miR-489-3p过表达通过抑制HER2/PI3K/AKT/Snail信号通路抑制非小细胞肺癌细胞增殖和迁移

Overexpression of mir-489-3p inhibits proliferation and migration of non-small cell lung cancer cells by suppressing the HER2/PI3K/AKT/Snail signaling pathway.

作者信息Di Cheng, Zhong Liu, Renren Sun, Yun Jiang, Zhaoming Zeng, Rui Zhao, Zhongcheng Mo
PMID39224367
期刊Heliyon
发布时间2024-08-06
DOI10.1016/j.heliyon.2024.e35832

实验完整度

包含体外细胞实验(A549细胞转染、miRNA mimics/inhibitor、wortmannin处理、MTT、划痕、集落实验),以及临床组织样本分析(IHC、HE染色、生存分析),但缺少体内动物模型验证。

主要模型

A549细胞系 人肺腺癌组织及癌旁组织

重点核对

miR-489-3p mimics/inhibitor转染浓度及效率 wortmannin处理浓度(1μM)及时间 A549细胞培养条件(Ham's F-12K培养基,10% FBS,37°C,5% CO2) MTT检测时间点(0、12、24、48、72小时) 划痕愈合实验检测时间点(0、12、24、36小时)

摘要

肺癌是一种高度流行的恶性肿瘤,具有显著的发病率和死亡率。MiR-489-3p是一种微小RNA,已被确定为肿瘤细胞增殖和侵袭的调节因子。其在非小细胞肺癌(NSCLC)中表达下调。阐明miR-489-3p在NSCLC发病机制中的分子机制对于确定潜在的诊断和治疗靶点至关重要。为研究miR-489-3p在NSCLC中的分子机制,本研究使用常用的NSCLC细胞系A549。将miR-489-3p模拟物和抑制剂转染至A549细胞。此外,使用PI3K/AKT通路抑制剂渥曼青霉素进行共转染实验。通过Western blotting和定量实时PCR(qRT-PCR)分析miR-489-3p及相关蛋白的表达。分别通过划痕愈合和集落形成实验评估细胞迁移和增殖。miR-489-3p的过表达显著抑制A549细胞的增殖和迁移。与渥曼青霉素共转染后,这种抑制作用进一步增强。对人肺标本的分析显示,与相邻非癌组织相比,肺腺癌组织中HER2、PI3K和AKT的表达增加。这些发现表明miR-489-3p过表达可能通过抑制HER2/PI3K/AKT/Snail信号通路抑制NSCLC细胞增殖和迁移。本研究阐明了miR-489-3p在NSCLC中的分子机制,并为确定早期诊断标志物和新型治疗靶点提供了实验基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
miR-489-3p在非小细胞肺癌中的表达及其对细胞增殖和迁移的影响和潜在分子机制是什么?
核心机制
miR-489-3p可能通过抑制HER2/PI3K/AKT/Snail信号通路来抑制NSCLC细胞的增殖和迁移。
主要证据
体外实验显示,miR-489-3p mimics抑制A549细胞增殖和迁移,而miR-489-3p inhibitor则相反;组织样本IHC显示LUAD组织中HER2、PI3K和AKT表达上调。
研究意义
可能为NSCLC的早期诊断标志物和新型治疗靶点提供实验基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

细胞培养与转染

建立miR-489-3p过表达和敲低的A549细胞模型

将miR-489-3p mimics、inhibitor及其阴性对照转染至A549细胞,验证转染效率。

2

检测miR-489-3p表达及细胞活力

评估miR-489-3p对A549细胞活力的影响

通过qRT-PCR检测miR-489-3p表达,通过MTT法检测细胞活力。

3

检测蛋白表达

验证miR-489-3p对HER2和Snail蛋白水平的影响

通过Western blotting检测HER2和Snail蛋白表达。

4

细胞功能实验

评估miR-489-3p对细胞增殖和迁移的影响

使用集落形成实验检测增殖能力,使用划痕愈合实验检测迁移能力。

5

PI3K抑制实验

验证miR-489-3p是否通过PI3K/AKT通路发挥功能

用wortmannin抑制PI3K,并与miR-489-3p mimics共处理,检测细胞活力、增殖、迁移和Snail表达。

6

临床样本分析

观察LUAD组织中HER2/PI3K/AKT的表达

对180例样本进行生存分析、HE染色和免疫组化染色。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

细胞活性检测
细胞增殖检测
细胞迁移检测
基因及蛋白表达检测

产品清单

实验环节名称品牌货号
Ham's F-12K培养基ProcellPM150910
胎牛血清Sijiqing--
miR-489-3p模拟物GenePharma--
miR-NC模拟物GenePharma--
miR-489-3p抑制剂GenePharma--
miR-NC抑制剂GenePharma--
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen; Thermo Fisher Scientific--
MTTSolarbioM8180
二甲基亚砜----
TRIzol试剂Invitrogen; Thermo Fisher Scientific--
NanoDrop 2000分光光度计Thermo Fisher Scientific--
Hairpin-it miRNA和U6一步法qRT-PCR探针试剂盒GenePharma--
RIPA裂解液Sigma-Aldrich; Merck KGaA--
抗HER2抗体HUABIOER0106
抗Snail抗体AffinityAF6032
抗β-actin抗体BOSTERBM0627
ECL化学发光底物试剂盒Biosharp--
结晶紫----
渥曼青霉素MCEHY-10197

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
A549细胞培养条件:Ham's F-12K培养基,10% FBS,37°C,5% CO2。
阅读提示:见Materials and methods 2.1 Cell culture
转染
miRNA mimics/inhibitor浓度(150 pmol),Lipofectamine 3000和P3000用量(各5μL),转染时间(6-9小时),后续培养48小时。
阅读提示:见Materials and methods 2.2 Transfection of miRNA mimics and miRNA inhibitor
细胞活性检测
MTT浓度(5mg/ml,20μL/孔),检测时间点(0、12、24、48、72小时),DMSO溶解,490nm波长。
阅读提示:见Materials and methods 2.3 Cell viability assay
细胞增殖与迁移检测
集落形成实验:1000细胞/孔,6孔板,培养14天;划痕愈合实验:0.5×10^6细胞/孔,6孔板,划痕后0、12、24、36小时拍照。
阅读提示:见Materials and methods 2.6 Wound healing assay和2.7 Colony formation assay
PI3K抑制实验
wortmannin浓度1μM(MCE, HY-10197),与miR-489-3p mimics共处理的时间点。
阅读提示:见Results 3.4 Inhibition of PI3K may affect on LUAD cells and snail expression