BMSCs的分离、培养与鉴定
确认所培养细胞具备间充质干细胞特性
从Procell获得大鼠原代BMSCs,培养至P3,通过多向分化诱导(成脂、成骨、成软骨)和表面标志物流式检测进行鉴定
Overexpressed miR-486 in bone marrow mesenchymal stem cells represses urethral fibrosis and targets Col13a1 in urethral stricture rats.
包含体外细胞共培养、体内大鼠模型、双荧光素酶报告基因验证、组织学和尿动力学检测等多层级功能与机制验证。
大鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs) 尿道成纤维细胞(UFs) TGF-β1诱导的尿道狭窄大鼠模型
BMSCs的鉴定:多向分化(成脂、成骨、成软骨)和表面标志物(CD44、CD90阳性,CD34、CD11b阴性) Transwell共培养系统(0.4 μm孔径)用于BMSCs与UFs共培养 LV-miR-486转导BMSCs后miR-486过表达效率确认 TGF-β1浓度:10 ng/mL处理UFs 尿道狭窄大鼠模型:TGF-β1(1 μg)注射尿道壁,并做部分切口
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确认所培养细胞具备间充质干细胞特性
从Procell获得大鼠原代BMSCs,培养至P3,通过多向分化诱导(成脂、成骨、成软骨)和表面标志物流式检测进行鉴定
建立稳定过表达miR-486的BMSCs
用携带miR-486的慢病毒载体(GV309, GFP标记)转导BMSCs,空载体作为阴性对照,通过RT-qPCR验证过表达效率
检测miR-486过表达BMSCs对TGF-β1诱导的UFs纤维化的影响
使用Transwell系统(0.4 μm孔径)将BMSCs与UFs共培养,UFs用10 ng/mL TGF-β1刺激,24小时后收集UFs分析纤维化标志物表达
验证miR-486与Col13a1 3'UTR的结合关系
将Col13a1 3'UTR野生型或突变型序列克隆至pmirGLO载体,与LV-NC或LV-miR-486共转染至UFs,48小时后检测荧光素酶活性
评估miR-486过表达BMSCs在体内的治疗效果
将40只SD大鼠随机分为四组:sham、US、US+BMSC-NC、US+BMSC-miR-486。通过尿道壁注射TGF-β1和制作切口建立US模型,随后移植BMSCs,4周后进行尿动力学评估和组织学分析
评估尿道组织病理变化和胶原沉积
取阴茎中轴组织进行H&E、Masson三色染色,以及vWF和α-SMA免疫荧光染色,评估纤维化程度和上皮及肌肉层形成
评估尿道狭窄的功能改变
对大鼠进行膀胱测压,记录排尿量和流动压力
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 完全培养基 | Procell | -- |
| DMEM培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 成骨分化培养基 | Procell | -- | |
| 成脂分化培养基 | Procell | -- | |
| 成软骨分化培养基 | Procell | -- | |
| 细胞染色 | 茜素红S | Solarbio | -- |
| 油红O | Solarbio | -- | |
| 阿尔辛蓝 | Solarbio | -- | |
| 流式分析 | CD34-PE抗体 | -- | -- |
| CD44-FITC抗体 | -- | -- | |
| CD90-FITC抗体 | -- | -- | |
| CD11b-PE抗体 | -- | -- | |
| 基因转导 | GV309载体 | GeneChem | -- |
| 细胞共培养 | Transwell系统 | Corning Inc. | -- |
| 荧光素酶报告基因 | pmirGLO载体 | Promega | -- |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 荧光素酶检测 | 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- |
| 动物模型 | 人重组TGF-β1 | Abcam | -- |
| 组织学染色 | Masson三色染色试剂盒 | Solarbio | -- |
| 免疫荧光 | 抗α-SMA抗体 | Abcam | ab124964 |
| 抗vWF抗体 | Abcam | ab6994 | |
| 山羊抗兔IgG H&L (Alexa Fluor 488)预吸附二抗 | Abcam | ab150081 | |
| DAPI | Solarbio | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| cDNA合成 | iScript cDNA合成试剂盒 | Bio-Rad | -- |
| RT-qPCR | SYBR Premix Ex Taq | Takara | -- |
| StepOnePlus实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems | -- | |
| 蛋白质提取 | RIPA裂解液 | Solarbio | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- |
| Western blotting | PVDF膜 | Beyotime | -- |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | Abcam | ab7090 | |
| 增强化学发光试剂盒 | Solarbio | -- | |
| 免疫荧光(组织) | 抗GFP抗体 | Abcam | ab183734 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| BMSCs培养与鉴定 | BMSCs来源、培养条件(37°C、5% CO2)、传代代数(P3)、表面标志物表达 阅读提示:Materials and Methods: Culture, identification, and transfection of BMSCs; Results 3.1 |
| 慢病毒转导 | 慢病毒载体(GV309)、转导效率、miR-486过表达验证 阅读提示:Materials and Methods: Culture, identification, and transfection of BMSCs; Results 3.2 |
| 体外共培养 | Transwell孔径(0.4 μm)、共培养时间(24小时)、TGF-β1浓度(10 ng/mL) 阅读提示:Materials and Methods: Cell coculture; Results 3.2 |
| 荧光素酶报告基因 | 载体(pmirGLO)、共转染试剂(Lipofectamine 3000)、检测时间(48小时)、结合位点突变 阅读提示:Materials and Methods: Luciferase reporter assay; Results 3.3 |
| 动物模型 | 大鼠品系、周龄、体重、分组(4组,每组10只)、TGF-β1剂量(1 μg/100 μL)、BMSCs移植量(1×10^6/200 μL)、移植时间(TGF-β1注射后第二天) 阅读提示:Materials and Methods: Animal models; Results 3.4 |
| 尿动力学评估 | 麻醉方式、导管植入位置、测压时间(移植后4周)、参数(排尿量、流动压力) 阅读提示:Materials and Methods: In vivo functional evaluation |
| 组织学分析 | 固定液(4% PFA)、切片厚度(5 μm)、染色方法(H&E、Masson)、评分标准 阅读提示:Materials and Methods: Histological analysis; Results 3.4 |
| RT-qPCR和Western blotting | 引物序列(见表1)、内参(U6或GAPDH)、蛋白上样量(20 μg)、抗体来源和稀释比例 阅读提示:Materials and Methods: Real time quantitative polymerase chain reaction; Western blotting; 表1 |