 | |
| DAPI | -- | -- | |
| Tomm20抗体 | Abcam | ab283317 | |
| LAMP1抗体 | Abcam | ab62562 | |
| 组织固定和切片 | Triton X-100 | -- | -- |
| 电子显微镜 | 柠檬酸铅 | -- | -- |
| 醋酸铀酰 | -- | -- | |
| Leica Ultracut R超薄切片机 | Leica | -- | |
| JEM-1230透射电子显微镜 | JEOL | -- | |
| 线粒体分离 | 组织线粒体分离试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 89801 |
| 培养细胞线粒体分离试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 89874 | |
| 细胞培养 | 人主动脉平滑肌细胞系 | Procell Technology | CP-H081 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 糖尿病小鼠模型 | 小鼠品系和年龄:C57BL/6,6-7周龄;HFD喂养时间:3周;STZ剂量和注射方式:40 mg/kg/天腹腔注射×5天;VD2剂量和注射方式:5 µL/g皮下注射×2天;EX4剂量和注射方式:24 nmol/kg/天腹腔注射×26天;分组和样本量:对照组、DM、DVC、DVC+EX4各n=5。 阅读提示:见Materials and methods: Establishment of VC with diabetic mouse |
| 细胞成骨分化诱导 | HASMC来源:Procell Technology;培养基:HASMC完全培养基;诱导条件:10 mM β-GP和30 mM高糖,处理14天;EX4浓度:100 nM。 阅读提示:见Materials and methods: Human aortic smooth muscle cell (HASMC) culture and induction of osteogenic differentiation |
| AMPKα1敲低 | siRNA序列和转染试剂:RiboBio Technology,Lipofectamine RNAiMAX;转染时间:48小时;AAV9载体注射剂量:1011 vector genome copies/mouse,尾静脉注射,在VD2注射前一天给予。 阅读提示:见Materials and methods: Knockdown of GLP-1R in HASMCs 和 Knockdown of AMPKα1 in vivo |
| 线粒体自噬评估 | TMRM和MitoSOX浓度及孵育时间:文中未明确说明;TEM样品制备:2.5%戊二醛固定,1%锇酸后固定,丙酮梯度脱水,Araldite包埋;线粒体分离试剂盒型号:组织89801,细胞89874。 阅读提示:见Materials and methods: Mitochondrial function test, Transmission electron microscopy (TEM), Mitochondrial fraction protein extraction |